Лактоза определение

Напишите схемы окисления до альдоновых кислот а ) D-рибозы б) D-глюкозы в) D-маннозы г) D-ra-лактозы д) D-арабинозы. Назовите кислоты. Как реагируют альдозы и кетозы с окислителями при нагревании в щелочной среде Какие окислители используются для аналитического определения моносахаридов [c.68]

Опыт 7. Определение молочного сахара (лактозы) в молоке. [c.91]

Эта чувствительная реакция на восстанавливающие сахара позволяет различать а-кетолы и простые альдегиды. Порядок активности участия в этой реакции следующий фруктоза>глюкоза>лактоза> >мальтоза>н-масляный альдегид. Реактив используется также для определения дегидрогеназы в тканях, клетках и бактериях, при изучении прорастания семян и для определения кортизона. [c.541]

Итак, углеводы — это глюкоза, крахмал, целлюлоза, лактоза, сахароза, агар, гликопротеины, липополисахариды, хитин, нуклеиновые кислоты, ацетатная пленка, штапельное волокно и т. д. и т. п. Так что же это все-таки такое, — углеводы Как почти любому классу органических соединений с развитой химией, им трудно дать вполне строгое определение, т. е. такое, которое включало бы все представители и исключало бы всё, не входящее в этот класс. Поэтому поступим иначе попытаемся описать основные структурные черты углеводов и показать на конкретных примерах их типичных представителей, какими они бывают. [c.7]

Определение состава смеси сахаров. Исследованию подвергают одну из следующих смесей 1 %-ных растворов сахаров в 15%-ном спирте глюкоза — лактоза ксилоза — лактоза смесь всех трех сахаров. Растворы сахаров наносят, как описано в предыдущей работе, на хроматографическую пластинку размером 25 х75 мм или 45 х 120 мм с закрепленным слоем силикагеля. В качестве элюента используют смесь этилацетата и 65 %-ного водного раствора 2-пропанола 1 1. После хроматографирования высушенную пластинку опрыскивают раствором, приготовленным из 0,93 г анилина, 1,66 г фталевой кислоты и 100 мл насыщенного водой 1-бутанола, затем пластинку нагревают так же, как в предыдущей работе. В тех местах, где находятся сахара, появляются коричневые пятна. Находят значения R , сравнивают их между собой и определяют состав исследуемой смеси. [c.270]

Наконец, отметим еще одно интересное направление расширения объектов полярографического анализа — применение электродов с иммобилизованными ферментами, которые обеспечивают высокую специфичность по отношению к определяемому веществу. Такие электроды особенно эффективно применяются при вольтамперометрических анализах различных биологических объектов (определение глюкозы, лактозы в крови и др.). Детальные сведения о таких электродах см., например, [88. Заметим, что в этом методе удачно сочетаются высокая специфичность действия ферментов с достаточно высокой селективностью вольтамперометрии. [c.70]

Если в клетку из окружающей среды попадает индуктор фермента— субстрат (например, Лактоза, являющаяся индуктором р-галактозидазы), то он инактивирует репрессор, структурный ген освобождается и происходит синтез р-галактозидазы. Такие синтезируемые в определенных условиях ферменты называют [c.46]

Для определения принадлежности дрожжей к тому или иному Р.ИДУ используют методы, изложенные на стр. 499. Основным методом является выращивание их на разных специальных средах. Например, чистые культуры дрожжей выращивают 1) на дрожжевой воде с двухпроцентными растворами различных сахаров — глюкозой, галактозой, сахарозой, лактозой и др. 2) на синтетических средах с различными источниками азотистого питания — пептоном, сернокислым аммонием, нитратами 3) на других твердых средах. [c.538]

Определение колиформных бактерий. Присутствие колиформных бактерий также определяют в воде всех видов. Общие колиформные бактерии — это Гр- аспорогенные палочки, не обладающие оксидазной активностью и сбраживающие лактозу с образованием кислоты и газа при 37 °С в течение 24 — 48 ч (или сбраживающие глюкозу с образованием кислоты и газа при температуре 37 °С в течение 24 ч). Термотолерантные колиформные бактерии обладают теми же характеристиками, но дополнительно сбраживают лактозу с образованием кислоты и газа при 44,5 °С через 24 ч. Термотолерантные колиформные бактерии быстро отмирают во внешней среде, поэтому их обнаружение свидетельствует о свежем фекальном загрязнении воды. [c.419]

Рассчитайте погрешность определения сахарозы из уравнения (7.4) с опушенным вторым членом для следующих образцов а) 30 г сахарозы с 2 г лактозы б) по 16 г сахарозы и лактозы в) 2 г сахарозы с 30 г лактозы. (Изменением удельного вращения лактозы между 15 и 20° С можно пренебречь.) [c.134]

Вследствие приспособленности к существованию в кишечнике человека кишечная палочка отличается от других представителей нетипичных молочнокислых бактерий способностью вызывать брожение при 43—45°, причем сбраживать она может не только сахара, но и спирты. Поэтому в состав питательной среды, используемой для первого этапа определения коли-титра, вводится в качестве единственного источника углерода многоатомный спирт маннит. Таким образом, сразу исключаются из учета многие, не разлагающие маннит бактерии, которые могут быть приняты за кишечную палочку при постановке анализа на лактозе или глюкозе. Посевы помещают на 24 час в термостат при температуре 44°. [c.167]

Второй этап в определении коли-титра состоит в том, что из тех посевов, где имеются явные признаки брожения (помутнение среды, образование кислоты и газа) делают высев на плотную питательную среду. Чаще всего используется фуксин-сульфитный агар (среда Эндо), в состав которой входит лактоза, основной фуксин и сернистокислый натрий. Готовая, застывшая в чашках среда имеет серовато-розоватый цвет, так как фуксин обесцвечивается и находится в лейкоформе. При выращивании кишечной палочки содержащаяся в среде Эндо лактоза сбраживается с образованием альдегида, который, взаимодействуя с обесцвеченным фуксином, переводит его в окрашенную и придает выросшим колониям ярко-красный цвет с металлическим оттенком. Таким образом, назначение бродильной пробы, являющейся первым этапом определения коли-титра, состоит в том, чтобы выявить присутствие кишечной палочки в определенных объемах воды, засеваемых на жидкие среды. Второй этап— высев на плотную диагностическую среду (среда Эндо) — [c.167]

К 1 мл раствора, содержащего 0,01—0,5 мг моносахарида добавляют 0,4 мл реактива, нагревают до 100 "С в течение 30— 45 мин (при определении арабинозы, галактозы, глюкозы, ксилозы, рамнозы, рибозы) или 1—2 ч (при определении лактозы, мальтозы) и после охлаждения измеряют оптическую плотность при 375—380 нм [55]. [c.158]

Декстрины и мальтоза часто входят в состав смесей для детского питания. Новорожденные дети не могут питаться цельным коровьим молоком — оно предназначено для телят, а не для детей. В нем так много некоторых питательных веществ, что организм ребенка не может с ними справиться. Поэтому коровье молоко разводят определенным количеством кипяченой воды. Но при этом в нем слищком уменьшается содержание лактозы. Приходится добавлять сахар в том или ином виде. И чаще всего для этого берут смесь декстрина и мальтозы. Она легко растворима и почти не обладает сладостью, так что вкус молока от этого не меняется. [c.146]

И. ф. применяют в произ-ве Ь-аминокислот, 6-аминопенициллановой к-ты, из к-рой получают полусинтетич. пенициллины, в синтезе преднизолона, для удаления лактозы из продуктов питания, используемых больными с лакгазной недостаточностью, в изготовлении ферментных электродов для экспресс-определения мочевины, глюкозы и др. в-в, для создания аппаратов искусств, почка и искусств, печень , для удаления эндотоксинов, образующихся в процессе заживления ран и ожогов, при лечении нек-рых онкологич. заболеваний и др. Большое значение приобрели в клинич. и лаб. практике иммуноферментные методы анализа, в к-рых также используются И. ф. [c.216]

Определение редуцирующих сахаров (по Лэну и Эй-нону). в фильтрате А содержатся редуцирующие сахара (глюкоза, фруктоза и другие монозы, а также дисахариды, обладающие восстанавливающими свойствами,— мальтоза, лактоза и др.) Хотя сахароза тоже переходит в фильтрат, но да я количественного определения ее 1ге-обходиыо подвергнуть гидролитическому расщеплению, инверсии (см. с. 222). [c.221]

Между различными технологическими процессами и запатентованными способами имеется довольно большое сходство. В таблице 13.3 приведены представительный перечень этих процессов, а также специфика их использования. Для гидролизатов сои предложены также некоторые другие пути применения. Нава с соавторами [78] предложили использовать пенообразовательную способность белков для приготовления с участием лактозы рыхлых порошков (малой плотности), имеющих хорошие показатели смачиваемости и эмульгирования. Как показали исследования Ямагуши с соавторами [121], гидролизаты соевых белков обладают определенной антиокислительной способностью, причем она увеличивается с повышением степени гидролиза. [c.605]

При присоединении одного моносахарида к другому посредством гликозидной связи с формальным отщеплением 1 моль воды образуется соединение, называемое дисахаридом. Присоединение следующих молекул моносахарида дает три-, тетра-, пентасахариды и высшие сахариды вплоть до высокомолекулярных соединений— полисахаридов. Хотя не существует строгого определения олигосахаридов, обычно считают, что к ним относятся соединения, содержащие менее семи или восьми углеводных остатков. Наиболее известными и легкодоступными представителями олигосахаридов являются дисахариды. Среди них наибольшее распространение имеет сахароза (а-й-глюкопиранозил-р-й-фруктофуранозид) (1)—невосстанавливающий дисахарид, встречающийся во всех растениях [1]. Дисахарид лактоза (4-0-р-Д-галактопиранозил-й-глюкоза) (3) входит в состав молока млекопитающих 12]. Кроме них единственным природным олигосахаридом, доступным в больших количествах, является трегалоза (а-й-глюкопиранозил-а-/3-глюкопиранозид) (4) — невосстанавливающий дисахарид, содержащийся в значительном количестве в сухих дрожжах 3]. У насекомых трегалоза выполняет функцию резервного сахара, из которого при необходимости регенерируется глюкоза. Раффиноза (5), единственный легкодоступный природный трисахарид, содержится вместе с сахарозой в сахарной свекле. Некоторые олигосахариды довольно легко можно получать частичным гидролизом полисаха- [c.202]

Для приготовления питательных сред в микробиологической промышленности используют сырье минеральное, животного и растительного происхождения, а также синтезированное химическим путем. Эти веш,ества, входя в состав питательной среды, обеспечивают развитие культуры и биосинтез определенных продуктов. Они не должны содержать вредных примесей. При выборе сырья необходимо учитывать его влияние на себестоимость, так как в микробиологическом синтезе важное значение имеет стоимость исходных веществ и материалов. В качестве источников углерода чаще всего используют углеводы (глюкоза, сахароза, крахмал, лактоза) или богатые углеводами натуральные продукты (меласса, кукурузная мука, гидроль и др.), а также жиры и даже вещества, содержащие углеводороды (нефть, парафин, керосин, природный газ, метан и др.). Источником азота обычно бывают неорганические соли — сульфат аммония, двузамещенный фосфат аммония, аммиак, нитраты, а также мочевина или натуральные продукты — кукурузный экстракт, соевая мука, дрожжевой автолизат и т. д. [c.75]

Для определения висмута в органических соединениях [411] 0,1 — 0,2 г тонкоизмельченной пробы нагревают 2—3 мин. в бомбе Парра с 0,2 г лактозы и 12 г Na202. После охлаждения плав растворяют в стакане в 200—250 мл воды и кипятят до полного разложения перекиси натрия. Нейтрализуют концентрированной соляной кислотой, разбавляют до 400 мл и добавляют столько соляной кислоты, чтобы раствор был 0,3 н. относительно ее. Затем пропускают сероводород, нагревают для коагуляции сульфида висмута и оставляют на 2 часа сульфид висмута отфильтровывают через взвешенный тигель Гуча, промывают серо- [c.65]

Условия определения по Макэну — Шоорлю одинаковы для глюкозы, фруктозы, инвертированного сахара, лактозы, мальтозы, галактозы, маннозы, арабинозы, ксилозы и рамнозы. [c.179]

Если структура фрагмента ДНК известна и проведено отнесение резонансных линий, то можно изучить взаимодействие ДНК со специфическими протеинами. Примером этого может служить взаимодействие с протеином, который является лак-репрессором и подавляет транскрипцию лактозоспецифических ферментов, так что лактоза практически отсутствует в клетках. Структура головной части этого протеина, которая ответственна за связывание с ДНК, недавно была установлена методом ЯМР и опубликована в [3.35 ]. По спектрам комплекса, полученным по методу NOESY, можно определить положение протеина относительно ДНК в том случае, если известно лишь несколько расстояний из измерений ЯЭО. Экспериментально по данным ЯЭО для Н для трех различных ароматических колец лак-репрессора (Туг-7, Туг-17 и His-29) найдены структуры, соответствующие определенным нуклеотидам лак-оператора. По этим оценочным значениям расстояний получена структура комплекса, в котором лак-репрессор развернут на 180° в сравнении со структурой, полученнной из модельных представлений (рис.3.43). [c.153]

Следует отметить, однако, что общепринятое понятие абсолютная специфичность в определенной степени условно. Так, глюкозооксвдаза, специфически окисляющая в-глюкозу с образованием глюконовой кислоты, действует еще по крайней мере на 8—10 субстратов, таких, как манноза, мальтоза, лактоза и др. Учитывая тот факт, что скорость окисления этих субстратов ниже по сравнению с глюкозой примерно на два порядка, этими данными зачастую пренебрегают и глюкозооксидазу считают ферментом, проявляющим абсолютную специфичность. Вместе с тем исследования влияния фермента на близкие по строению субстраты оказались чрезвычайно плодотворными в другом отношении. Выяснилось, что на скорость ферментативной реакции влияет не только природа атакуемой связи, но и ее окружение, а также длина углеродной цепи субстрата. Это особенно характерно для ферментов, проявляющих относительную, или групповую, специфичность. Данные ферменты действуют на группу близких по строению субстратов с сопоставимой скоростью, [c.60]

Для определения гидразида изоникотиновой кислоты [94] к его сильносернокислому раствору прибавляют избыточное количество ванадата п через некоторое время избыток последнего оттитровывают раствором соли Мора в присутствии N-фенилантраниловой кислоты. Определению не мешают лактоза, глюкоза и крахмал. [c.147]

Сублиматор может быть снабжен шлифом [85] в этом случае он пригоден для фракционированной сублимации. Подобна5 же пробирка, имеющая плоское дно, на котором сублимируемое вещество распределяется тонким слоем, пригодна для количественной микросублимации. Расстояние сублимируемого вещества от конца конденсатора составляет всего лишь 10 мм. Это устройство применялось для определения 2-метил-4-нафтохинона, ацетилсалициловой кислоты, фенацетина, фенобарбитола, никотинамида, салола и сульфаниламида в фармацевтических таблетках. Другие соединения, содержащиеся в таблетках, например крахмал, сахароза, лактоза, тальк, стеарат магния, /-цистин и а-углутаминовая кислота, при 150° и 10 (i. не сублимируются. [c.524]

На 3-й день исследования для идентификации чистой культуры у нее выявляют оксидазную активность и делают посев на среды с углеводами (табл. 2.4). Менингококки обладают оксидазой, ферментируют глюкозу и мальтозу с образованием кислоты, лактозу, сахарозу и фруктозу не ферментируют, полисахарид из сахарозы не образуют, не растут в присутствии 0,2 % желчи. Для выявления оксидазной активности на кусочек фильтровальной бумаги, смоченной каплей свежеприготовленного 1%-го раствора солянокислого парадиэтилфенилендиамина, петлей наносят культуру менингококков. Культуры, обладающие оксидазной активностью, в течение 30 — 60 с вызывают вначале порозовение, а затем почернение бумаги с реактивом. Для определения способности образовывать полисахарид культуры нейссерий засевают на бескрахмальную среду с 1 % сахарозы и инкубируют при 37 °С в течение 24 — 48 ч, после чего на рост наносят каплю йодного раствора Люголя. В случае образования полисахарида сразу развивается буро-лиловое окрашивание. [c.118]

Джонс и Маклахлан [160] при анализе различных материалов путем дистилляции в приборе Дина—Старка сравнивали результаты, получаемые при использовании бензола, толуола и петролейного эфира (т. кип. 90—100 °С). Результаты определения влаги в сливочном масле и маргарине оказались одинаковыми для этих растворителей и с правильностью 0,2—0,3% совпадали с данными, полученными при высушивании анализируемых материалов при 100 °С в воздушном сушильном шкафу с водяным обогревом и при 108 °С в воздушном сушильном шкафу. При анализе джемов, меда, пшеничных и солодовых экстрактов, бобов какао, подвергнутых ферментации, крахмала и мыла определяемое содержание воды было тем выше, чем выше температура кипения применяемого растворителя. Тем не менее все результаты укладываются в пределы широкого интервала значений, получаемых при сушке в воздушном сушильном шкафу при 100, 108 и 135 °С. Было показано, что результаты, получаемые методом дистилляции при анализе джема, меда и солодового экстракта, более надежны, чем данные, найденные при высушивании [160]. При использовании перечисленных выше переносящих агентов для моногидрата лактозы были найдены значения содержания воды соответственно 5,0 5,0 и 5,3%. Высушивание при 100 и 108 °С показало присутствие лишь 0,1 % влаги. [c.270]

Ферменты обладают строго специфичным действием. Многие из них действуют только на одно вещество. Например, углевод лактоза расщепляется только одним ферментом — лактазой,, а углевод мальтоза— трлько ферментом мальтазой. Другие ферменты действуют на группу сходных веществ, влияя на определенные химические связи. Например, липаза действует на различные жиры, расщепляя химические связи между жирными кислотами и глицерином. [c.121]

Определение восстанавливающих сахаров [8—14]. 1. К 1 мл раствора, содержащего 0,2—3 мг восстанавливающего сахара, прибавляют 2 мл насыщенного водного раствора пикриновой кислоты, 1 мл 207о-ного раствора Na2 Os и нагревают 30 мин при 100°С. После охлаждения разбавляют водой дО объема 10 мл и оптическую плотность буро-красного раствора измеряют при 455 нм. Метод пригоден для определения арабинозы, галактозы, глюкозы, крахмала, ксилозы, лактозы, мальтозы, рамнозы, фруктозы. [c.233]

Определение восстанавливающих сахаров [143—145]. 1. Смешивают 20 мл раствора, содержащего 2—12 мг сахара, с 20 мл 7,57о-ного раствора молибдата аммония и 10 мл 0,2 М раствора КН2РО4, нагревают 15—30 мин при 100 °С, затем быстро охлаждают и оптическую плотность синего раствора измеряют прк 640 нм. Наибольшая чувствительность определения — в случае глюкозы, фруктозы и инвертного сахара (0,3 г/л), наименьшая — в случае лактозы и мальтозы (6—8 г/л) это позволяет определять глюкозу и мальтозу в смеси. [c.249]

Ускоренный одноэтапный метод определения лактозоположительных кишечных палочек. После широкой проверки рекомендован к использованию ускоренный одноэтапный метод определения лактозоположительных кищечных палочек, который сокращает продолжительность исследования на 6—24 ч, а по сравнению с Меледународ-ными стандартами (1973) —на 48 ч. Помимо сокращения времени анализа, метод существенно его упрощает (под-тверлсдающая бродильная проба на лактозе заменена экспрессным оксидазным тестом). Введение оксидазного [c.133]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология