Цитрат для буфера

Используя взаимодействие ионов с комплексообразователем, можно влиять на подвижность. В то время как добавка оксалат-ионов к буферу не оказывает никакого влияния, цитрат-ионы резко понижают подвижность ионов щелочно-земельных металлов. Например, 100 мкМ цитрата достаточно для элюирования кальция и магния [c.60]

Буфер 30 мМ цитрат, pH 2.8 пробы А- лизоцим, В - РНК, С - [c.76]

Медь и молибден могут быть также удалены из смеси растворов 2М КС1 и ацетатного буфера медь и свинец — из электролита, содержащего цитрат, тартрат (0,05 М) и ацетат натрия (1,6 М) ири напряжении 1,6 е и температуре 100° С. После разделения электролизом рений определяют в растворе полярографически. Потерь рения не наблюдается, ошибка не превышает 3,1% [237]. [c.181]

Пиридил-азо)-2-нафтол (ПАН). Обратное титрование солью Си(П). Величина pH 5, с ацетатным буфером, 70—80°С или pH 4, с ацетатным буфером и метанолом, 70 °С. Переход окраски от желтой к красно-фиолетовой. 8п(П), ТЬ(1У), 2г(1У) маскируют цитратом. [c.238]

Цитрат-сульфатный буфер, рН = =4,0 декстрин, 100° С. ... [c.48]

Анализ белковых гидролизатов проводят следующим образом. Утром включают анализатор, нагревают до рабочей температуры термостат и баню реактора, готовят буферные растворы и реагенты. Образец растворяют в 0,2 н. буферном растворе цитрата натрия с pH 2,2 и аликвотную часть в 2 мл полученного раствора вводят в короткую колонку. При этом вначале удаляют из колонки избыток буферного раствора, а затем пипеткой с тонким концом осторожно (по стенке) вводят раствор образца. Впитывание образца проводят при избыточном давлении газа (азот или воздух) 0,3 атм. Стенки колонки ополаскивают тремя порциями по 0,5 мл 0,2 н. буферного раствора цитрата натрия, заполняют элюирующим буфером верхнюю часть колонки, плотно закрывают, включают микронасос и реле времени. По установлении рабочего давления определяют скорость потока в системе. Через час включают насос подачи нингидринового реагента. К этому времени все кислые и нейтральные аминокислоты уже элюированы из колонки. После установления рабочего давления определяют скорость потока и включают самописец. Анализ основных аминокислот заканчивается через 5 ч. После запуска короткой колонки вторую половину раствора образца (в 2 мл буфера) вводят в колонку длиной 150 см. По окончании анализа основных аминокислот включают подачу элюента на длинную колонку (150 см). Одновременно включают реле отсчета времени анализа, реле смены буфера (установленное на 8 ч 20 мин) и реле окончания [c.319]

К середине следующего дня в рабочем режиме находятся короткая колонка длиной 15 см и вторая колонка длиной 150 см. Колонку длиной 150 см регенерируют по следующей схеме. Открывают верх колонки, удаляют пипеткой избыток буферного раствора, заполняют верхнюю часть 0,2 н. раствором гидроокиси натрия, закрывают и промывают водным раствором щелочи при избыточном давлении 0,3 атм. (азот или воздух) или при помощи микронасоса со скоростью подачи 30 мл/ч. После того как фронт раствора гидроокиси натрия достигнет середины колонки, включают подачу 0,2 н. буферного раствора цитрата натрия с pH 3,25. Регенерацию нитратным буфером ведут в течение ночи при избыточном давлении 0,3 атм, при подаче буфера микронасосом промывание продолжается всего 5 ч. Короткую колонку длиной 15,хм не регенерируют. [c.320]

Буферные растворы готовят из аналитически чистых реактивов. Вначале цитратные буферные растворы готовили из лимонной кислоты и гидроокиси натрия. Позднее было показано, что буфер удобно готовить на основе цитрата натрия, поскольку эта соль не поглощает аммиака и, следовательно, не смещает базовую ЛИНИЮ. При работе с катионитами скорость элюирования зависит от концентрации катиона в элюенте, что следует учитывать при приготовлении буферных растворов. Состав стандартных буферных растворов приведен в табл. 32.3—32.6. [c.335]

Одноколоночный метод анализа, смола JR-30. При постоянной температуре колонки, концентрации цитрат-ионов и ионов натрия и скорости течения буфера варьируют величину pH первого буфера. Ее увеличение с 3,28 до 3,31 ухудшает разделение треонина и серина. Цистин элюируется быстрее, но при этом ухудшается разделение глицина и аланина. Увеличение pH второго буфера с 4,30 до 4,50 при прочих неизменных условиях анализа ухудшает разделение как метионина и изолейцина, так и изолейцина и лейцина. Увеличение pH третьего буфера позволяет элюировать гистидин быстрее. [c.41]

Рабочий интервал значений pH прц определении фторида находится в области pH 4,5—12 для 10 —10 М фторида, а для меньших концентраций фторида — в области pH 4,5—8. Положительный дрейф потенциала обусловлен протонизацией фторида с образованием НР и НЬ 2 . В щелочных растворах происходит отрицательное отклонение потенциала вследствие замещения ионов фторида в кристаллической решетке ЬаРз ионами гидроксила, так как величины их ионных радиусов близки. Эти помехи в случае необходимости можно устранить, используя специальные буферные смеси, например буфер регулирования общей ионной силы (БРОИС) с pH 5,0—5,5, содержащий 0,25 М СНзСООН 0,75 М СНзСООЫа 1,0 М КаС1 и 10 3 М цитрата натрия (для маскирования железа и алюминия). [c.121]

В современных аминекислотных анализаторах используются мелкозернистые катионообменники. Элюция идет при повышенном давлении, на большой скорости, так что весь анализ занимает около часа. Используются колонки длиной 20—30 см. Все фракционирование осуществляется на одной колонке при повышенной температуре (50— ТО ). Используются, как правило, три ступени смены элюента и ступенчатые изменения температуры элюцип, прпчем моменты изменения последней могут и не совпадать с моментами смены буфера. Десорбирующая способность элюента растет от ступени к ступени за счет увеличения pH от 3,2—3,5 (что обеспечивает отставание Glu от Asp п даже от Thr и Ser) и до 10, если ионная сила элюента остается неизменной. В других вариантах элюции от ступени к ступени увеличивается и концентрация соли (вплоть до 1 —1,5 М) тогда увеличение pH ограничивается заметно более скромными цифрами, как можно видеть из приведенных ниже примеров. Использование в качестве солп цитрата натрия (или лития) удобно для кислых значений pH кроме того, он прозрачен в УФ-области спектра. Титровать раствор цитрата натрия до нужного значения pH можно с помощью NaOH или НС1. Молярность соли надо оценивать по суммарной кон- [c.517]

Виды титрования. Прямое титрование обычно осуществляется динатриевой солью этилендиаминтетрауксусной кислоты ЫагНгУ, которую легко получить в чистом виде. Если необходимо предотвратить осаждение гидроокисей металлов или их основных солей, прибавляют дополнительные комплексанты, например цитрат, тартрат-иоцы или триэтаноламин. Если титрование удобно проводить при pH 9—10, то большей частью добавляют буфер- [c.267]

Так как величины Кт я V могут по-разному зависеть от pH, исследование, проводимое при ненасыщающих концентрациях субстрата, дает информацию, которую трудно интерпретировать. Поэтому необходима постановка экспериментов по определению влияния pH на Кт. и V. Следует помнить, что концентрация субстрата, являющаяся насыщающей при одном значении pH, при другом может йе быть ею. Выбирая буфер, нужно учитывать, чтобы его рК был по возможности близок к оптимуму pH реакции, а также иметь в виду, что при одном и том же pH в разных буферах каталитическая активность может различаться. Отдельные ионы могут оказывать активирующее или ингибирующее влияние на фермент. Поливалентные анионы (фосфат, сульфат, цитрат) могут конкурировать с отрицательно заряженным субстратом, вызывая ингибирование реакции. Отдельные компоненты буфера, например ЭДТА, гистидин, цитрат, могут связывать ионы металлов, важные для активности некоторых ферментов. Следует иметь в виду, что ионная сила раствора оказывает влияние на активность фермента. Поэтому, изменяя состав реакционной среды, необходимо обеспечивать постоянство ионной силы. [c.211]

Хроматографический метод разделения титана, циркония и тория на катионите дауэкс-50, предложенный Брауном и Ри-мансм [481], основан на фракционированном вымывании элементов при pH 2,00 буфером лимонная кислота — цитрат аммония, который используется в качестве комплексообразующего агента. При этих условиях десорбируются Т1 и 7г, а ТЬ прочно удерживается смолой даже при пропускании 10 л десорбента. После отделения Т и 7г торий вымывают 0,0520 М раствором двузамещенного цитрата аммония с pH 4,98. Разделение количественное. [c.127]

Для спектрофотометрического определения галлия с кверцетином [5] в мерные колбы емкостью 25 адл, содержащие от 2,5 до 20 мкг Оа, прибавляют 1 мл 0,1%-ного раствора кверцетина в спирте, 22% (по объему) СН3ОН или С2Н5ОН, 5 мл ацетатного буфера (pH 4) и разбавляют водой до метки. Через 15—20 мин. измеряют оптические плотности окрашенных растворов при 455 нм по отношению к воде. Чувствительность реакции 0,005 мкг Оа см . Определению мешают алюминий, фторид, оксалат, цитрат, тартрат не мешают цинк и кадмий (до соотношений Оа 2п 1 50, Са Сё 1 30). [c.117]

Рейт и Дийк [1091] титровали висмут (от 2 до 200 у) раствором дити-аона в хлороформе при pH 4 в растворе, не содержащем цианида и цитрата. В качестве буфера применяли смесь из ацетата и уксусной кислоты. В присутствии сравнительно больших количеств свинца (около 100 у) для висмута получаются слишком высокие результаты. В работе описан ход анализа, предусматривающий отделение висмута от свинца, основанное на различии свойств их дитизонатов. Потребление раствора дитизона и цвет дитизоната висмута сильно зависят от pH водной фазы. Если висмут титровать при pH 7,5, то раствора дитизона расходуется в два раза меньше, чем при титровании такого же количества висмута при pH 4. Цвет дитизоната висмута в первом случае глубококрасный, во втором оранжевый. На основании этих наблюдений авторы приходят к выводу о существовании двух дитизонатов висмута. [c.137]

Предложено [1542] также проводить экстракцию дитизоната ртути ксилолом в присутствии маскирующих агентов (ЭДТА, цитрат), с добавлением хлорацетата в качестве буфера. После обработки НС1 дитизонат ртути затем экстрагируется ССЬ из той же самой среды. [c.55]

В работе [581] предложен быстрый и точный метод определения микроколичеств ртути с %-(диметиламино)бензилиденроданином, основанный на образовании комплекса Нд(ВВК)2 в нейтральных растворах в присутствии избытка цитрат-ионов без отделения посторонних ионов металлов (Са, Ва, Мд, 2п, Мп, N1, Со, А], Сг, СИ, и, Гв +, ТЬ, Т1+, Си, Се +, ЗЬ +, В1 +). Присутствие Аи +, Р1 +, РЬ + и Ag+ влияет на определение ртути данным методом. Конечная точка определяется по первой точке максимальной плотности и всегда в точке, соответствующей количественному образованию Нд(ВВК)2. Когда определение проводят в основных цитратных растворах, фосфат нужно использовать как буфер (pH 9), так как в присутствии ионов NH осаждения не происходит. Величина максимальной плотности получается в этом случае (pH 9) несколько ниже, чем при pH 7, и образуется соединение состава Нд2(ВВК)з. [c.117]

Для устранения мешающего влияния посторонних элементов применяют комплексон III и 1,2-диаминциклогексантетрауксус-ную кислоту. Чтобы предотвратить осаждение бериллия в конечной точке, добавляют цитрат натрия. Перед титрованием следует определить pH анализируемых растворов бериллия путем титрования отдельной пробы 1 М раствором NaOH до щелочной реакции по тимоловому синему (pH 2,5—3,0). Кроме того, перед титрованием к анализируемому раствору прибавляют установленное количество 1 М раствора NaOH и избыток, равный 1,0 мл (в расчете на выделяющуюся в результате реакции бериллия с сульфосалицилатом кислоту). В качестве буфера рекомендован [c.61]

Навеску руды, содержащую 1—10 мкг 1п, в стакане вместимостью 100 мл растворяют в нескольких миллилитрах концентрированной HNO3 и выпаривают досуха. Если в руде содержится Sn, то для растворения применяют концентрированную НС1, к которой добавлено несколько капель брома. Сухой остаток смачивают несколькими каплями концентрированной HNO3 (или НС1, при наличии Sn), добавляют 0,5 мл 20 %-ного раствора цитрата натрия и 10 мл воды. Добавляют две капли раствора метилоранжа и доводят pH раствора до 4 добавкой аммиака (1 4). Затем добавляют 25 мл буферного раствора с pH 4, переводят раствор в делительную воронку, прибавляют 5 мл 0,3 %-ного раствора 8-оксихинолина в хлороформе и экстрагируют 1—2 мин. После разделения промывают хлороформенную фазу 25 мл буферного раствора и повторяют экстракцию водной фазы тремя порциями по 5 мл раствора 8-оксихинолина. После этого встряхивают с буферным раствором. Раствор, содержащий буфер, встряхивают еще раз с 5 мл раствора 8-окснхинолина и объединяют все органические экстракты. [c.67]

Ионофорез в тонких слоях до настояш его времени применяли только для разделения низкомолекулярных веш еств. Пастуска и Тринкс [195] специально занимались разделением органических кислот и опубликовали величины В) 36 веш еств на силикагеле Г и кизельгуре Г (боратный буфер), Наши собственные опыты охватывают разделение аминов, аминокислот [123] (буфер цитрат натрия, pH 3,8), эфиров фосфорной кислоты (буфер цитрат натрия, pH 3,8) и сахаров (буфер борат натрия, pH 12,5 и 10) на силикагеле Г, кизельгуре Г и окиси алюминия Г. [c.431]

Осаждение из муравьинокислого раствора. Осаждение сульфида цинка из растворов, содержащих свободную муравьиную кислоту, цитрат аммония и формиат аммония в качестве буферов для поддержания требуемой концентрации ионов водорода во все время обработки сероводородом оказалось особенно пригодным для определения цинка в присутствии больших количеств алюминия, например при анализе алюминиевых сплавов. Точность метода, по данным его авторов, колеблется в пределах от 0,5 до 1 части на 1000. Отделение цинка от марганца этим методом почти совершенное. Загрязнение сульфида цинка железом незначительное, но в тех случаях, когда содержание железа в растворе превышает одну десятую содержания цинка, следует прибавлять избыток в 20 мл 23,6 М муравьиной Ткислоты. Прибавление роданида аммония не улучшает отделения. Избыток муравьиной кислоты требуется также и в присутствии никеля и кобал]>та, но однократное осаждение, особенно в присутствии кобальта, не дает таких удовлетворительных результатов, как при отделении от железе [c.482]

Неподвижная фаза сефадекс G-10, <40 мкм, емкость по воде 0,96 колонка 1X142 см (Perspex), свободный объем 41 мл, внутренний объем 43 мл. Условия анализа 25 °С, скорость подачи 10 мл/ч. Системы растворителей 1) 0.2 М уксусная кислота, pH 2,7, свежеприготовленная колонка 2) 0,2 М уксусная кислота, pH 2,7, колонка, бывшая в употреблении 3) 0,2 М уксусная ки-слота+0,5 М хлорида натрия 4) 0,2 М уксусная кислота+2,0 М раствор хлорида натрия 5) 0,1 или 0,3 М эквимолярный пиридинацетатный буфер, pH 5,0 6) 0,35 М буферный раствор цитрата натрия, pH 5,28 7) 1,0 М пи-ридин+О.ОЗ М уксусная кислота, pH 6,7 8) 1,0 пиридин+0,5 М раствор хлорида натрия, pH 8,5 9) 0,5 М тряс—сульфатный буфер, pH 8,07 10) 0,01 М раствор гидроокиси натрия. Обнаружение реакция с нингидрином. Образец [c.350]

Для анализа 50 мл образца смешивают с 10 мл радиационного буфера (раствор 10%-ный по КС и 5%-ный по двузаме-щенному цитрату аммония), разбавляют до 100 мл и фотометрируют с помощью спектрофотометра по резонансной линии. Фон определяют при 458 ммк. Стандартные растворы содержат 1, 3, 5, 7 и 10 мкг1мл Sr и 10% по объему радиационного буфера . [c.248]

Извлечение НК 0,14 М Na l из растительных тканей (экстракт 1). Предварительно взвешенный растительный материал для удаления экзогенных нуклеаз и микрофлоры выдерживают в течение 3 минут в 0,5%-ном водном растворе гипохлорита натрия. Затем ткань тщательно отмывают холодной дистиллированной водой. После отмывки материал быстро растирают в ступке с песком на холоду в смеси 0,14 М Na I — 0,03 М цитрат натрия — 0,05 М трис-НС]-буфер pH 8,0 — бентонит (1 мг мл). Гомогенную массу центрифугируют 10 минут при 2000 g и температуре от О до 1°. При этом бентонит не должен выпадать в осадок. [c.64]

Приготовление цитратного буфера pH 3,5. Цитратный буфер 0,022 М готовят из двух маточных растворов раствора А — 0,1 М СбНвОг-НгО (лимонная кислота)—21,01 г лимонной кислоты растворяют в воде и доводят объем до 1 л, раствора Б —0,1 М СбН507Маз-8Н20 (цитрат натрия) —40,2 г цитрата натрия растворяют и доводят объем до 1 л. [c.96]

Скорость элюирования аминокислот и пептидов в значительной степени определяется составом и величиной pH буферов. Стейн и Мур [1] сообщили об использовании соляной кислоты увеличивающейся нормальности для элюирования аминокислот из колонки, заполненной смолой типа дауэкс-50 (сильнокислотный сульфокатионит). В дальнейшем они установили, что буферные растворы цитрата и ацетата натрия имеют определенные преимущества, поскольку при их использовании меньше разрушаются и теряются лабильные аминокислоты, легче осуществляется анализ вытекающего из колонки эффлюента с помощью нингидриновой реакции. Они показали также, что свойства элюента можно изменять добавлением органических растворителей. Так, при добавлении к буферным растворам бензилового спирта в количестве 1 % пики ароматических аминокислот становятся более острыми. Пропиловый спирт ускоряет элюирование преимущественно таких аминокислот, которые имеют большие неполярные боковые цепочки [2]. [c.22]

Одноколоночный метод анализа, смола иЯ-40. Поддерживая постоянными температуру колонки, концентрацию ионов натрия и цитрат-ионов и скорость течения буфера, варьируют величину pH первого буфера. Понижение pH с 3,545 до 3,515 ухудшает разделение треонина и серина (отношение высоты впадины к высоте пика равно 0,07 определение этого понятия см. в разд. 1.5.1). Цистин элюируется из колонки медленнее, но разделение серина и глутаминовой кислоты улучшается приблизительно до 0,19. Увеличение pH второго буфера с 4,25 до 4,30 при прочих неизменных условиях анализа ухудшает разделение изолейцина и лейцина. При увеличении pH третьего буфера гистидин элюируется быстрее. [c.41]

Кислые и нейтральные аминокислоты, смола UR-40. При постоянных значениях температуры колонки, концентрации ионов натрия и цитрат-ионов и постоянной скорости течения буфера увеличение pH первого натрийцитратного буфера (pH 3,175 0,18 и. Na+, 0,133 М цитрат) на 0,010 единиц pH улучшает разделение аспарагиновой кислоты и треонина до величины 0,045 (отношение высоты впадины к высоте пика). В результате увеличения pH буфера на 0,011 цистин выходит быстрее на 1 мин, раньше элюируется глутаминовая кислота, но, кроме того, сжимаются пики трех аминокислот — пролина, глутаминовой кислоты и цитруллина. При увеличении pH буфера ухудшается разделение глицина и аланина. [c.42]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология