Справочник химика 21

Химия и химическая технология

Статьи Рисунки Таблицы О сайте English

Аммоний в питательной среде

    В качестве источника селена использовали диоксид селена, который добавляли в среду непосредственно перед засевом в виде стерильного 1 %-ного раствора. Была произведена замена 10 мольн.% серы (в виде сульфата аммония) на 10 мольн.% селена (в виде диоксида селена), что соответствует снижению в исходной питательной среде содержания сульфата аммония с 5 г/л до 4.5 г/л, при этом среду вносилось 0.1 г/л диоксида селена. [c.168]


    С учетом вышесказанного, размножение чистой культуры винных дрожжей в помещичьих хозяйствах России осуществляли следующим образом [ 11 ]. В свежеприготовленный сок тех или иных плодов и ягод добавляли сахар и азотно-фосфорное питание, в виноградный сок дополнительное питание не добавляли. Сахара берется такое количество, чтобы после добавления к соку общее количество в нем его составляло около 15 мас.% и не превышало 25 мас.%. На 1 л сока добавлялось 0,2—0,5 г фосфорнокислого аммония или по 0,2—0,3 г сернокислого аммония и ортофосфорной кислоты или 1 г сухого солода. Иногда питательная среда готовилась без дополнительного внесения фосфорного питания, а в качестве-азотного использовался раствор нашатыря из расчета 0,1—0,2 мл на 1 л сока. Подготовленное таким образом сусло стерилизовалось при 70°С в течение 10—15 мин, после чего переливалось в тщательно простерилизованную емкость, [c.118]

    Источниками азота в питательной среде могут быть белки, пептиды, аминокислоты, соли аммония или аммиака, нитраты, а также атмосферный азот. Количество азотсодержащих веществ для образования биомассы можно вычислить, если известно содержание азота в данной биомассе и вероятный урожай ее. Обычно принимают, что 5% азота остается в питательной среде неиспользованным. [c.52]

    Биосинтез рибофлавина стимулируют ацетат аммония и ненасыщенные жирные кислоты, а замедляет железо, поэтому питательную среду предварительно обрабатывают для уменьшения содержания железа до 5—10 мкг на 1 л. [c.173]

    Комплексный амилолитический ферментный препарат полу- чают путем выращивания плесневых грибов на твердой питательной среде с последующей сушкой и измельчением полученной массы. Более активный препарат фермента получают путем экстракции такого грибного солода с последующим выпариванием и сушкой. Еще более активные ферментные препараты можно выделить из культуральной жидкости путем осаждения амилазы ацетоном и дальнейшим высушиванием коагулята при температуре 27—28°С. Для осаждения фермента часто используют и сульфат аммония. Предварительно культуральную жидкость выпаривают при температуре 40°С до 40%-ного содержания сухих веществ. Коагулят сушат вместе с наполнителем. В Японии для пищевых нужд используют технический препарат амилазы, полученный адсорбцией фермента из культуральной жидкости особо обработанным крахмалом. Затем амилазу вместе с крахмалом лиофилизируют. [c.194]


    Для жизнедеятельности микроорганизмов необходимо наличие в питательной среде минеральных веществ. С их помощью регулируется осмотическое давление внутри клетки, они определяют скорость и направление биохимических реакций и коллоидные свойства живой протоплазмы. Из минеральных элементов важнейшую роль в питании микробов играет фосфор, необходимый для синтеза сложных фосфорсодержащих соединений с белками. Лучшими источниками фосфора являются различные фосфорнокислые соли калия, натрия, аммония. [c.514]

    В отсутствии минеральных солей процесс размножения дрожжей прекращается. Установлено, что для нормальной жизнедеятельности дрожжей необходимы также витамины. Например, дрожжевые грибки сахаромицеты слабо размножаются на синтетических средах, не содержащих витаминов. Таким образом, состав питательной среды для дрожжей должен соответствовать указанным выше требованиям и состоять из веществ азотистых (сернокислый аммоний), фосфористых (суперфосфат) и соединений, содержащих магний, калий, железо, серу и витамины. В питательной среде сахара в количественном отношении преобладают над всеми другими составными частями. Объясняется это тем, что сахара используются дрожжевой клеткой не только как источники углерода, необходимого для построения клеток, но и как источник энергии, выделяющейся при расщеплении сахара дрожжами.  [c.184]

    Принципы культивирования микроорганизмов. С момента внесения микробов (засева) в питательную среду имеет место индукция их физиологической активности, особенно — в логарифмическую и/или стационарную фазы размножения. При этом одновременно сопряженно протекают многие реакции, катализируемые иммобилизованными или свободными ферментами. В реакции, особенно — на первых этапах, нередко вовлекаются высокомолекулярные вещества с определенной конфигурацией молекул (сравнить такие источники углерода как глюкоза и крахмал или источники азота—аммония сульфат, какая-либо аминокислота и нативный белок). Поэтому следует учитывать специфику выращивания микроорганизмов. [c.378]

    При использовании мела ориентировочный состава питательной среды может быть следующим (%) 10—15 глюкозы 0,016 — магния сульфата 0,02 — калия дигидрофосфата 0,04 — аммония гидрофосфата и 2,6 — кальция карбоната. Вместо глюкозы можно применять гидролизаты крахмала. [c.425]

    Культуры бактерий размножаются в морской воде, к которой в качестве питательной среды добавляют азотнокислый, сернокислый аммоний и другие минеральные соли, а затем вводят керосин, содержащий примесь сернистых, азотистых и кислородных соединении. Инкубационный период длится 24—30 суток при температуре 30 °С и перемешивании углеводородов и воды воздухом. Обработанное таким образом топливо отделяют, сушат и фильтруют. В результате такой обработки содержание смол в топливе снижалось с 4,4 до 1,6 жг/100 мл, азота с 0,02 до 0,002%, серы с 0,25 до 0,01 % и т. д. [26]. [c.220]

    Некоторые почвенные бактерии и дрожжи способны усваивать алифатические углеводороды в присутствии неорганических источников азота типа солей аммония, давая белки, пригодные на корм скоту. В одном из последних методов природный газ химически перерабатывают в метанол, который затем используют как питательную среду для специально выведенных микроорганизмов. Аминокислотный состав конечного продукта меняется в зависимости от вида микроорганизма, источника углерода и условий ведения процесса, но во всех случаях получается продукт, пригодный для откорма скота. [c.611]

    Пентозы остаются в б а р д е, т. е. в остатке после отгонки спирта из бражки. Они используются в качестве питательной среды для выращивания белковых дрожжей. В барду добавляют питательные соли (суперфосфат, сульфат аммония), охлаждают ее на градирне, фильтруют, помещают в чаны, добавляют засев-ные дрожжи и интенсивно пропускают воздух из барботеров, находящихся немного выше дна чана, при температуре 29—30 . Дрожжи быстро размножаются. Их отделяют от бражки, промывают водой, концентрируют при помощи сепараторов и высушивают. Получаются сухие дрожжи в виде порошка. [c.106]

    По этой схеме (рис. 159) для выращивания актиномицета применяется питательная среда, в состав которой входит 15— 20% фильтрата зерно-картофельной барды, 15—20% разваренной массы из варочного цеха спиртового завода, 0,5% мела, 0,5% азотнокислого аммония и то 1 г роданистого бензила и хлористого кобальта на тонну среды. Остальное количество (до 100%) составляет вода. [c.451]

    Для культивирования микроорганизмов в лабораторных условиях необходимы питательные среды, которые могут обеспечить, клетки всеми нужными для роста и размножения веществами. В состав питательной среды должны входить источники углерода и азота, минеральные соли, витамины и ростовые факторы, микроэлементы. Источниками углерода в среде служат глюкоза, крахмал, спирты и другие органические соединения. В качестве источника азота применяются минеральные вещества (сернокислый аммоний, азотнокислый натрий) или органические соединения (кукурузный экстракт, пептон, казеиновый гидролизат и др.). [c.16]


    ЛИЯ. Образование в культуре пены наблюдалось лишь в некоторых случаях при образовании грибом большого количества полисахаридов. Изучение источников азотного питания гриба показало, что основными поставщиками органического азота были /-глютаминовая кислота /-тирозин, тартрат аммония //-аспарагиновая кислота /-пролин /-аргинин /-лейцин //-аланин d/- e-рин и /-гистидин. >-формы использованных веществ снижали выход. С инокулюмом, выращенным на питательной среде с дрожжевым экстрактом и декстрозой, вносились в культуру также микроэлементы таким образом, дальнейшее ее развитие зависело от количества внесенного инокулюма. Установлено также, что гидролизат казеина был значительно более эффективным источником азота, нежели отдельные чистые аминокислоты. [c.355]

    Для гюлучсния дополнительной информации о возможном механизме включения селена в органические внутриклеточные соединения (например, метионин и цисте-ин) проведена замена сульфата аммония на хлорид аммония. Замена соли проводилось с учетом количественного сохранения концентрации иона аммония в исходной питательной среде. [c.168]

    Стадия подготовки засевной биомассы I обеспечивает подачу в производственные биореакторы необходимого количества посевного материала — активной культуры микроорганизмов, выращенной в периодически или непрерывно работающих инокуляторах. На стадии подготовки минеральной питательной среды а осуществляется растворение минеральных солей, фильтрация растворов и доведение концентраций элементов в них до заданных соотношений. В качестве минеральных источников питания используют сернокислые соли калия, магния, железа, аммофос, сульфат аммония, а также микроэлементы — соли марганца, цинка, железа и меди. Подготовка углеводородного субстрата (стадия III) включает процессы подогрева, перемешивания жидких парафинов и их дозированной подачи в производственные биореакторы. [c.14]

    В малый АЧК после пропаривания подаются 0,3 м грубого фильтрата барды с температурой не ниже 70—80° С, 1,2 кг сульфата аммония, а также меласса (6 кг), сахар (3 кг) или грубый фильтрат сусла (10 л) для доведения коиценграции сахара в питательной среде до 1%. [c.249]

    Высокое содержание нитратов, ионов аммония, калия, фосфата способствует быстрому росту клеток. Истощение среды значительно снижает рост и процессы вторичного метаболизма. Однако изначально низкое содержание фосфатов в питательной среде способно стимулировать синтез вторичных метаболитов. Установлено, что культивирование каллусов солодки голой на среде с половинной концентрацией азота и фосфора в темноте увеличивает содержание фенольных соединений в 1,6 раза по сравнению с каллусами, растущими на полной среде. В среду могут бьггь добавлены эндоспермы незрелых зародышей (кокосовый орех, конский каштан и др.), пасока некоторых деревьев, различные экстракты (солодовый, дрожжевой, томатный сок). Введение их в среду дает интересные результаты, но такие эксперименты трудно воспроизводимы, так как действующий компонент, как правило, точно неизвестен. Например, добавление в прггательную среду отдельных фракций кокосового молока не давало никаких результатов, в то время как нефракционированный эндосперм вызывал деление клеток. [c.162]

    Для приготовления питательных сред в микробиологической промышленности используют сырье минеральное, животного и растительного происхождения, а также синтезированное химическим путем. Эти веш,ества, входя в состав питательной среды, обеспечивают развитие культуры и биосинтез определенных продуктов. Они не должны содержать вредных примесей. При выборе сырья необходимо учитывать его влияние на себестоимость, так как в микробиологическом синтезе важное значение имеет стоимость исходных веществ и материалов. В качестве источников углерода чаще всего используют углеводы (глюкоза, сахароза, крахмал, лактоза) или богатые углеводами натуральные продукты (меласса, кукурузная мука, гидроль и др.), а также жиры и даже вещества, содержащие углеводороды (нефть, парафин, керосин, природный газ, метан и др.). Источником азота обычно бывают неорганические соли — сульфат аммония, двузамещенный фосфат аммония, аммиак, нитраты, а также мочевина или натуральные продукты — кукурузный экстракт, соевая мука, дрожжевой автолизат и т. д. [c.75]

    Так как антибиотические вещества являются вторичными ме-тоболитами, то биосинтез их сопряжен с переходом культуры продуцента в идиофазу. Следовательно, здесь целесообразно лимитирование роста продуцента. Таким лимитирующим ингредиентом (фактором) при биосинтезе пенициллина выступает глюкоза, тогда как при биосинтезе антибиотиков стрептомицетами — фосфаты. Все это важно при "компановке" питательных сред, подкормке штамма - продуцента в процессе биосинтеза антибиотика. Так, среда для продукции пенициллина (она же пригодна для накопления инокулюма) включает глюкозу — 1,5%, лактозу — 5% (лактоза снимает катаболитную репрессию глюкозы), аммония сульфат и фосфаты — 0,5—1%, кукурузный экстракт — 2—3%, предшественники антибиотика — фенокси- или фенилуксусная кислота — 0,3—0,6%, мел — 0,5-1%, пеногаситель — 0,5—1% температуру ферментации поддерживают на уровне 22—26°С при pH от 5,0 до 7,5 и аэрации 1 м воздуха на 1 м среды в 1 минуту продолжительность ферментации — 4 суток. [c.441]

    Так как по мере роста и развития водорослей изменяется питательный раствор, происходит сдвиг pH (подщелачивание или подкисление) и появляются в культуральной среде продукты прижизненного выделения и посмертного автолиза клеток,, желательно проводить эксперименты с использованием проточных культур. При выборе питательной среды для проточного-культивирования водорослей необходимо учитывать вредное-воздействие калия на развитие культуры (Татус, 1964). Тамия предложен второй вариант питательной среды, где вместо азотнокислого калия вносится азотнокислый аммоний. Однако эта среда, сбалансированная по соотношению катионов, не уравновешена по соотношению элементов в растворе (Кузнецов, 1967). Кузнецовым предложена сбалансированная среда № 3 для проточного культирования протококковых водорослей следующего состава N—1,400, Р—0,340, 5—0,097, К—0,428 и IAg — 0,082 г/л, в которой учтено соотношение элементов в питательном растворе. [c.222]

    Идентификацию отдельных компонентов в газовой смеси проводили путем сравнения времен удерживания эталонных и анализируемых веществ. По эталонным веществам в газовой смеси, выделяемой листьями пшеницы, были идентифицированы метан и этилен, а в культуре клеток табака — метан, этан и этилен. Обнаружено, что наиболее интенсивное выделение этилена наблюдалось на 5 сутки у суспензии ткани табака и на 9 сутюи у пшеницы (табл.). При отсутствии сульфата аммония в питательной среде наблюдалось снижение интенсивности выделения этилена при адекватной его динамике. [c.61]

    Прокариотические клетки представляют исключительную ценность для исследований в области биохимии и молекулярной биологии, так как они несложны по своей структуре, их можно легко и быстро вьфащивать в больших количествах, а механизмы репродукции и передачи генетической информации у них относительно просты. В оптимальных условиях при 37°С в простой питательной среде, содержащей глюкозу, соли аммония и неорганические веще- [c.30]

Рис. 7.16. Важнейшие пути ассимиляции азота. Ионы аммония, содержащиеся в питательной среде, непосредственно поглощаются клетками (а). Ионы нитрата при ассимиляционной нитратредукции (б), а молекулярный язох (N2) при фиксации азота (в) восстанавливаются до ионов аммония. В органические соединения аммонийный азот переводится либо при участии АТР путем образования глутамина, либо без затраты АТР путем прямого восстановительного аминирования 2-оксоглутарата или пирувата. Рис. 7.16. <a href="/info/1715128">Важнейшие пути</a> <a href="/info/696634">ассимиляции азота</a>. <a href="/info/14884">Ионы аммония</a>, содержащиеся в <a href="/info/185599">питательной среде</a>, непосредственно поглощаются клетками (а). <a href="/info/5162">Ионы нитрата</a> при ассимиляционной <a href="/info/591018">нитратредукции</a> (б), а молекулярный язох (N2) при <a href="/info/62147">фиксации азота</a> (в) восстанавливаются до <a href="/info/14884">ионов аммония</a>. В <a href="/info/428">органические соединения</a> <a href="/info/1013177">аммонийный азот</a> переводится либо при участии АТР <a href="/info/27773">путем образования</a> глутамина, либо без затраты АТР путем <a href="/info/614870">прямого восстановительного аминирования</a> 2-оксоглутарата или пирувата.
    Потребность в факторах роста. Еще один отличительный признак молочнокислых бактерий-это их потребность в ростовых веществах. Ни один представитель этой группы не может расти на среде с глюкозой и солями аммония. Большинство нуждается в ряде витаминов (лактофлавине, тиамине, пантотеновой, никотиновой и фолиевой кислотах, биотине) и аминокислот, а также в пуринах и пиримидинах. Культивируют эти бактерии преимущественно на сложных средах, содержащих относительно большие количества дрожжевого экстракта, томатного сока, молочной сыворотки и даже крови. Неожиданным оказалось то, что некоторые молочнокислые бактерии (и другие организмы, осуществляющие брожение) при росте на средах, содержащих кровь, образуют цитохромы и даже, возможно, способны осуществлять фосфорилирование в дыхательной цепи. Молочнокислые бактерии не могут, следовательно, синтезировать порфирины если же порфирины добавлены в питательную среду, то некоторые из этих бактерий способны образовать соответствующие геминовые пигменты. [c.273]

    Метод хроматографии. Газо-жидкостпая и тонкослойная хроматографии также являются ценными методами при анализе разрушения нефти [88]. Изучение разрушения газойля с помощью газовой хроматографии [77] показало, что нефть разлагалась организмами в свежих пробах морской воды с питательной средой, содержащей фосфат аммония в качестве источника азота и фосфора. Через 2—5 сут отмечалось значительное снижение количества алканов (рис. 40). [c.147]

    Заслуживает внимания применение мононатрий- и моноаммонпй-фосфатов, а также кислого пирофосфата натрия для получения хлебопекарных порошков и искусственных дрожжей динатрийфосфата — при изготовлении плавленых сыров и порошкового молока триполи-и пирофосфата натрия — в колбасном производстве фосфатов натрия, аммония и кальция — в производстве дрожжей (для создания питательных сред). Пищевой трикальцийфосфат применяется для устранения гигроскопичности поваренной соли. [c.23]

    Апатогенные микробы представлены прежде всего группой кишечной палочки, которая в колоссальном количестве попадает в сточные воды вместе с испражнениями. Моча, так же как и фекалии, поступающая в коллекторы в огромном объеме, служит питательной средой для развития уробактерий. За счет жизнедеятельности уробактерий, осуществляющих гидролиз мочевины, в сточной жидкости образуется основная масса аммонийных солей. При этом сперва получается углекислый аммоний  [c.139]

    Питательную среду готовят в специальном реакторе 5, снабженном рубашками для подогрева и мешалкой. Компоненты питательной среды подаются в реактор через дозирующие устройства 7, pH среды доводится до 5,5— 5.8 известковым молоком. Главным составляющим питательной среды может быть гидролизат растительного сырья либо любой другой источник углерода, используемый на данном заводе. Среду обогащают питательными солями и автолизатом дрожжей, который готовят в спетщяльном аппарате — автолизаторе 6. Сульфат аммония вводится в среду в количестве 5,6% (в пересчете на азот), водная вытяжка суперфосфата — 3,1% (по Р2О5), хлористый кальций—1,5%. Состав и количество солевых добавок могут меняться в зависимости от состава используемого сырья. Для максимального удаления токсических примесей среду, приготовленную на гидролизатах и щелоках, интенсивно аэрируют около [c.96]


Смотреть страницы где упоминается термин Аммоний в питательной среде: [c.46]    [c.58]    [c.78]    [c.126]    [c.296]    [c.118]    [c.48]    [c.57]    [c.173]    [c.49]    [c.308]    [c.458]    [c.127]    [c.184]    [c.8]    [c.490]    [c.15]    [c.126]    [c.315]    [c.93]   
Биология Том3 Изд3 (2004) -- [ c.41 , c.79 ]




ПОИСК





Смотрите так же термины и статьи:

Питательные



© 2025 chem21.info Реклама на сайте