Буферные растворы для контроля

Подвижная фаза в ионообменной хроматографии должна обеспечивать растворимость различных солей и создание буферного раствора, необходимых для ионного обмена, контроль степени удерживания образца за счет использования растворителя нужной силы, получения необходимой селективности разделения. [c.36]

В работе использовали 3,20-раствор арсеназо I, полученный растворением в воде точной навески препарата е дополнительным контролем концентрации вышеуказанным методом [5]. Все опыты выполняли при постоянной ионной силе ]ы = 0,2 и pH 5,50 в среде ацетатного буферного раствора. Контроль pH осуществлялся на рН-метре ЛПУ-01. Измерение оптических плотностей растворов производили на спектрофотометре СФ-4А в кюветах с толщиной поглощающего слоя / = 1 см. Раствором сравнения служила вода. [c.34]

Турьян и Зайцев [232] предложили полярографические методики для определения нитроциклогексана в производственных смесях в присутствии циклогексана, дикарбоновых кислот, капролактама, серного эфира, сульфата аммония, трихлорэтилена и бензола, а также смол на различных стадиях производства. Навеску смеси растворяют в метаноле и полученный раствор полярографируют на фоне буферного раствора с pH = 4,65. Потенциал полуволны нитроциклогексана в этих условиях равен от —0,91 до —0,94 В. Нитроциклогексан можно определять в капролактаме с достаточной точностью в количествах до 0,003%. Пикриновая кислота, являющаяся крайне нежелательной примесью при нитровании циклогексана, также определяется полярографическим методом [233, 234]. Помимо контроля производственных процессов, авторы использовали полярографический метод также для изучения некоторых физико-химических характеристик, в том числе коэффициентов распределения нитроциклогексана и пикриновой кислоты, представляющих интерес при разработке режимов отдельных технологических стадий производства капролактама [234]. Турьян с сотр. [235] исследовали с помощью полярографии также коэффициенты распределения ацетонитрила в системах [c.150]

БУФЕРНЫЕ РАСТВОРЫ ДЛЯ КОНТРОЛЯ рЧ [c.114]

Диапазон pH 7—9. Имеется много слабых кислот, константа диссоциации которых лежит в интервале Ю-з—Ю- , поэтому буферных растворов для контроля pH в кислых средах весьма много. Однако они не подходят для того диапазона, который важен в физиологии, а именно pH 7—9. Фосфатные, карбонатные и боратные буферные смеси, которые могут подойти в этом случае, осаждают кальций или вступают в другие побочные реакции с многими средами, представляющими интерес для биологов. [c.116]

Разработаны оригинальные полярографические методы для контроля полупродуктов-синтеза витаминов и готовой продукции. Метод определения диэтилацеталей альдегидов Э-См и 3-С1в основан на омылении их в альдегиды в кислой среде (ацетатный буферный раствор. pH 3.0), которая является фоном для их восстановления на ртутном капельном катоде. Примесь альдегидов определяют на фоне раствора гидрата окиси тетраэтиламмония в 50%-ном этаноле. Ошибка метода + 0.5%. Полярографическое определение метилвинилкетона производят на фоне ацетатного буферного раствора (pH 3,0), = —0,9. г. Ошибка метода 0,6%. [c.345]

Из сказанного выше ясно, что при настройке потенциометра по боратному буферному раствору, а также при определении констант ионизации всех оснований и многих кислот необходим тщательный контроль температуры. [c.20]

Реактивы, Дифенилкарбазид, реактивный раствор. Свежеприготовленная смесь равных объемов пиридинового буферного раствора и 1,5%-ного раствора дифенилкарбазида в спирте. Для приготовления буферного раствора 300 мл пиридина (х. ч.) разбавляют до 1 500 мл водой, добавляют 20 мл концентрированной азотной кислоты и нагревают до кипения. В целях контроля к нескольким каплям готового раствора прибавляют каплю раствора азотнокислого свинца—должно появиться вишневое окрашивание Едкий натр. 5%-ный раствор [c.201]

При титровании до известного значения pH с помощью стеклянного электрода прибор настраивается по буферным растворам. После поверки по буферным растворам переключатель Размах устанавливается в положение 15 pH , соответствующее диапазону — I —14 pH. Визуальный контроль pH по прибору при окончании титрования может быть осуществлен по нижней шкале показывающего прибора с точностью 0,6 pH или по верхней шкале на соответствующем диапазоне с точностью 0,05 pH. [c.446]

Для контроля угольных электродов, растворов азотной кислоты и нитрата калия на каждой фотопластинке, кроме пробы и эталонных растворов, фотогра--фировали по 2—3 спектра чистых углей, смоченных раствором азотной кислоты и буферным раствором. [c.89]

Разработка метода определения опиатов на основе латексной агглютинации. На основе полученных реагентов - антител к опиатам и конъюгата морфина меченого латексом, был разработан метод для выявления опиатов в биологических жидкостях организма с использованием латексной агглютинации. Для этого непосредственно перед работой разводили латексный конъюгат до 1% концентрации буферным раствором. Специфичные антитела против опиатов разводили в плашке, используя серию двойных последовательных разведений. Для проведения опыта в микрокамеры с коническими лунками вносили по 10 мкл сыворотки каждого разведения и быстро добавляли равную аликвоту раствора латекса, модифицированного морфином или конъюгатом морфин-овальбумин. В качестве контроля использовш1и лунку, в которую не добавляли антитела. Интенсивность реакции агглютинации оценивали через 1 час по 4-крестовой схеме [2]. Из полученных результатов выбра1ш условия для проведения реакции ингибирования. Для этого использовали концентрацию антигена на латексе 100 мкг/мл и 50 мкг/мл, а разведения сыворотки соответствовали 1 16, 1 32 и 1 64, Морфин вносили в лунки после серии пятикратных разведений в интервале концентраций от 500 мкг/мл до 200 нг/мл, В каждую лунку вносили 7 мкл антиопиатной сыворотки, 7 мю1 раствора морфина соответствующей концентрации и 7 мкл раствора латекса. Контрольные [c.202]

Главной отличительной чертой химического контроля на электростанциях является необходимость оиределейия следовых концентраций элементов в очень чистой воде, что вызывает особые трудности и при обычном определении показателя pH. Неоднократно утверждалось, что измерение потенциала, например, в химически обессоленной воде, имеющей высокое сопротивление (до 10 кОм), вообще невозможно. Отмечалось, что при этом возникают помехи, проявляющиеся в нелинейности между калибровочными или буферными растворами в чувствительности к воздействию потока или движения жидкости в плохой воспроизводимости результатов, значительном дрейфе показаний чувствительности к прикосновению руки, колебании показаний при нарушениях в заземлении. [c.33]

Подвижная фаза в ио>юобменной хроматофафии должна обес-печивап, растворимость различных солей и иметь свойства буферного раствора, необходимые уш ионного обмена, контроля степени удерживания компонентов пробы и полуюния достаточной се-лек гивности ра зделения. [c.58]

В промышленном контроле ПИА можно использовать в различных вариантах. Проточно-инжекционный метсд с градиентным разбавлением [16.4-43, 16.4-44] использовался при мониторинге красильных процессов. Методы проточно-инжекционного титрования, базирующиеся на измерении ширины пиков, также используются в промышленном анализе [16.4-45, 16.4-46]. Силиконовые мембранные сепараторы в настоящее время внедряют в процесс проточно-инжекционного анализа для повышения селективности [16.4-47]. Эти мембранные сепараторы применяют и в ферментационном мониторинге, где среда с культурой приводится в контакт с буферными растворами через мембраны [16.4-48,16.4-49]. Газо-диффузионнью ПИА-системы позволяют определять многие летучие компоненты, такие, как аммиак, диоксид углерода, уксусную кислоту, озон, хлор и амины [16.4-50, 16.4-51]. [c.663]

Тщательно растертый л-нитроанилин (13,8 г, 0,10 моль) перемешивают в течение 1 ч при комн. температуре в 100 мл воды и 25 мл 30%-ной НС1. Добавлением льда и воды доводят объем смеси до 300 мл и при температуре 0-2 °С добавляют в один прием раствор 8,10 г (0,12 моль) нитрита натрия в 35 мл воды и перемешивают 90 мин при 0-10 °С (происходит частичное растворение твердого вещества). Избыток HNOj разлагают добавлением сульфаминовой кислоты (контроль по иодкрах-мальной бумаге), фильтруют и после добавления ацетата натрия получают буферный раствор с pH 1-2. [c.417]

Методика опыта. Растительное сырье вначале грубо измельчаю отбирают 2—3 навески по 10—25 г (в зависимости от активности фе мента) и тщательно растирают с толченым стеклом в фарфоровь ступках. Затем навески количественно переносят с 20 мл дистиллир ванной воды в колбы Эрленмейера емкостью 100 мл. Содержимое о, ной из колб кипятят 5 мин на плитке для инактивирования фермет (контроль). После этого во все колбы приливают по 5 мл 10%-но1 буферного раствора сахарозы и по 5 капель толуола. Колбы плотр закрывают корковыми пробками и ставят в термостат на 24 ч при те пературе 37° С. [c.82]

Методика определения в цитратном растворе сводится к следующему [1037]. Анализируемый раствор, содержащий от 1 до 10 жкг Со, должен быть почти нейтральным и иметь объем около 5 мл. Минеральные кислоты предварительно удаляют выпариванием. Прибавляют 10 мл 0,2 М раствора ли.чон-ной кислоты и 1,2 мл фосфатно-боратного буферного раствора. Последний готовят растворением 6,2 г борной кислоты и 35,6 г двузамещенного фосфата натрия в 500 мл 1 N раствора гидроокиси натрия и разбавлением полученного раствора до 1 л. pH после прибавления буферного раствора должно быть около 8 (контроль по крезолово.му красному). Далее прибавляют точно 0,5 мл раствора нитрозо-К-соли и хорошо перемешивают. Кипятят 1 мин., прибавляют 1 мл концентрированной азотной кислоты и снова кипятят 1 мин. Раствор охлаждают в темном месте и разбавляют до 10 мл, после чего измеряют оптическую плотность при 420. имк. Если предполагают пользоваться при сравнении окрасок колориметром, тогда лучше удалить избыток реагента окислением бромной водой. Для этого после прибавления азотной кислоты приливают к раствору 0,5 мл бромной ьоды, оставляют на 5 мин. и удаляют затем избыток брома кипячением раствора. Не мешают 10 мг железа и меди и 0,1—0,2 мг никеля. [c.140]

Чтобы получить гладкую и чистую лицевую поверхность и мягкую кожу, вымытые шкуры после скобления часто подвергаются бучению или обеззолке , т. е. обработке энзимами панкреатической железы в присутствии буферного раствора, обычно хлористого аммония, при тщательном контроле pH среды. Этим способом достигается растворение и удаление некоторых белков кожи, но коллаген, т. е. основные волокна, почти не подвергается действию бучильных жидкостей. Этот процесс проводится не со всеми шкурами, но он необходим для выделки мягких кож, которые в значительной степени расцениваются по их внешнему виду. [c.386]

Почти все ионы металлов, за исключением щелочных, могут образовывать гидроксиды, гидраты гидроксидов или основные соли в щелочных растворах и таким образом мешать при гравиметрическом определении или отделении железа (III). Тщательный контроль за концентрацией гидроксид-ио на часто приводит ж повышению селективности при осаждении гидроксида или гидрата пидроксида одного катиона в присутствии другого иона металла. Количествшное осаждение железа (III) и отделение его гидроксида может быть достигнуто при pH ниже 3 или 4. При таком относительно низком значении pH вероятность осаждения большинства гидроксидов двухзарядных катионов металлов очень мала и может быть сведена к минимуму, хотя соосаждение все же будет иметь место. На практике удобно поддерживать значение pH около 4, используя ацетатный буфер, а также буферный раствор, содержащий пиридин и ион пиридиния. Преимущество последнего заключается в том, что пиридин образует устойчивые комплексы со многими двухзарядными ионами металлов, в результате чего уменьшается их соосаждение. [c.247]

Существенное значение имеет контроль pH среды. При pH 4 происходит гидролиз и часть А1 при титровании остается не связанной трилоном. В этом случае косвенное определение при применении различных индикаторов приводит к хорошим результатам [28]. При обратном титровании определение несвязанного избыточного трилона можно проводить при различных значениях pH [39]. Во избежание взаимодействия с гидролизоваппыми ионами А1 или с его гидроокисью трилон необходимо вводить в кислые (pH 1- 2) или щелочные (pH = 12 13) растворы алюминия [39, 41, 43]. После этого растворы следует нагревать до кипения и горячими нейтрализовать до требуемого значения pH. В этом случае образование трилопата будет происходить быстро и количественно во время самой нейтрализации, которую следует проводить слабыми основаниями и кислотами. Затем в пробу вводится соответствующий буферный раствор. Некоторые авторы рекомендуют вводить трилон Б в растворы алюминия с pH 3,6 4,3 и затем кипятить [44]. Можно также вводить трилон в холодный кислый раствор соли алюминия, нейтрализовать и нагревать до кипения [45—47]. В этих условиях, как указывается, происходит гидролиз и расход трилона не эквивалентен содерн<апию А1 [391. Катион титрующего раствора при обратном титровании не должен разрушать образовавшийся трилонат алюминия [48]. [c.134]

Буферный раствор с pH 8,2. 5 г борной кислоты, 10 г комплексона HI и 10 г однозамещенного фосфата калия (КН2РО4) растворяют в 500—600 лы горячей воды нейтрализуют раствор едким кали до pH 8,2 (контроль на рН-метре) и доводят объем до 1 л водой. [c.153]

Существуют специальные электроды для области значений pH выше 12. Они обладают уменьшенной проницаемостью по отношению к ионам калия, но нестойки в кислотах. Все электроды такого типа, как правило, быстро теряли чувствительность, несмотря на тщательный уход. Такие электроды можно проверить после контроля по фталатному и боратному, а также и по 0,01 М тринатрийфосфатному буферным растворам. Если специальный стеклянный электрод хорошего качества, то он должен показать в последнем буферном растворе меньшее отклонение от точного значения pH (11,90 при 20°С и 11,72 при 25°С), чем отклонение, показанное обычным электродом, с которым одновременно проделали те же манипуляции. В то время, когда электроды не используются, их следует хранить в строгом соответствии с инструкциями изготовителя. [c.24]

Метод несколько усовершенствовали Дёринг [4] и другие [1, 13, 33]. Бромид окисляют до бромата гипохлоритом в слабокислом растворе, содержащем большие количества хлорида натрия. Уиллард и Хейн [33] изучали пределы pH для выполнения реакции и пришли к заключению, что она количественно протекает при pH 5,5—7,0. Для регулирования pH можно применять фосфатные, ацетатные буферные растворы или борную кислоту. Однако удовлетворительные результаты получаются и при простом методе контроля pH, предложенном Дёрингом и состоящем в добавлении небольшого избытка карбоната кальция к слабокислому раствору. [c.201]

Третья модель ВС-201 также имеет один чувствительный колориметр кроме того, здесь имеется больше возможностей для контроля за сменой буферных растворов и изменения температуры. Уникальной особенностью прибора является оригинальное программное устройство (см. рис. 32.8). При наличии автосамплера на приборе можно последовательно проанализировать [c.326]

Если проводить указанный контроль (ср. стр. 127) с помощью 0,005 н. раствора HNO3 или буферного раствора с pH 2,4, то присутствующий дитизонат висмута пе разлагается и, следовательно, не приводит к увеличению абсорбции при упомянутых длинах волн [5321]. [c.304]

Анионит и тампон из стеклянной ваты, который служит для удержания смолы в бюретке, промывают от следов металлов 200—250 мл 5%-ного водного раствора перегнанной НС1. Первые пять порций кислоты пропускают через колонку со ско-ростью 20—30 MAj M час, остальные пять — в 2 раза медленнее. Затем через колонку с такой же скоростью псследовательно пропускают 2 л воды и ацетатный буферный раствор с pH 5,8—6,0 до тех пор, пока анионит перестанет заметно изменять pH пропускаемого раствора. Контроль за изменением pH осуществляется рН-метром. [c.345]

Метод включает определение сульфатов, суммарного содержания окислов и основных сульфатов. Методика применяется для контроля качества сырья, используемого для выращивания монокристаллов. Сульфаты извлекают водой, а основные сульфаты и окислы растворяют в аммиачном буферном растворе [19—22]. Определение заканчивают фотометрически после экстракции комплексов кадмия и цинка с 1-(2-пирнди-лазо)-2-нафтолом [23, 24]. [c.413]

Ввиду слабой растворимости эфиров (х-галоидзамещенных кислот в воде и высоких скоростей их гидролиза при исследовании применяли преимуществеино физикохимические методы анализа (рН-статический, кондуктометрический, проведение реакции в буферных растворах) [1—5]. Контроль за ходом реакции осуществля.тся по изменению концентрации ионов 0М [c.28]

Что касается белков, то в большинстве случаев их определяют в элюатах путем измерения оптической плотности при 280 нм. В случае низких концентраций белка анализ рекомендуется вести в коротковолновой части спектра, например, при 230 нм. В таких случаях приходится использовать буферные растворы, обладающие низким поглощением в этой области, например фосфатный, трисхлоридный, боратный. Если фон непостоянен, следует провести дополнительный анализ в области спектра, не характерной для белков, например при 310 нм. Если теперь нанести на график разницу в оптической плотности при двух длинах волн, можно рассчитывать, что фон будет более постоянным. Правда, это будет лишь в том случае, если посторонние примеси в буферном растворе или на стенках кюветы поглощают при двух длинах волн примерно одинаково. Анализ каждой фракции необходимо вести, избегая прикосновений к стенкам кюветы, т. е. нельзя определять оптическую плотность всех фракций вначале при 280 нм, а затем при 310 нм. Длина волны, на которой ведется контроль за фоном, должна незначительно отличаться от характеристической длины волны исследуемого вещества [46]. [c.253]

Определение технеция кулонометрическим титрованием с контролем потенциала в буферном растворе триполифос-фата натрия. [c.127]

При соблюдении необходимых требований (использование для физико-химических измерений современной прецизионной аппаратуры, обеспечение абсолютного обезвоживания и очистки исходных растворителей от посторонних примесей, а также применение надежного химико-аналитического контроля их чистоты, точное соблюдение методики определения и приготовления вспомогательных реактивов, стандартных веществ, буферных растворов и т. п.) экспериментальное определение констант автопротолиза, как показывает опыт, гарантирует получение совпадающих результатов. [c.41]

Ход определения. 100 мл анализируемого раствора, содержащего до 100 мг свинца, осторожно нейтрализуют аммиаком до начинающейся мути, которую затем растворяют добавлением капли азотной кислоты. После введения 5 капель пирокатехинового фиолетового прибавляют столько 10%-ного раствора уротропина, чтобы титруемый раствор окрасился в глубокий синий цвет. Затем титруют раствором четырехаммонийной соли комплексона до перехода окраски раствора в серую. Тогда снова добавляют уротропин (около 1 мл), раствор вновь синеет. Его дотитровывают раствором комплексона до появления чисто желтой окраски. Вновь добавляя уротропин, можно убедиться в том, связан ли в комплекс весь свинец или нет (в этом случае не должно появиться синей окраски). Для указанной концентрации свинца обычно достаточно 2—4 мл уротропина. Для контроля можно раствор подщелочить нормальным буферным раствором. Должна появиться фиолетовая окраска, доказывающая, что весь свинец связан комплексоном. [c.334]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология