Лактоза, определение воды

Определение состава смеси сахаров. Исследованию подвергают одну из следующих смесей 1 %-ных растворов сахаров в 15%-ном спирте глюкоза — лактоза ксилоза — лактоза смесь всех трех сахаров. Растворы сахаров наносят, как описано в предыдущей работе, на хроматографическую пластинку размером 25 х75 мм или 45 х 120 мм с закрепленным слоем силикагеля. В качестве элюента используют смесь этилацетата и 65 %-ного водного раствора 2-пропанола 1 1. После хроматографирования высушенную пластинку опрыскивают раствором, приготовленным из 0,93 г анилина, 1,66 г фталевой кислоты и 100 мл насыщенного водой 1-бутанола, затем пластинку нагревают так же, как в предыдущей работе. В тех местах, где находятся сахара, появляются коричневые пятна. Находят значения R , сравнивают их между собой и определяют состав исследуемой смеси. [c.270]

Для определения принадлежности дрожжей к тому или иному Р.ИДУ используют методы, изложенные на стр. 499. Основным методом является выращивание их на разных специальных средах. Например, чистые культуры дрожжей выращивают 1) на дрожжевой воде с двухпроцентными растворами различных сахаров — глюкозой, галактозой, сахарозой, лактозой и др. 2) на синтетических средах с различными источниками азотистого питания — пептоном, сернокислым аммонием, нитратами 3) на других твердых средах. [c.538]

Определение колиформных бактерий. Присутствие колиформных бактерий также определяют в воде всех видов. Общие колиформные бактерии — это Гр- аспорогенные палочки, не обладающие оксидазной активностью и сбраживающие лактозу с образованием кислоты и газа при 37 °С в течение 24 — 48 ч (или сбраживающие глюкозу с образованием кислоты и газа при температуре 37 °С в течение 24 ч). Термотолерантные колиформные бактерии обладают теми же характеристиками, но дополнительно сбраживают лактозу с образованием кислоты и газа при 44,5 °С через 24 ч. Термотолерантные колиформные бактерии быстро отмирают во внешней среде, поэтому их обнаружение свидетельствует о свежем фекальном загрязнении воды. [c.419]

Второй этап в определении коли-титра состоит в том, что из тех посевов, где имеются явные признаки брожения (помутнение среды, образование кислоты и газа) делают высев на плотную питательную среду. Чаще всего используется фуксин-сульфитный агар (среда Эндо), в состав которой входит лактоза, основной фуксин и сернистокислый натрий. Готовая, застывшая в чашках среда имеет серовато-розоватый цвет, так как фуксин обесцвечивается и находится в лейкоформе. При выращивании кишечной палочки содержащаяся в среде Эндо лактоза сбраживается с образованием альдегида, который, взаимодействуя с обесцвеченным фуксином, переводит его в окрашенную и придает выросшим колониям ярко-красный цвет с металлическим оттенком. Таким образом, назначение бродильной пробы, являющейся первым этапом определения коли-титра, состоит в том, чтобы выявить присутствие кишечной палочки в определенных объемах воды, засеваемых на жидкие среды. Второй этап— высев на плотную диагностическую среду (среда Эндо) — [c.167]

Очищенные гидратированные сахара содержат, кроме определенного количества кристаллизационной воды, еще приблизительно 1 % маточного раствора или воды, конденсированной на их поверхности. Несколько большие значения, полученные при титровании, по сравнению со значениями, вычисленными на основании формул соответствующих гидратов, объясняются присутствием этой свободной воды. Полагали, что образец сорбита представляет собой полугидрат. Однако, в. связи с тем, что в нем было обнаружено только 75% от теоретически вычисленного количества воды, Циммерман пришел к выводу, что при атмосферном давлении устойчивой формы гидрата сорбита не существует. Некоторые сахара, как, например, лактоза и мальтоза, нерастворимы ни в метаноле, ни в реактиве Фишера. Циммерман нашел, что содержание воды в этих продуктах можно определить после предварительного экстрагирования в том случае, если они тонко-измельчены. [c.204]

Декстрины и мальтоза часто входят в состав смесей для детского питания. Новорожденные дети не могут питаться цельным коровьим молоком — оно предназначено для телят, а не для детей. В нем так много некоторых питательных веществ, что организм ребенка не может с ними справиться. Поэтому коровье молоко разводят определенным количеством кипяченой воды. Но при этом в нем слищком уменьшается содержание лактозы. Приходится добавлять сахар в том или ином виде. И чаще всего для этого берут смесь декстрина и мальтозы. Она легко растворима и почти не обладает сладостью, так что вкус молока от этого не меняется. [c.146]

При присоединении одного моносахарида к другому посредством гликозидной связи с формальным отщеплением 1 моль воды образуется соединение, называемое дисахаридом. Присоединение следующих молекул моносахарида дает три-, тетра-, пентасахариды и высшие сахариды вплоть до высокомолекулярных соединений— полисахаридов. Хотя не существует строгого определения олигосахаридов, обычно считают, что к ним относятся соединения, содержащие менее семи или восьми углеводных остатков. Наиболее известными и легкодоступными представителями олигосахаридов являются дисахариды. Среди них наибольшее распространение имеет сахароза (а-й-глюкопиранозил-р-й-фруктофуранозид) (1)—невосстанавливающий дисахарид, встречающийся во всех растениях [1]. Дисахарид лактоза (4-0-р-Д-галактопиранозил-й-глюкоза) (3) входит в состав молока млекопитающих 12]. Кроме них единственным природным олигосахаридом, доступным в больших количествах, является трегалоза (а-й-глюкопиранозил-а-/3-глюкопиранозид) (4) — невосстанавливающий дисахарид, содержащийся в значительном количестве в сухих дрожжах 3]. У насекомых трегалоза выполняет функцию резервного сахара, из которого при необходимости регенерируется глюкоза. Раффиноза (5), единственный легкодоступный природный трисахарид, содержится вместе с сахарозой в сахарной свекле. Некоторые олигосахариды довольно легко можно получать частичным гидролизом полисаха- [c.202]

Для определения висмута в органических соединениях [411] 0,1 — 0,2 г тонкоизмельченной пробы нагревают 2—3 мин. в бомбе Парра с 0,2 г лактозы и 12 г Na202. После охлаждения плав растворяют в стакане в 200—250 мл воды и кипятят до полного разложения перекиси натрия. Нейтрализуют концентрированной соляной кислотой, разбавляют до 400 мл и добавляют столько соляной кислоты, чтобы раствор был 0,3 н. относительно ее. Затем пропускают сероводород, нагревают для коагуляции сульфида висмута и оставляют на 2 часа сульфид висмута отфильтровывают через взвешенный тигель Гуча, промывают серо- [c.65]

Джонс и Маклахлан [160] при анализе различных материалов путем дистилляции в приборе Дина—Старка сравнивали результаты, получаемые при использовании бензола, толуола и петролейного эфира (т. кип. 90—100 °С). Результаты определения влаги в сливочном масле и маргарине оказались одинаковыми для этих растворителей и с правильностью 0,2—0,3% совпадали с данными, полученными при высушивании анализируемых материалов при 100 °С в воздушном сушильном шкафу с водяным обогревом и при 108 °С в воздушном сушильном шкафу. При анализе джемов, меда, пшеничных и солодовых экстрактов, бобов какао, подвергнутых ферментации, крахмала и мыла определяемое содержание воды было тем выше, чем выше температура кипения применяемого растворителя. Тем не менее все результаты укладываются в пределы широкого интервала значений, получаемых при сушке в воздушном сушильном шкафу при 100, 108 и 135 °С. Было показано, что результаты, получаемые методом дистилляции при анализе джема, меда и солодового экстракта, более надежны, чем данные, найденные при высушивании [160]. При использовании перечисленных выше переносящих агентов для моногидрата лактозы были найдены значения содержания воды соответственно 5,0 5,0 и 5,3%. Высушивание при 100 и 108 °С показало присутствие лишь 0,1 % влаги. [c.270]

Определение восстанавливающих сахаров [8—14]. 1. К 1 мл раствора, содержащего 0,2—3 мг восстанавливающего сахара, прибавляют 2 мл насыщенного водного раствора пикриновой кислоты, 1 мл 207о-ного раствора Na2 Os и нагревают 30 мин при 100°С. После охлаждения разбавляют водой дО объема 10 мл и оптическую плотность буро-красного раствора измеряют при 455 нм. Метод пригоден для определения арабинозы, галактозы, глюкозы, крахмала, ксилозы, лактозы, мальтозы, рамнозы, фруктозы. [c.233]

Применение комбинированной среды Эндо с желатином для одновременного определения лактозного и про-теолитического тестов (Т. 3. Артемова, 1971). При исследовании воды на наличие БГКП, а также при идентификации выделяемых пз воды бактерий возникает необходимость определить способность бактерий разжижать желатин. Этот тест можно объединить с определением способности разлагать лактозу на среде Эндо путем добав- [c.210]

М-стафилококковый бульон для определения стафилококков методом мембранных фильтро з на питательных подкладках. (Стандартные методы США, 1975). Триптона или пол)шептона 10 г, дрожжевого экстракта 2,5 г, лактозы 2 г, маннита 10 г, фосфата калия двуосновного 5 г, хлорида натрия 75 г, дистиллированной воды 1000 мл. Стерилизовать при 112°С 15 мин, pH 7,0 после стерилизации. [c.243]

Гравиметрические методы разработаны для большинства неорганических анионов и катионов, а также для нейтральных соединений, таких, как вода, диоксид серы, углекислый газ и иод. Целый ряд органических соединений также легко определить гравиметрически. В качестве примера можно провести определение лактозы в молочных продуктах, салнцилатов в лекарственных препаратах, фенолфталеина в слабительных средствах, никотина в ядохимикатах, холестерина в сыворотке крови и бензальдегида в экстрактах миндаля. Гравиметрический анализ — один из наиболее широко используемых методов химического анализа. [c.157]

Искусствек(- ая смесь (ф) Монозы рамноза арабиноза фруктоза 1 ксилоза глюкоза галактоза манноза биозы сахароза 1 лактоза мальтоза триоза раффиноза. Разделение и определение 2) Вода 3) Акт. уголь 4) Вытеснитель—40/о-ный раствор фенола 5) Интерферометрический 172 [c.264]

Обсуждение. Определение времени, необходимого для образования озазона, часто оказывает значительную помощь в том отношении, что позволяет отличить один вид сахара от другого. Малликен приводит следующие данные о времени, которое необходимо для выпадения озазона из горячего раствора озазон фруктозы — 2 мин. глюкозы — 4—5 мин. ксилозы — 1 мин. арабинозы—10 мин. галактозы—15—19 мин. рафинозы — 60 мин. маннозы — 0,5 мин. (гидразон) сахарозы — 30 мин., причем после гидролиза образуется глюкозазон. Озазоны лактозы и мальтозы растворимы в горячей воде. [c.122]

Связывание сахаров с белками в водном растворе также можно объяснить с точки зрепия образования полифункциональной водородной связи. Определенный вклад в этот процесс может вносить и гидрофобное взаимодействие, однако из-за высокой растворимости большинства сахаров в воде можно полагать, что связывание обусловливается не только этим взаимодействием. Значительный вклад в свободную энергию взаимодействия лактозы с антителом, достигающую —8 ккал/лтоль (—33,5-10 Дж/моль), можно поэтому приписать образованию полифункциональной водородной связи с гидроксильными группами сахара [34]. Свободная энергия связывания трн-М-ацетилглюкозамина с лизоцимом составляет —7,2 ккал/моль (—30,2 X X 10 Дж/моль). Ес,1ги принять, что приблизительно половина этой величины обусловлена образованием водородных связей, то каждой из наблюдаемых при рентгеноструктурном анализе этого фермента водородной связи можно приписать среднюю свободную энергию образования —0,8 ккал/моль ( 3,35-10 Дж/моль) [35]. [c.263]

В заключение рассмотрим анализ равновесной паровой фазы молока с целью определения компонентов, придающих ему запах. Подобно крови, молоко состоит из твердой и жидкой фаз 88% воды, казеин, альбумин, жир, лактоза и т. п. Оно также доступно в чистом виде (без примесей). Базетт, Озерис и Уитна [83] использовали метод анализа равновесной паровой фазы для идентификации веществ, определяющих запах молока. Сундарарайан, Тобиас и Уитни 184] разработали метод анализа равновесной паровой фазы над стерилизованным молочным концентратом с целью контроля содержания этих пахучих компонентов в процессе его производства и хранения. [c.85]

С целью разработки быстрого метода разделения о-фруктозы, сахарозы, лактозы и сорбита, который мог бы найти применение в анализе пищевых продуктов, было изучено поведение при хроматографии на тонкоизмельченном силикагеле (размер частиц 5 мкм) обычно встречающихся сахаров и полиолов в водных системах, содержащих различные количества этилфор-миата и метанола [11]. Определенный успех в данном направлении был достигнут. Оказалось, что разделение такой смеси можно провести менее чем за 20 мин на стальной колонке (150Х Х4,6 мм), заполненной силикагелем (размер частиц 5 мкм), при элюировании смесью этилформиат — метанол — вода (6 2 1) со скоростью 0,9 мл/мин. Однако двумя группами исследователей было установлено [И, 12], что в случае близких по строению сахаров данный метод анализа неприемлем. [c.8]

Индикаторные среды содержат индикатор, который позволяет визуально отличать одни организмы от других. К примеру, определенные бактерии разрушают ( сбраживают ) сахар лактозу до кислоты. В среде, получившей название агар Макконки, которая содержит рН-индикатор нейтральный красный и желчные соли, колонии, сбраживающие лактозу, будут выглядеть красными, а не сбраживающие лактозу — бесцветными или бледно-розовыми. Этот метод используют, например, для выявления загрязнения питьевой воды сточными водами. Сточные воды содержат кишечные бактерии, такие как Е. соИ, которые сбраживают лактозу. Точно так же, если в образце кишечных бактерий присутствует Salmonella, то на агаре Макконки она будет образовывать бесцветные колонии. [c.45]

Колориметрический способ определения редуцирующих сахаров, широко используемый в биохимических и клинических лабораториях, нашел применение и при анализе пищевых продуктов, как об этом сообщается в работе [336], сравнивающей этот иетод с методом Менсона — Уокера. Метод окисления феррицИани-дом калия приспособлен для определения лактозы и сахарозы в молочных продуктах [356] однако в присутствии других редуцирующих сахаров он неприменим. Для анализа смеси глюкозы, галактозы, рамнозы, присутствующих в гидролизате глюкозидов флавона из гречихи, пригодно определение медного числа по Шор-лю [321 ] до и после сбраживания дрожжами, способными селективно сбраживать одну глюкозу или глюкозу и галактозу вместе. Для идентификации сахаров использована хроматография на бумаге [384]. Для смесей простых гексоз и пентоз процесс был весьма упрощен применением смешанных растворителей этилацетат-уксусная кислота-вода и этилацетат-пиридин-вода, в которых сахара имеют низкий коэффициент Rp [359]. [c.158]

Для характеристики чистых сахаров (не загрязненных даже следами других сахаров) имеет определенное значение время, необходимое для появления озазона после погружения пробирки в кипящую воду. Как правило, на образование фенилозазонов различных сахаров требуется различное время манноза 0,5—1 мин., фруктоза 1—2 мин., глюкоза 4—5 мин., ксилоза 6—8мин., рамноза 7—9 мин., арабиноза 9—Юмин., галактоза 14—16мин., гидролизат сахарозы 20—30 мин. фенилозазоны мальтозы и лактозы кристаллизуются при охлаждении. Следует отметить, что время в минутах, приведенное выше, является приблизительным и что срок появления озазонов зависит от количества сахара, воды и реагента, а также от pH раствора. [c.446]

Дифференциально-диагностические среды. Среды Г и с-са. К 1% пептонной воде добавляют 0,5% определенного углевода (глюкоза, лактоза, мальтоза, маннит и дрЛ и индикатор Андреде (кислый фуксин в 1 н. растворе КаОН) разливают по пробиркам, в которые помещают поплавок (трубка длиной около 3 см, один конец которой запаян) для улавливания газообразных продуктов, образующихся при разложении углеводов. Стерилизацию проводят текучим паром или паром под давлением 0,5 атм поплавок при этом заполняется питательной средой. Среда при pH 7,2—7,4 бесцветна. При разложении углеводов приобретают красный цвет. [c.46]

Среда Эндо. Выпускается в виде порошка, который состоит из высушенного питательного агара с 1% лактозы и индикатора — основного фуксина, обесцвеченного сульфитом натрия. Перед употреблением определенную навеску порошка вносят в дистиллированную воду, кипятят, а затем разливают по чашкам Петри. Свежеприготовленная среда бесцветна или имеет бледно-розовую окраску. При росте лактозоположительных бактерий их колонии окрашиваются в темно-красный цвет с металлическим блеском лактозоотрицательные бактерии образуют бесцветные колонии [c.46]

Определение способности к брожению проводят обычно на уг-леводно-пептонной среде с относительно высокой концентрацией углеводов и небольшим количеством пептона. Состав среды (г/л) углевод — 10,0 пептон — 2,0 Na l — 5,0 К2НРО4 — 0,3 агар — 3,0. На 100 мл среды добавляют 0,3 мл 1%-ного водного раствора бромтимолового синего, pH среды 7,1—7,2. Среду без углевода стерилизуют при 1 ати. Углеводы (глюкозу, сахарозу, лактозу) добавляют к стерильной расплавленной среде в виде растворов в дистиллированной воде, которые стерилизуют при 0,5 ати. Стерильную среду с углеводами разливают в стерильные пробирки слоем 5—в см и после того, как она застынет, ее засевают исследуемым микроорганизмом. Посев делают уколом. Для каждого углевода используют две пробирки. После посева поверхность среды в одной пробирке заливают стерильным расплавленным парафином, смесью вазелинового масла и парафина (1 1), или водным агаром (1,5 г агара на 100 мл), слоем 1—2 см. [c.164]

Бактерии группы dii относятся к семейству энтеробактерий. Это неспороносные палочки, факультативные анаэробы, сбраживающие лактозу и глюкозу при температуре 37°С с образованием кислоты и газа и не обладающие оксидазной активностью. Они являются постоянными обитателями кишечника человека и животных постоянно и в большом числе выделяются во внешнюю среду дольше, чем патогенные микроорганизмы, сохраняют жизнеспособность в этой среде более устойчивы к действию хлора, чем возбудители большинства инфекций. Именно эти свойства бактерий группы oli обусловили возможность их использования в качестве санитарно-показательных микроорганизмов. Наличие коли-форм в воде говорит о ее фекальном загрязнении, а их число позволяет судить о степени этого загрязнения. Для количественного определения коли-форм применяют фуксин-су-льфитный агар (среда Эндо), [c.100]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология