Включения липидные

Ферменты, иммобилизованные путем включения в структуру липосом, используют преимущественно в медицинских и научных целях, ибо значительная часть ферментов в клетке локализована в составе липидного матрикса биологических мембран, поэтому изучение липосом имеет большое значение для понимания закономерностей процессов жизнедеятельности в клетке. [c.90]

Соотношение основных классов липидов мембран нейронов у различных животных почти не подвержено изменениям. По-видимому, это соотношение сформировалось на самых ранних стадиях эволюции и обеспечивает как стабильность липидного бислоя, так и возможность включения в него белковых молекул. В то же время жирнокислотные компоненты мембранных липидов сильно подвержены эволюционной и сезонной изменчивости. [c.299]

Включение холестерина между цепями жирных кислот мембран нарушает их расположение и раздвигает их [6]. В кристаллической фазе это приводит к увеличению текучести, тогда как в жидкокристаллической фазе мембрана становится более жесткой, т. е. холестерин уменьшает подвижность цепей жирных кислот. Из-за ингибирования кристаллизации и увеличения текучести мембраны, содержащие >20% холестерина (такие, как миелин), практически не имеют фазового перехода. Они существуют в промежуточном полукристаллическом состоянии. Биологическое значение этого явления может заключаться в том, что подавляя взаимодействие между другими липидными молекулами, холестерин может блокировать перенос информации в мембране. [c.73]

Липосома — закрытый липидный пузырек, содержащий водную фазу используют для включения экзогенных веществ, доставляемых в клетки посредством слияния липосом с клетками. [c.496]

Гли - гранулы гликогена Ж -жгутик Кпс - капсула КСт - клеточная стенка Ли - липидные капельки ПГМ - поли-Р-гидроксимасляная кислота Пи - пили Плз - плазмида ПМ — плазматическая мембрана ПФ — гранулы полифосфата Ри - рибосомы и полисомы Я -- ядро (нуклеоид) 8 - включения серы [c.39]

Молекулы красителя из раствора со слабой растворяющей способностью (50—70%-ный этанол, на котором готовят раствор красителя) диффундируют в липидные включения, обладающие большей растворяющей способностью. Наибольшей растворяющей способностью обладают свободные липиды, поэтому освобождение липидов из комплексов в структурах клетки сопровождается усилением интенсивности окраски препарата судаковыми красителями [4]. [c.172]

В работе [45] с номош ью радикалов того же тина сделана попытка изучить профиль полярности слоя. С этой целью были подробно изучены изотропные константы СТВ радикалов II(wi, п), включенных в слои ламелярной фазы лиотропного жидкого кристалла и в липидные слои (рис. IV.13). [c.173]

Имеющиеся в настоящее время данные свидетельствуют о том, что в подавляющем большинстве случаев нитроксильные радикалы-зонды и метки локализуются в аморфных областях полимера, а не в кристаллических. Так как состояние аморфных областей полимера, по крайней мере в общем случае, должно зависеть не только от внешних условий, но и от состояния кристаллических областей полимера, то с помощью спиновых зондов, локализованных в аморфных областях, оказывается возможным следить как за непосредственными изменениями самих аморфных областей полимера, например при структурировании полимеров, так и за процессами кристаллизации [12]. Эта ситуация подобна ситуации, которая имеет место в случае биологических мембран, когда спиновые зонды, включенные в липидные области мембраны, позволяют судить и [c.194]

Наконец, многие ферменты начинают функционировать лишь после включения их в определенные клеточные структуры или присоединения к другим макромолекулам, т. е. после образования пятеричной (5°) структуры. При образовании пятеричной структуры фермент присоединяется к другим ферментам, липидным молекулам или мембранам и в результате приобретает способность к катализу. Таким образом, многие ферменты [c.17]

Клеточная оболочка состоит в основном из протеино-липидных комплексов, называемых липопротеинами. Цитоплазма — прозрачная среда, которая имеет консистенцию, изменяющуюся от подвижной жидкости до вязкого геля, и содержит видимые в микроскоп частицы. Митохондрии богаты белками и фосфолипидами. Аппарат Гольджи содержит главным образом липиды. Углеводные включения часто состоят из гликогена, а протеиновые включения — из рибонуклеопротеидов. Протоплазма обычно содержит не менее 75% воды, хлор-, фосфат- и сульфат-ионы, ионы калия, натрия, магния, кальция, связанную серу, следы меди, железа, марганца и иода, а также белки, углеводы и липиды. Большое количество белковых молекул придает протоплазме коллоидные свойства. [c.238]

Причины включения фосфолипидов в качестве одного из основных компонентов в подобные ферментные комплексы неизвестны. Полагают, что они могут способствовать определенной ориентации индивидуальных ферментов активными центрами друг к другу, благодаря чему создаются условия для проявления их максимальной активности. Кроме того, среди белков цепи переноса электронов могут присутствовать водорастворимые и водонерастворимые белки, которые при помощи фосфолипидов могут соединяться в единую функциональную систему. Фосфолипиды могут создавать неводную фазу в определенных участках клеточной среды. Считают [323], что процесс окислительного фосфорилирования в митохондриях протекает в безводном липидном матриксе и что фосфолипиды необходимы для создания среды с низкой диэлектрической постоянной. [c.381]

Взаимодействие белков с липидными монослоями обнаруживается при включении в монослои радиоактивно меченных белков (альбумин, цитохром с). Электростатические взаимодействия между белками и монослоем проявляются в виде резкого изменения сорбции белков на заряженных монослоях при отклонении от изо-электрической точки белков. В опытах с фосфолипазами показано, что электростатические взаимодействия определяют начальные этапы взаимодействия фермент — липидный монослой. Начальные этапы существенно облегчают последующую правильную стереохимическую ориентацию компонентов фермент-субстратного комплекса. [c.59]

Гипотеза о том, что фитохром действует а уровне мембран, подкрепляется также прямой демонстрацией включения фитохрома и его функционирования в искусственных липидных мембранах (см. гл. 2). Облучение таких мембран красным и дальним красным светом вызывает большие изм енения в их электрическом сопротивлении (рис 11.19). Это говорит в пользу того . [c.354]

Неожиданно было обнаружено, что фосфатидилсерин-синтетаза Е. oli прочно связывается с рибосомами [128]. Этот фермеит, обеспечивающий включение серина в фосфолипиды (стадия ж на рис. 12-8), ответствен за синтез основных липидных компонентов мембран Е. соИ. Локализация этого важного фермента иа рибосомах, возможно, каким-то образом связана с наличием общей регуляции синтеза белков и липидов. [c.246]

Л. широко используют в качестве модельных систем при изучении принципов мол. организации и механизмов функционирования биол. мембраи. Они пригодны для изучения пассивного транспорта ионов н малых молекул через липидный бислой. Изменяя состав липидов в Л., можно направленно менять св-ва мембран. Включением мембранных белков в липидный бислой получают т. наз. п р о т е о-липосомы, к-рые используют для моделирювания разнообразных ферментативных, транспортных и рецепторных ф-ций клеточных мембран. Л. используют также в иммунологич. исследованиях, вводя в них разл. антигены или ковалентно присоединяя к Л. антитела. Они представляют собой удобную модель для изучения действия на мембраны мн. лек. ср-в и др. биологически активных в-в. Во виутр. водный объем Л. (в т. ч. полимерных) можно включать лекарства, пептиды, белки и нуклеиновые к-ты, что создает возможность практич. примеиеиия Л. в качестве ср-ва доставки разных в-в в определенные органы н ткани. [c.604]

Близким к инкапсулированию методом иммобилизации можно считать включение водных растворов ферментов в липосомы, представляющие собой сферические или ламеллярные системы двойных липидных бислоев. Впервые данный способ был применен для иммобилизации ферментов Дж. Вайсманом и Дж. Сессом в 1970 г. Для получения липосом из растворов липида (чаще всего лецитина) упаривают органический растворитель. Оставшуюся тонкую пленку липидов диспергируют в водном растворе, содержащем фермент. В процессе диспергирования происходит самосборка бислойных липидных структур липосомы, содержащих включенный раствор фермента. [c.90]

Биохимические исследования показали, что пограничный липидный слой регулирует также активность кальцийза-Бисимой АТР-азы из саркоплазматиче-ского ретикулума для демонстрации того, что пограничный слой иммобилизован [35], были применены спиновые метки. На основании этих исследований был сделан вывод, что пограничный слой снижает степень нарушения бислоя за счет включения белка и что пограничный слой действует как медиатор, с помощью которого фазовые переходы и фазовые разделения в липидном бислое влияют на функционирование белка. [c.125]

Для того, чтобы происходил гидролиз ПЛС, полимер должен растворяться или, по меньщей мере, набухать. Этого можно достичь, вводя нетоксичные гидрофильные звенья, содержащие ионные группы. Для увеличения адсорбции ПЛС в липидной фазе клеточных мембран в полимер вводят липофильные группы (например, алкильные в главную цепь). Более того, отдельные функциональные группы могут присоединяться к полимеру с целью достижения специфической адсорбции ПЛС на клеточных мембранах в области целевого органа. Вообще, ПЛС распределяется по всему доступному пространству, т.е. транспортируется не только к пораженному органу, но и к непораженным органам и тканям, вызывая нежелательные побочные действия. Чтобы увеличить адсорбцию и поглощение ЛВ в нужной области, например, в случаях химиотерапии рака, необходимо присоединять к полимеру транспортную систему, несущую специфическое средство к мембране клеток целевого органа. Например, полиглутаминовая кислота с включенным противораковым средством (типа п-фенилендиамина) модифицируется присоединением иммуноглобулина в качестве транспортной системьт. [c.400]

Лри этом предполагается, что липидная везикула (липосо-ма) в водном растворе термодинамически более стабильна, чем единичная липидная молекула или плоская пленка таких молекул. При ультразвуковой обработке или при удалении детергента возникающая везикула захватывает молекулы белка, если они гидрофобны и поэтому находятся в термодинамически невыгодном окружении. У гидрофобных белков имеются две возможности стабилизации либо посредством агрегации друг с другом, либо путем включения в липидную фазу. Если экспериментатору повезет, то происходит последнее. В самое последнее время удалось приготовить большие (- 50 мкм в диаметре) везикулы, которые можно изучать электрофизиологическими методами с помощью введения в них микроэлектродов или даже методом подключения клемм [31]. [c.86]

В экспериментах по воссозданию планарных липидных мембран могут быть использованы как моно-, так и бислои. Монослой формируют на поверхности раздела вода — воздух. Каждый липид имеет характерную, зависящую от его структуры площадь поверхности, а это означает, что вместо прямого измерения поверхности монослоя для определения тенденции липида распространяться по ней, т. е. оказывать так называемое поверхностное давление, можно использовать торзионные весы. Прибор для такого рода измерений называется ванной Ленгмюра. С его помощью можно количественно следить за воссозданием липид-белковой системы, ибо, когда белок встраивается в монослой, поверхностное давление меняется в соответствии с пространственными требованиями его молекулы. Так, если какой-то белок входит в субфазу под монослоем, то изменение поверхностного давления в ванне Ленгмюра зарегистрирует его включение в мембрану. Путем изменения состава липидного монослоя можно определить, какой липид взаимодействует со специфическим белком. Например, этим методом было найдено, что ацетилхолиновый рецептор постсинаптической мембраны взаимодействует лучше с холестерином, чем с фосфолипидами [20]. Такая информация, следовательно, имеет не только теоретический интерес она может оказаться необходимой для успешного воС создания мембраны. [c.86]

В настоящее время липосомы используются как носители лекарств, так как их можно начинить различными лекарственными веществами. Состав липидов липосом можно произвольно варьировать и таю1м образом направленно изменять физико-химические свойства. Разработаны также методы включения функционально активных белков в мембрану липосомы. Такие искусственные белково-липидные структуры называются протеолипосомами. В липосомы можно вводить тканеспецифические антитела, что позволяет обеспечивать направленный транспорт включенньгх в них лекарств в определенные органы и ткани. [c.315]

Включение мембранных белков в бимолекулярные липидные мембраны открывает новые перспективы на пути дальнейшего сближения этой модельной системы с биологическими мембранами. В качестве примера успешной реконструкции функционально активных бислойных мембран можно привести слияние белоксодержащих лнпосом с уже сформированными мембранами в условиях осмотического стресса или под действием ионов Са и других агентов, сблегчаю1цих слияние мембран (рис. 303). [c.575]

Как модели, липосомы значительно ближе к биологическим мембранам, чем бислойные липидные пленки. Как и биологические мембраны, они предстввляют собой замкнутые системы, что делает их пригодными для изучения пассивного транспорта ионов и малых молекул через липидный бислой. В отличие от БЛМ, липосомы достаточно стабильны и не содержат органических растворителей. Состав липидов в липосомах можно произвольно варьировать и таким образом направленно изменять свойства мембраны. В настоящее время хорошо разработаны методы включения функционально-активных мембранных белков в липосомы. Такие искусственные белково-лнпидные структуры обычно называются протеолипо-сомами (рис. 310). Благодаря возможности реконструкции мембраны из ее основных компонентов удается моделировать ферментативные. транспортные и рецепторные функции клеточных мембран. В липосомы можно авести антигены, а также ковалентно присоединить антитела (рис. 311) и использовать их в иммунологических исследованиях. Они представляют собой удобную модель для изучения действия многих лекарственных веществ, витаминов, гормонов, антибиотиков и т. д. Как уже отмечалось, при образовании липосом водорастворимые вещества захватываются вместе с водой и попадают во внутреннее пространство липосом. Таким путем можно начинять липосомы различными веществами, включая [c.579]

В верхней части — основные структуры подвижной бактериальной клетки со жгутиками в средней левой части показаны мембранные структуры фотосинтезирующего микроба, справа — гетеротрофной бактерии. в нижней части — резервные вещества или включения / — базальные тельца — хсгутики 3 — капсула 4 — клеточная оболочка 5— цитоплазматическая мембрана б — цитоплазма 7 —рибосомы 8 — мезосома — нуклеоид /О — поли-фосфаты и — полисахаридные гранулы 12 — включения серы 3 липидные капли 14 — пластинчатые тилакоиды 5 — хроматофоры. [c.20]

Хлорофиллы локализованы в пластинках, где они, по-видимому, находятся в виде комплекса с липидом и белком. Предполагают, что хлорофилл расположен между липидом и белком таким образом, что гидрофильное ядро порфирина связано с белком, а липофильная цепь фитола — с липидными слоями. Из хлоропластов Euglena выделен комплекс хлорофилла с белком (хлоропластин), обладающий ферментативной активностью. Этот комплекс катализирует реакцию Хилла (см. стр. 261) и незначительно катализирует включение неорганического фосфата в лабильный фосфат. [c.258]

Изучение -пбдвижности спин-меченых молекул лецитина в мембранах подтверждает этот вывод. Так, в работе [170], при исследовании обменного уширения спектров ЭПР молекул спин-меченого лецитина III, включенных в липидные области мембран саркоплазматического ретикулума, обнаружено, что коэффициент поступательной диффузии этого зонда, измеренный при 37° С, составляет 6-10" смУсек, что близко к значениям для коэффициентов поступательной диффузии того же зонда вдоль липидного слоя, приведенным в разделе IV.3. К тому же скорость перехода спин-меченых молекул фосфолипида с одной стороны биологической мембраны на другую, как и в жидкокристаллических липидных бислоях, оказалась на много порядков меньше скорости поступательной диффузии молекул фосфолипида на то же рассто-ние [175]. [c.178]

На этом рисунке видно, что вне области сравнительно резких изменений величины т характер зависимостей г от температуры для зонда АХЦ6), включенного в мембраны, и липид, выделенный из мембран, практически один и тот же, поэтому можно считать, что в мембранах зонд АХ 1(6) локализован в липидных областях. Характер же зависимостей х от температуры для зонда BIV, локализованного в мембранах и липиде, вне области резких изменений отличен, в то время как при локализации радикала на мембране и на белке, выделенном из мембран, зависимость т от температуры отсутствует. На этом основании в работе [113] сделан вывод о том, что зонд ВIV в отличие от зонда АХ 1(6) преимущественно связан с белками мембран. [c.182]

В хлоропласте видны также две липидиые капли, которые служат энергетическим резервом. Серая овальная структура внизу справа-липидное включение в цитоплазме. [c.326]

Рис. 2,4. А. Схема строения прокариотической клетки (бактериальная клетка в продольном разрезе). Глн-гранулы гликогена Ж-жгутик Кпс-капсула КСт-клеточная стенка Л -липидные капельки ЯГМ-поли-Р-гидроксимаслЯ" ная кислота Яы-пили Ялз-плазмида ЯМ-плазматическая мембрана ЯФ-гранулы полифосфата Рм-рибосомы и полисомы Я-ядро (нуклеоид) 5-включения серы. Б, Различные цитоплазматические структуры.

Во многих случаях биосинтез полисахаридов и углеводсодержащих биополимеров может осуществляться только за счет НДФС (биосинтез внешней цепи кора липополисахарида грамотрицательных бактерий, олигосахаридных цепей ганглиозидов, внешних олигосахаридных фрагментов гликопротеинов). Однако в реакциях, протекающих на поверхности раздела между водной и липидной фазой биологических мембран, для транспорта углеводных остатков через богатые липидами мембраны, для включения олигосахаридных строительных блоковой т. д. незаменимую роль играют липидные переносчики. [c.221]

Механизм внутриклеточного переноса углеводородов полностью не выяснен. Однако известно, что углеводороды аккумулируются в микрогелах или липидных включениях клеток, где локализованы ферменты, катализирующие окисление алканов до органических кислот. Поэтому содержание липидов в клетках микроорганизмов, растущих на углеводородах, значительно выше по сравнению с их содержанием в клетках микроорганизмов, растущих на глюкозе. Причем уже в момент внесения микроорганизмов в среду с углеводородами содержание в них липидов удваивается. [c.251]

Предполагается, что вешества, входившие в состав коацерватов, вступали в дальнейшие химические реакции при этом происходило погло-шение коацерватами ионов металлов, в результате чего образовывались ферменты. На границе между коацерватами и внешней средой выстраивались молекулы липидов (сложные углеводороды), что приводило к образованию примитивной клеточной мембраны, обеспечивавшей коацер-ватам стабильность. В результате включения в коацерват предсушествуюшей молекулы, способной к самовоспроизведению, и внутренней перестройке покрытого липидной оболочкой ко-ацервата могла возникнуть примитивная клетка. Увеличение размеров коацерватов и их фрагментация, возможно, вели к образованию идентичных коацерватов, которые были способны поглощать больше компонентов среды, так что этот процесс мог продолжаться. Такая предположительная последовательность событий должна была привести к возникновению примитивного самовоспроизводяшегося гетеротрофного организма, питавшегося органическими веществами первичного бульона. [c.277]

Если бикарбонат метить С , то включение радиоактивности будет мерой индуцированного излучением карбок-силиро ания. После облучения из ядер печени крысы выделяли белки, нуклеиновые кислоты и липиды и в каждой фракции измеряли С . Обнаружено, что только 3—4% общей активности ассоциировано с ДНК, в то время как липидная фракция, составляющая только 2 вес. % ядра, содержала 30% всей активности. Это дает основание предполагать, что ДНК хорошо защищена от атаки радикалов, однако об этом следует пока говорить осторожно, так как нет уверенности в эффективности применяемого метода. Некоторые карбоксильные группы могли быть лабильными и поэтому выпадать из измерения после изолирования, и радиоактивность в липидной фракции могла быть просто связана с большой поверхностью внешних мембран, соприкасающихся с окружающей средой. Однако этот метод следует считать многообещающим для обнаружения местоположения радикалов, образованных в биологическом веществе. [c.126]

В связи с этим. можно упомянуть, что соединения, под действием которых происходит отделение липидных слоев мембраны (например, пары бензина [157], эфир и хлороформ [137, 525]), могут вызывать заметное увеличение проницаемости мембраны, если только они применяются в подходящих концентрациях. Основываясь на этом, Кюйпер [4151 пришел к выводу, что включение молекул с ненасыщенными [c.198]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология