Амины аммиак вода, разделение

Тонкослойная хроматография успешно применяется для разделения ДНФ-аминокислот [24]. Для разделения ДНФ-амино-кислот, растворимых в воде и кислотах, применяют метод восходящей хроматографии в системе н.-пропанол—34%-й= раствор аммиака (7 3). Результаты хроматографии представлены в табл. 7. [c.310]

Насыщение газа-носителя летучими полярными веществами, водой, муравьиной кислотой, аммиаком при разделении спиртов, кислот, аминов соответственно. [c.197]

Экономичность синтеза аминов во многом зависит от системы регенерации непрореагировавшего аммиака, который всегда берут в значительном избытке к алкилирующему реагенту. Схема регенерации с получением жидкого аммиака и возвращением его на реакцию также приведена на рис. 77. Газообразный аммиак со стадии разделения продуктов реакции проходит последовательно несколько абсорберов 11. Только последний из них орошается чистой водой, а предыдущие — все более концентрированной аммиачной водой, подаваемой из куба последующего абсорбера. Тепло, выделяющееся при растворении, отводится в выносных холодильниках (на схеме не изображены). Из последнего абсорбера остаточный газ, содержащий только следы аммиака, сбрасывается в атмосферу, а жидкость из куба первого аппарата представляет собой концентрированный водный раствор аммиака. Насос 12 сжимает его примерно до 14 ат, что необходимо для последующей конденсации аммиака при охлаждении водой. Полученная аммиачная вода подогревается в теплообменнике 13 кубовой жидкостью из колонны /4 и поступает иа одну из тарелок этой колонны, в которой происходит разделение аммиака и воды. Кубовая жидкость (вода) отдает свое тепло аммиачной воде, идущей на ректификацию, в теплообменнике 13 и после дополнительного охлаждения возвращается на абсорбцию аммиака. Пары аммиака с верха колонны 14 конденсируются в дефлегматоре 15, причем часть конденсата возвращается в качестве флегмы, а остальное количество собирается в емкости 16 и оттуда снова направляется на реакцию. [c.388]

Хромосорб 101 рекомендуется для быстрого эффективного разделения жирных кислот, гликолей, спиртов, алканов, эфиров, альдегидов хромосорб 102 — для анализа легких и постоянных газов и соединений низкого молекулярного веса хромосорб 103 — для разделения аминов, амидов, спиртов, альдегидов и кетонов. Хромосорб 104 — высокополярный полимерный сорбент — обеспечивает эффективное разделение нитрилов, нитропарафинов, аммиака и окислов азота. Сорбент промежуточной полярности хромосорб 105 разделяет водные смеси, содержащие формальдегид и ацетилен, от низших углеводородов, воду от органических соединений. Неполярный сорбент хромосорб 106 обеспечивает эффективное отделение кислот Сг— s от спиртов Сг— s, умеренно полярный хромосорб 107 — хорошее отделение формалина и ацетилена от низших углеводородов. [c.8]

Низшие амины подобно аммиаку очень хорошо растворяются в воде с образованием щелочных растворов. По мере повышения молекулярного веса растворимость аминов в воде уменьшается. При ироведении газового анализа следует учитывать эту хорошую растворимость низших аминов в воде для отделения их от других газов. Разделение упомянутых выше газообразных аминов может быть проведено хроматографическим методом (см. ниже). [c.74]

Иногда для деактивации носителя и получения симметричных пиков проводят насыщение газа-носителя летучими полярными веществами, в частности водой для разделения спиртов [104], муравьиной кислотой для разделения жирных кислот [105], аммиаком для разделения аминов [106] и т. п. Все эти вещества-деактиваторы не регистрируются ионизационно-пламенным детектором. Для анализа соединений, содержащих азот, носитель [c.93]

Для определения в воздухе аммиака, монометил-, диметил- и триметиламина на уровне 0,3 мг/м пробу отбирали на силикагель и десорбировали 0,2 и серной кислотой, растворенной в смеси метанола и воды. Экстракт анализировали на разделительной колонке с сополимером стирола и дивинилбензола, содержащим поверхностные сульфонатные группы. Разделение аминов показано на рис. 11.30. [c.175]

Растворяют 2,50 г щавелево-ниобиевой кислоты в 50 мл соляной кислоты (уд. вес 1,19), переносят в делительную воронку, приливают 20 мл 8%-ного хлороформного раствора трибензиламина, встряхивают 5 минут и оставляют стоять до разделения фаз. Затем отделяют хлороформный раствор, промывают его 5 мл соляной кислоты (уд. вес 1,19) путем встряхивания в течение 3 минут и после отстаивания разделяют растворы. Органический раствор помещают в делитель-) ную воронку, приливают 20 мл воды и встряхивают 5 минут. Отделяют водный слой, а хлороформный еще раз встряхивают с 20 мл воды. Хлороформный раствор амина используют для новой экстракции. Водные растворы сливают вместе, приливают по каплям 25%-ный раствор аммиака до коагуляции гидроокиси ниобия. Затем осадок отфильтровывают через бумажный фильтр и прокаливают до пятиокиси ниобия. В полученной таким образом пятиокиси ниобия тантал спектральным методом не обнаруживается. Для получения больших количеств пятиокиси ниобия соответственно увеличивается загрузка всех реактивов. [c.120]

Трудности, с которыми было сопряжено освоение процессов с жидкостным и горячим газовым рециклом, с одной стороны, а также экспериментальное выявление отрицательного влияния воды на степень превращения карбамата аммония в карбамид, с другой, послужили стимулом к изысканию иных путей возврата в цикл аммиака и двуокиси углерода, не превращенных в карбамид. В 1936 г. Лоуренсом [37] был предложен способ возврата в цикл синтеза двуокиси углерода, основанный на поглощении из газов дистилляции аммиака водными растворами сульфата, нитрата либо фосфата аммония, содержащими соответственно серную, азотную либо фосфорную кислоты. Одновременно фирмой Фарбениндустри [38] был запатентован способ отделения кислых газов (СОа, НзЗ) от аммиака с помощью аминов. Позднее были разработаны и другие способы разделения газовых смесей, основанные на избирательном поглощении аммиака или двуокиси углерода растворами различных веществ соды [39—42], поташа [43—45], аминов [46—49], многоосновных кислот [50], гидроокисей щелочноземельных металлов [51], нитрата аммония [52—55], нитрата аммония и карбамида [53, 56]. [c.208]

Порапак N успешно применяется для определения аммиака, формальдегида в водных растворах и для отделения ацетилена от других Сг-углеводородов. Для порапака R характерны высокая эффективность разделения аминов, нитрилов, нитросоединений, способность разделять воду и высокореакционные неорганические вещества, такие, как СЬ и H I. Слабополярный пористый полимер порапак S рекомендуется для анализа карбонильных соединений, нормальных и разветвленных спиртов, галогенсодержащих веществ. Карбоновые кислоты, спирты, амины удерживаются на нем сильнее, чем на порапаке Q. Наиболее полярный порапак Т показывает большие объемы удерживания и высокую эффективность разделения кислот и аминов. [c.8]

Пример подобного разделения показан на рис. П-11. Эта хроматограмма иллюстрирует разделение смеси аминов и нитрилов, выделенных из конденсата одной парофазной реакции, в которой также образуются некоторые количества аммиака и воды. Разделение производилось в трубке длиной 3,75 м с внутренним диаметром 0,5 см, содержащей карбовакс-400, нанесенный в количестве 20% на промытый щелочью целит, при температуре 80° С. В прибор вводилось около 5 мкл смеси при скорости потока гелия 75 см 1мин. [c.69]

Амины. Для разделения смеси аминов (триптамина, тирамина, серотонина, гистамина) и аминокислот (триптофана, тирозина, гистидина) использовали [177] целлюлозу марки FND элюирующий раствор — изопропиловый спирт — 25%-ный раствор аммиака — вода (80 10 10). [c.112]

Принцип распределительной хроматографии основан на различии в коэффициентах распределения аминокислот между водой и органическим растворителем. Особенность метода распределительной хроматографии на бумаге по сравнению с обычной экстракцией ам.инокислот из водного раствора органическим растворителем заключается в том, что одну из фаз, чаще всего водную, помещают на какой-нибудь инертный твердый носитель, а органический растворитель — подвижная фаза,— проходя через первую, извлекает и распределяет аминокислоты на бумаге в соответствии с их коэффициентами распределения. Положение аминокислот на бумаге определяют по отношению скорости движения аминокислоты скорости движения фронта растворителя и обозначают Rf. Величина за висит в первую очередь от строения аминокислоты, затем от системы растворителей, pH среды и сорта бумаги, Чем полярнее аминокислота, тем меньше она растворяется в органических растворителях и тем меньше ее R . Увеличение длины углеродной цепи повышает . Введение в молекулу полярных групп, например, гидроксильной, аминной или карбоксильной понижает Rf Так, Rf фенилаланина в системе фенол/вода = 0,85, а тирозиит 0,51. Другие примеры изменения в зависимости от строения аминокислоты представлены на рис. 3 и 4. Подбирая соответствующие смеси растворителей, можно провести достаточно тонкое разделение аминокислот. Наиболее часто пользуются для такого разделения системами вода — фенол — аммиа вода — бутапол — уксусная кислота бутанол — аммиак — коллидин и т. д. Разделение можно проводить на одномерной или двумерной хроматограммах. Можно пользоваться также различными типами распределительной хроматографии на бумаге — нисходящей, восходящей и радиальной. Величины Rt для каждой из систем растворителей оказываются постоянными при соблюдении [c.479]

Поверхность диатомитовых носителей имеет довольно высокую способность к специфической адсорбции и хемосорбции. Для ее подавления используют различные методы. Обычно считается, что некоторая дезактивация происходит при нанесении жидких фаз, особенно сильнополярных, молекулы которых вступают в водородную связь с поверхностными гидроксилами. Нанесение неполярных и слабополярных жидких-фаз не приводит к дезактивации поверхности, В этом случае иногда к неполярной жидкой фазе добавляют небольшие количества полярных жидкостей, чаще всего поверхностно-активных, которые блокируют наиболее активные участки поверхности. Иногда для дезактивации носителя и получения симметричных пиков газ-носитель насыщают летучими полярными веществами, в частности, водой для разделения спиртов, муравьиной кислотой для разделения жирных кислот, аммиаком для разделения аминов и т. д. Все эти вещества-дезактиваторы не регистрируются ионизационно-пламенным детектором. Для анализа основных соединений, содержащих азот (аминов, диаминов, пиридинов, хинолинов, гуанидинов, меламинов, эпоксисоединений и др.), рекомендуется подвергать носитель щелочной обработке, например, при разделении аминов проводят обработку раствором аммиака. [c.153]

Разделение и идентификацию микроколичеств аминофенолов можно проводить методами бумажной хроматографии. Хотя прошло более 10 лет с тех пор, как впервые бумажная хроматография была применена для разделения симпатомиметических аминов (Викстрём и Сальвезен [130]), но пирокатихин-амины все еще трудно разделять и идентифицировать этими методами (Вейс и Росси [131]). Наиболее часто в качестве растворителя используют смесь бутанол — уксусная кислота — вода некоторые исследователи применяли хлоруксусную, муравьиную или соляную кислоту вместо уксусной, но с этими кислотами образуется множество пятен (Беккетт [132]). В двумерной хроматографии в качестве второго растворителя часто используют смесь изопропиловый спирт — концентрированный аммиак — вода (8 1 1) недавно Смит [133] предложил использовать трет-амиловый спирт—17%-ный метиламин (4 1) и либо изобутанол — водный пиридиновый буфер (4 1), pH — 4 [буфер, представляющий собой смесь вода — пиридин — уксусная кислота (100 4 1), pH == 4], либо нитробутан — 70%-ный водный раствор уксусной кислоты (9 4). Аминофенолы, невидимые в ультрафиолетовом свете, можно обнаружить и частично идентифицировать путем опрыскивания смесями, применяемыми обычно для проявления фенолов, например смесями хлорное железо — феррицианид калия или диазотированные амины, или реагентом на амины — нингидрином. Феррицианид калия (0,44% в буфере при pH 8) используют для обнаружения адреналина, норадреналина и родственных Н-ал кил замещенных соединений, которые после окисления дают сильно флуоресцирующие адренохромы. Для обнаружения производных индола можно использовать п-диметиламинобензальдегид. [c.62]

Важнейшим из числа органических носителей является политетрафторэтилен (ПТФЭ). Этот материал превосходит другие полимеры по термостойкости, и его можно использовать в газовой хроматографии при температурах до 200 °С. Выше указанной температуры форма частиц носителя меняется, вследствие чего падает эффективность разделения, а при более высоких температурах, начиная с 290 °С, материал разлагается, выделяя перфторизобутен (СРз)2С = Ср2, еще более ядовитый, чем фосген. Поэтому перегревания полимера до такой температуры допускать нельзя. Основным преимуществом этого материала является чрезвычайно низкая химическая активность он реагирует только с расплавленными щелочными металлами и элементным фтором и не проявляет никакой ни каталитической, ни адсорбционной активности. В связи с этим политетрафторэтилен представляет собой наилучший носитель для разделения сильнополярных и реакционноспособных соединений, которые при хроматографировании на нем дают симметричные пики (рис. IV.7—IV.9). На этом носителе можно исследовать не только спирты [37], жирные кислоты [88], хлорфенолы [89], амины, аммиак, а также воду [37, 90], но даже сероводород и диоксид серы [14] (рис. IV.7), галогеноводороды [91], трихлорид бора [87], галогениды фосфора [92], пиридин, хлорсиланы, аминосиланы [23] (рис. IV.8) и даже такие агрессивные вещества, как GIF, I2, IF3 и Вг2 [93]. [c.205]

Метод азеотропной ректификации позволяет решить трудную задачу разделения смесей метиламинов и аммиака. Предложено осуществлять разделение этих смесей, отгоняя триме-тиламин в виде азеотропа с аммиаком, который выделяется из этого азеотропа путем отмывки водой [356]. Для разделения смесей первичных, вторичных и третичных ароматических аминов рекомендуется иопользовать метод экстрактивной ректификации 1357]. Разделяющим агентом является парафиновое масло, увеличивающее относительную летучесть аяилина по сравнению с этиланилином и последнего — по сравнению с диэтил-анилином. [c.288]

При разделении аминов и аммиака на порапаках Р и Р не удается добиться удовлетворительной формы пиков [146]. На полимерах, модифицированных путем нанесения таких жидких фаз, как тетраэтиленпентамин или полиэтиленимин, возможно определение воды. Вытеснение влаги и свободного аммиака из расплавленного нитрита натрия продуванием воздуха и последующий газохроматографический анализ позволяют быстро определить pH и влажность этого материала [37 ]. Обермиллер и Шарлье [218] установили, что на колонках с порапаком Q (50—80 меш) возможен анализ смеси постоянных газов с оксидом углерода и газами, содержащими серу. Эти авторы использовали хроматографическую систему с двумя колонками. На колонке длиной 2 м с внутренним диаметром 1,2 мм при 75 °С разделяли СО , НаЗ, 50а и Н2О ( горячая колонка ), а на колонке длиной 10 м при —65 °С — Аг, Оа, N2 и СО. Полный анализ такой смеси осуществляли с помощью переносного хроматографа с двумя колонками и детектором по теплопроводности на термисторах. Для создания оптимальных условий отделения ЗОа путем соответствующего кондиционирования колонки в газ-носитель (гелий) добавляли ЗОа в концентрации 100 млн . [c.309]

Аниониты представляют собой полимерные материалы, содержащие аминные группы. При промывании водой (или кислотой) анионит поглощает водородные ионы, тогда как ОН-ионы воды (или анион кислоты) притягиваются к поверхности, но остаются подвижными, т. е. могут обмениваться на другие анионы. Таким образом, химические свойства анионита похожи на свойства аммиака, если бы последний был не растворим в воде. Аниониты применяются не только для разделения анионов. Некоторые аниониты поглощают, например, цинк, образуя с ним комплексы типа аммиакатов. Далее, для отделения некоторых металлов используют их способность давать ацидокомплексы. Так, например, для разделения алюминия и железа прибавляют концентрированную соляную кислоту до концентрации 2г-экв1л. При этом железо образует ацидокомплекс НРеС , а алюминий остается в форме катиона. Затем смесь пропускают через анионит в хлоридной форме. Анионит [c.50]

Ход анализа. На стеклянную пластину размером 200x200 мм равномерным слоем толщиной 0,25 мм наносят свежеприготовленную смесь адсорбента с водой (30 г Силикагеля тщательно перемешивают с 60-мл дистиллированной воды), пластинку подсушивают 10—15 мин при комнатной температуре, а затем выдерживают 30 мин в сушильном шкафу при 120 °С. На стартовую линию (на расстоянии около 15 мм от нижней кромки слоя) наносят пипеткой около 5 мкл 1 %-ного водного или щелочного раствора пробы исследуемого продукта оксиэтилирования. Хроматографирование осуществляют по восходящему способу в камере, заполненной на высоту 5—7 мм одним -ИЗ элюентов. Так, для элюирования вышеуказанных продуктов, за исключением оксиэтилированных аминов, применяют смесь бутанон-2 — вода. Для элюирования оксиэтилированных жирных аминов применяют смесь бутанон-2 — раствор аммиака. После подъема фронта растворителя на высоту 150 мм пластинку выдерживают 20— 30 мин в сушильном шкафу при 60—70 °С и обрызгивают модифицированным реактивом Драгендорфа. Разделенные компоненты проявляются в виде оранжево-красных пятен на желтом фоне. [c.219]

Хромосорб 103 предназначен в первую очередь для быстрого и эффективного разделения аминов, амидов,, гидразинов, а также спиртов, альдегидов и кетонов. Хромосорб 103 — полиароматический пористый полимер, синтезирован специально для разделения аминов и основных соединений. На нем нельзя разделять кислотные соединения (например, гликоль и др.), так как они практиче- ски необратимо адсорбируются. Метиламин легко отделяется от легких газов, например от аммиака. Среди диаминов времена удерживания уменьшаются при сближении аминогрупп, например 1,2-диаминопропан элюирует раньше 1,3-диаминопропана. При относительно низких температурах вода элюирует в виде несимметричного пика, при температурах выше 150 °С пик становится симметричным. [c.111]

Аммиак, образующийся при разложении большинства азотсодержащих органических соединений, хотя и устойчив при обычной температуре, является все же весьма реакционноспособным соединением, для которого характерны реакции присоединения. Чрезвычайно энергично соединяется аммиак с водой, причем газохроматографический анализ такой смеси является нелегкой задачей. Аммиак и амины были одними из первых соединений, разделенных с помощью газовой хроматографии, которая, вероятно, остается наиболее легким и быстрым методом анализа смесей этих соединений. Джеймс с сотр. [175] получили хорошее разделение аммиака, метил-, триме-тил- и днметиламина, используя в качестве жидкой фазы ундеканол с добавкой 15% жидкого парафина, нанесенной на целит-545. Анализируемые вещества элюировались я порядке возрастания температур кипения. Це- [c.91]

Оксидационные основания могут поступать в продажу в виде органических или неорганических солей. Разделены 30 оксидационных оснований (ариламииов) двумерной ТСХ на силикагеле с использованием двух типов элюентов 1) 20 мл концентрированного водного аммиака и 65 мл воды, содержащей 2 мл 50% фосфорноватистой кислоты, встряхивали в делительной воронке с 50 мл петролейного эфира (т. кип. 30—60 °С), 250 мл хлороформа и 25 мл бутанола (нижний слой можно использовать только один раз) 2) хлороформ — этилацетат — этанол — уксусная кислота (350 100 60 20) [83]. Получено хорошее разделение 15 ароматических аминов и аминофенолов и четырех полифенолов на силикагеле с двумя указанными выше системами и со смесями бензол — 2-бутанол — вода (60 30 27) и бутанол — уксусная кислота-вода (40 100 50) [84]. Такемура обнаружил основания в нескольких продажных препаратах для крашения волос при помощи ТСХ на силикагеле, применяя бутилацетат — бензол (2 1) Б качестве элюента [85]. [c.61]

Моно- и диамины, содержащие группы СООН и SO3H. Эти соединения являются часто используемыми и легко доступными промежуточными продуктами. Они растворимы в воде, не имеют четкой температуры плавления и могут быть получены в аналитически чистом виде лишь с трудом. Использование систем растворителей пропанол-водный аммиак (2 1) и бутанол, насыщенный 2,5н. соляной кислотой, и трех цветных реакций, описанных в предыдущем параграфе, позволяет осуществить эффективное разделение на бумаге этих аминов в соответствии с числом сульфо- и карбоксильных групп (аммиачная система) и аминогрупп (хлористоводородная система) [29]. Амины предыдущей группы не мешают разделению и идентификации. [c.299]

Сжатый газообразный аммиак обладает растворяюш ей способностью, лежащей между растворяющей способностью воды и алифатического спирта низкого молекулярного веса. Способность аммиака образовывать водородные связи способствует разделению веществ, содержащих гидроксильные группы и аминогруппы. Амины, аминокислоты, ди- и трипептиды и моно- и дисахариды хорошо переносятся аммиаком. Кроме того, сжатый газообразный аммиак хорошо переносит высокомолекулярный полиэтиленгликоль, карбовокс 4000 и карбовокс 20М. Для примера на рис. 21 [c.72]

Дитман [9] разделил ряд оксикислот на слоях целлюлозы, элюируя кислоты смесями растворителей амиловый спирт— муравьиная кислота—вода (4 40 2), -бутанол—муравьиная кислота—вода (60 10 20) и вгор-бутаиол—2 н. раствор аммиака (80 20). Гетлбауэр [8] провел хроматографический анализ 10 оксикислот в виде солей с диэтил амином на целлюлозе, применяя смесь н-бутанол—диэтиламин—вода (85 1 14). Роль обнаруживающего реагента выполнял нингидрин такой способ позволяет определять 0,5 мкг кислоты. В работе [32] описана методика разделения 4-(4-диметиламинофенилазо)фенациловых эфиров шести оксикислот [32]. [c.391]

Вообид,е, метод разделения ионизированных и неионизированных веществ может применяться для отделения любого ионного, растворимого в воде вещества от любого неионного растворимого вещества с низким молекулярным весом. Соли, кислоты и основания могут быть отделены от целого ряда слабых кислот, аминов, спиртов, аминокислот кетонов, альдегидов и даже неорганических соединений, например аммиака и борной кислоты. Этот метод весьма пригоден для аналитических определений. Однако применение его для технологических целей потребует существенного усоверщенствования. [c.193]

Разделение этой смеси производилось следующим образом алкиламины и аммиак удалялись из исходного угольного среднего масла однократной промывкой водой (масло вода= 10 1) водный раствор, содержащий аммиак наряду с алкиламинами, обрабатывался концентрированной соляной кислотой, причем образуются хлористый аммоний или солянокислые соли алифатических аминов. Экстракцией хлороформом выпаренной досуха смеси солянокислых солей производилось отделение алкиламинов от аммиака (нерастворимость хлористого аммония в хлороформе ) [7]. [c.160]

Ландольт и Гиошон [86] при анализе водных растворов на содержание аминов в качестве твердого носителя использовали тефлон. Для разделения воды, аммиака, первичных спиртов и первичных, вторичных и третичных аминов эти авторы применяли колонки, содержащие 20% полиэтиленгликоля-1500 или 4,4% апиезона Ь. [c.387]

Для разделения смесей аминокислот, пептидов и белков Мартин и Синдж применили систему хлороформ — вода. В настоящее время большее значение имеют фенол, лг-крезол в смесях с водой и буферирующими веществами, такими, как фосфаты, аскорбиновая кислота и др. Применяют также органические основания в смесях со спиртами, водой и буферированные. Например, лутидин — этиловый спирт, лутидин — третичный амиловый спирт, лутидин — третичный амиловый спирт — вода, пиколин, коллидин, коллидин с буфером, пиридин — амиловый спирт и др. Бутиловый спирт применяют в смесях с уксусной кислотой, бензиловым спиртом, аммиаком, монохлоргидрином гликоля, третичным бутиловым спиртом и с другими веществами. Применяют также смесь метилоксида с муравьиной кислотой, смесь ацетона с водой и мочевиной. Для обнаружения аминокислот применяют обычный групповой реагент — нингидрин, позволяющий обнаруживать кроме аминокислот пептиды, белки и первичные амины. Применяют также индикаторы — органические красители, например, тропеолин 00 и орцин (реагент на сахара). [c.85]

Описана [120] микрохимическая идентификация демерола в виде кристаллических производных, получаемых с обычными реактивами на алкалоиды. Описаны также реакции демерола с пикриновой кислотой, иодистым свинцом, нитропруссидом натрия, иодистым калием и бихроматом калия. Предложен метод идентификации и разделения изомеров дезоксиэфедрина как друг от друга, так и от 12 симпатомиметических аминов [86]. Для этой цели рекомендуется применять хлоруксусную, платинохлористоводородную и пикриновую кислоты, которые дают кристаллические производные с наиболее четкой температурой плавления. Найдено, что для отделения эфедрина удобнее перегонка с паром из сильно щелочного раствора, чем извлечение не смешивающимися с водой растворителями [93, 161]. Описан метод отделения эфедрина от прокаина в виде N-ацетил-производного [190], которое может быть извлечено хлороформом из кислого раствора и взвешено содержание прокаина определяют после извлечения хлорофррмом из того же раствора, но обработанного аммиаком. [c.197]

Лигандообменная хроматография открывает возможность аналитического и препаративного разделения нейтральных соединений (лигандов), содержащих в качестве донорных гетероатомы N, S, О и способных образовывать нестойкие комплексы (иначе — аддукты) с ионами металлов, введенными в неподвижную фазу. Первооткрыватель метода Ф. Гельферих в качестве потенциально приемлемых сорбентов использовал ионообмен-ники, содержащие комплексообразующие ионы следующих металлов Си +, Си+, Ni +, Ag+, Со + и др. [19]. Нейтральные молекулы или анионы, способные образовывать с названными ионами металлов координационные связи, сорбируются из жидкой или газообразной подвижной фазы на свободных активных центрах сорбента или замещают другой, ранее сорбированный лиганд, предварительно образовавший менее прочный комплекс с ионом металла. Круг лигандов, которые могут быть выделены из сложных смесей или разделены, достаточно широк аммиак, органические амины, непредельные углеводороды, моно- и по-лиатомные спирты, фенолы, карбоновые кислоты, серосодержащие органические соединения и др. в роли лиганда может выступать также вода. [c.14]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология