Кровь озоление

Известно, что масса крови составляет 7% массы организма человека. После озоления 32 г крови получено 0,33 г золы. Экспериментально установлено, что в 150 мг золы содержится 16 мг железа. Сколько миллиграммов железа содержится в крови человека массой 80 кг [c.14]

II крови, моче и тканях после озоления серной и азотной кислотами [851]. [c.279]

При анализе органических продуктов (кровь, растительный материал, продукты питания) образцы подвергают озолению в кварцевых, никелевых или фарфоровых тиглях, в присутствии фиксаторов [1—3]. В качестве фиксаторов применяют окись и гидроокись кальция или магния, перекись кальция или магния, ацетат кальция, калия или магния, соли меди и алюминия, карбонат натрия или кальция [3—6]. Иногда озоляют без фиксатора [7, 8], особенно продукты, содержащие большое количество солей кальция, например, зубы, кости, почвы [7]. Озоление занимает очень много времени (28—48 ч). [c.18]

Озоление в присутствии солей кальция (анализ крови, мягких тканей, мочи, сельскохозяйственных продуктов, расти тельных материалов, молока и пр. — методики № 91—93). [c.18]

Озоление без фиксатора (например, плазмы крови) может привести к потере фтора до 50%. Содержимое желудка, кишечника, мочу и другие биологические материалы подвергают обработке соляной кислотой и животным углем [5]. Определение фтора в зубах и костях аналогично определению в минералах и фосфатах [6—10]. [c.172]

Для определения стронция в этих объектах желательно использование возможно более чувствительного прибора. Образец органического вещества озоляют, золу растворяют в 2 н. соляной кислоте и стронций вместе с кальцием осаждают в виде оксалата. Моча или плазма крови осаждается непосредственно без озоления. Оксалаты можно затем растворить в соляной кислоте и раствор фотометрировать . [c.249]

Для определения кальция в тканях необходимо прежде всего разрушить органическую часть ткани. С этой целью ткань подвергают или озолению на пламени горелки, или гидролитическому расщеплению органических веществ ткани, которые при этом превращаются в большей своей части в легко растворимые и не мешающие определению кальция вещества. В отдельных случаях, впрочем, как, например, в сыворотке крови, возможна и непосредственное определение кальция без предварительной минерализации или разрушения органической части ткани. [c.13]

Как видно из предыдущего, мы считаем более выгодным производить озоление вещества для определения железа в моче, кале и пище сухим путем, для чего очень удобны муфельные печи (удобные и при анализе на кальций). После озоления зола растворяется в разведенной кислоте, а дальше определение ведется аналогично определению в крови — сульфосалициловым или родановым методом. Нужно указать, что большая часть железа выводится калом, причем это выведение сильно отстает от введения, так что при установках балансов железа необходим довольно длительный опытный период — не менее 5 дней, а если возможно — лучше больше. [c.293]

Количество так называемой сульфатной золы нельзя сопоставлять с количеством золы, полученной при обычном способе озоления, но сульфатная зола часто является более важным показателем и используется для определения общего содержания неорганических катионов (Ыа , Са ) в крови и моче [5.23], а также для определения зольности целлюлозы [5.151. [c.133]

Ванадий. При озолении проб крови в фарфоровых тиглях при 700 С за 6 ч потери ванадия составили 30 %. При нагревании ванадата натрия в платиновом тигле при 600—800 °С в течение 5 мин потерь не обнаружено, а при нагревании 15 мин в фарфоровом тигле теряется 5% ванадия [5.98]. [c.139]

Железо. В образцах крови, меченных радиоактивным изотопом Fe, после озоления в фарфоровых тиглях при относительно низких температурах обнаружены потери железа (14% при 400 °С, 18% при 500 °С, 48% при 700 °С и 73% при 900 °С [5.32]). Однако опубликованы и более удовлетворительные данные не обнаружены потери железа при озолении проб в кварцевых чашках при 400 °С и только при 700 °С потери составили 7% [5.129] отмечены потери железа при температуре озоления свыше 600 °С [5.35] и свыше 700 °С [5.130] потеря железа (3—7%) зарегистрирована при озолении проб в платиновых тиглях при 650 °С [5.131], не обнаружены потери железа при сухом озолении проб в кварцевых тиглях при --500 °С [5.36] и в фарфоровых при 800 °С [5.132]. Образцы, содержащие хлориды, обычно теряют некоторое количество железа [5.1331 введение в пробу хлорида аммония перед озолением при 600 °С приводит к снижению потери железа до 3—7% [5.134]. [c.140]

Растительные материалы и ткани животных для определения в них примесей золота озоляют при 500 °С [5.161], 550 °С [5.120, 5.162, 5.163] и 650 С [5.164]. С добавлением серной кислоты озоление рекомендуют проводить при 550 °С [5.165]. Потерь золота не обнаружено, но при нагревании проб крови, содержащих радиоактивный изотоп золота, при 400 °С 24 ч потери золота составили 81%, а при нагревании 12 ч при 500 С — 100% [5.32]. При прокаливании золы потери золота увеличиваются [5.166]. [c.141]

Кремний. При определении кремния в крови и тканях животных пробы озоляют в платиновых тиглях без добавок (5.451 ]или с добавлением карбоната натрия [5.218—5.220]. Для озоления крови рекомендуют использовать смесь карбоната натрия и фосфата аммония [5.218]. Нефть медленно озоляют в платиновой чашке без добавок [5.63] или в присутствии сульфоната магния при 650 °С 5.61]. [c.143]

Мышьяк. Прп озолении органических веществ без добавления веществ некоторое количество мышьяка теряется уже при 400 °С. Сообщается о потерях мышьяка при высушивании пробы крови даже при 00 °С [5.268]. [c.145]

В экспериментах, в которых в образцы крови вводили свинец, а затем их озоляли в фарфоровых тиглях, потери свинца составили 0% при 400 °С за 24 ч, 31% при 500 °С за 12 ч и 68% при 700 X за 6 ч [5.32]. Другие исследования показали, что свинец не теряется при озолении органических материалов при температурах не выще 430 °С, 5% свинца теряется при 550 °С и 7% при 570—600 °С [5,313]. По другим данным потери свинца обнаружены при 500—520 °С [5.246, 5.314], при 550 °С [5.315, 5.316] или 600 °С [5.317]. Отмечаются потери свинца при озолении в платиновых тиглях при 550 °С фракций нефти [5.105]. Потери свинца в траве и клевере в результате озоления при 600 °С оказались несколько меньшими, чем при 450 °С [5.27]. Совершенно другие результаты получены с пробами мышечных тканей при 300 °С потери свинца составили около 40 % [5.307]. [c.147]

Сурьма. При озолении крови при 400—900 °С теряется сурьма в различных, но всегда постоянных для данной температуры количествах [5.32]. При нагревании проб какао до 550 С без добавок или с введением серной кислоты или нитрата магния потери сурьмы незначительны, в присутствии азотной кислоты теряется 8% сурьмы [5.36]. При 600 °С в присутствии хлорида аммония почти вся сурьма теряется, добавление хлорида натрия предотвращает потери летучих соединений сурьмы, однако, возможно взаимодействие сурьмы с материалом тигля [5.134]. [c.150]

Фтор. При определении фтора в органических материалах образцы озоляют без добавок, если образующаяся зола имеет основной характер. К таким материалам относятся овощи, листья, хвоя, корма для животных, побочные продукты переработки растительных жиров, рыба, рыбная мука, фекалии, клубни растений, пищевые корнеплоды, мука и мучные продукты, побочные продукты брожения, фрукты, хлеб, яйца, сыр, высушенные кровь и молоко. При озолении других материалов, таких как органы животных, следует добавлять щелочь. [c.151]

Цинк. При сухом озолении цинк теряется в виде летучего его хлорида, а также в результате взаимодействия соединений цинка с кварцем и силикатами при относительно низких температурах. Эксперименты с мягкими тканями моллюсков, меченных радиоактивным изотопом Zn, показали, что при обычном высушивании проб теряется 9% цинка, а при озолении при 450—600 °С потери увеличиваются до 25% [5.224]. Около 20% цинка было потеряно из проб кормов при нагревании их до 450 °С [5.257]. Для проб крови, в которые вводили цинк, не обнаружено его потерь при температурах до 500 °С, а при 700 °С терялось 30% цинка [5.32]. Шерсть озоляли при температуре до 900 °С без потерь цинка [5.36]. Летучесть соединений цинка во многом зависит от природы аниона хлорид весьма летуч даже при 400 °С, нитрат можно нагревать до 500 °С, а сульфат до 600 °С без заметных потерь [5.181]. Нитрат цинка полностью теряется при нагревании его в платиновом тигле при 700 °С [5.452]. Обнаруживаются весьма значительные потери нитрата цинка при нагревании в присутствии хлоридов аммония, магния или кальция [5.134]. [c.154]

Анализ биологических объектов на содержание следовых количеств элементов — одна из труднейших задач аналитической химии. Недостаточная чувствительность аналитических методов для определения таких низких количеств бериллия требует тщательного отделения сопутствующих элементов и концентрирования определяемого элемента. При анализе биологических проб (кровь, кости, легкие, печень и т. д.) пробу разлагают и удаляют органические материалы, а затем отделяют бериллий и определяют его. Озоление органических проб можно произвести непосредственным сжиганием (сухое озоление) или при помощи кислот— азотной и серной или хлорной (влажное озоление). [c.185]

Жидкие образцы, содержащие белок, можно проанализировать, непосредственно осаждая оксалат кальция, без предварительного удаления белка, при условии, если достаточной является точность 2—5%. При работе с плазмой или сывороткой крови анализируемый образец разбавляют равным объемом воды, не добавляя ни кислоты, ни ацетата натрия. Образцы, не содержащие значительного количества белка, например моча, могут быть проанализированы прямым осаждением оксалата кальция с небольшим уменьшением точности, а в некоторых случаях даже без снижения точности. Следует, однако, подчеркнуть, что небольшая затрата времени и незначительные трудности, связанные с озолением, делают проведение этой операции при анализе любых образцов биологического происхождения крайне желательным. [c.174]

Правильность объемного определения хлоридов в присутствии белка, например, в случае прямого определения хлоридов в сыворотке крови, была проверена авторами сравнением результатов, полученных при прямом титровании, с результатами, полученными при определении хлоридов в таких же образцах, которые, однако, предварительно были подвергнуты озолению в платиновом тигле в присутствии избытка бикарбоната натрия. При этом не было обнаружено заметной разницы. Следует указать, что оголение в отсутствии бикарбоната натрия всегда приводило к заметным потерям хлорида. [c.218]

Кровь в количестве менее 2 мл может быть подвергнута сухому озолению в муфельной печи при конечной температуре 525—540° (весь углерод должен быть удален). Пробуй большего объема озоляют следующим образом 10—15 мл крови вносят в колбу Кьельдаля объемом 30 мл, добавляют 3 мл [c.359]

Определение молибдена в крови про изводят методом сухого озоления, образовавшийся зольный остаток растворяют в 50% растворе соляной кислоты, в котором непосредственно определяют молибден. При определении молибдена в моче надлежало в первую очередь решить вопрос о выделении малых количеств молибдена из сильно разбавленных растворов. [c.238]

Выделение молибдена из крови предложено проводить сухим озолением. Для выделения молибдена из мо-Ч И применено соосаждение молибдена осадком танина и метилового фиолетового. [c.239]

Подготовка крови или мочи для анализа (разрушение органических веществ) производят в основном по методике влажного озоления, которая описана в разделе 2 Подготовка объектов для исследования . Отдельные детали минерализации изменяют в зависимости от массы (объема) объекта исследования и его консистенции. [c.93]

Нейман рекомендует после озоления и разложения пробы выделять уран на протеине (уран с протеином образует прочный комплекс). Тяжелые металлы, когда это необходимо, например при анализах печени, крови и селезенки, удаляют на ртутном катоде перед осаждением урана протеином. Ураново-протеиновый комплекс растворяют в соляной кислоте, белок удаляют центрифугированием, уран определяют флуориметрически. [c.165]

К кислому испытуемому раствору прибавляют глюкозу, 1 мл 10%-ного водного раствора КОН, и смесь нагревают 30 мин. на кипящей водяной бане. В присутствии висмута появляется черный осадок. Чувствительность 25 у Bi. При восстановления в капиллярной трубке чувствительность 3,5 Bi. Сегнетова соль уменьшает чувствительность метода. Метод дает положительные ре.эультаты при открытии висмута в различных фармацевтических препаратах (иногда после их озоления), в золе мочи, крови и других органических материалах. Открытию висмута мешает медь и не мешают олово, мышьяк и сурьма [395]. [c.280]

Самые распространенные методы переведения анализируемого материала в раствор состоят в следующем. Почвы обычно обрабатывают смесью растворов хлорной и фтористоводородной кислот 1365] или азотной и соляной кислот 541, 652] или сплавляют с Na2 03 541, 575, 605], разлагая полученный плав соляной кислотой. В других случаях извлекают растворимые в кислотах соединения микроэлементов действием раствора соляной кислоты 428, 493, 1378] или буферным ацетатным раствором с известной величиной pH [429] последний способ, в частности, применяется при анализе микроудобрений. Растительные материалы, как сено или другие кормовые продукты, предварительно сжигают при 350—500° С [403, 430, 492, 1242, 1283] и обрабатывают остаток после сжигания смесью фтористоводородной и серной кислот для удаления кремне-кислоты. При анализе животных тканей применяют метод мокрого сжигания, который состоит в обработке материала смесью серной и азотной кислот [1128, 1186, 1389], или применяют обычное озоление, нагревая пробу в. муфельной печи до 450— 500° С так поступают, например, при исследовании крови, [797, 1407]. [c.209]

Микроэлементы Кровь, срезы тканей Низкотемпературное озоление в кислородной плазме (150° С), генерируемой высокочастотным электромагнитным полем Рентгеновская спектромехрия, возбуждаемая протонами [c.479]

Хорхаммером и Вольфом [136] растворитель для разделения фосфолипидов сыворотки крови человека методом ХТС и затем для колориметрического определения отдельных фракций после озоления в виде фосфатов. Яцкевич [48] разработал метод количественного определения различных сфинголипидов. О количественном определении лецитина и коламин-цефалина методом ХТС кратко сообш ает Вагнер [166]. [c.165]

Некоторые исследователи рекомендовали проводить прямую дистилляцию фтора с серной кислотой. Смит и Гарднер [31] применяли такой способ при анализе крови, утверждая, что при озолении крови обычным методом фторид железа улетучивается. Венкатесварлу и Pao [37] также [c.263]

Как отмечалось выше, биологические объекты можно проанализировать на масс-спектрометре с искровым источником ионов после их озоления, смешивания с графитом и прессования электродов (Берки, Моррисон, 1969 Эванс, Моррисон, 1968а Эванс,. 1968 Тонг и др., 1969). Подробный обзор методов определения следов элементов в биологических объектах дан Эвансом и Моррисоном (1968а) и Эвансом (1968). Они анализировали различные образцы, в том числе листья растений, кровь и ткани человека, легкие животных. Озоление проводили при низких температурах до постоянного веса, затем образцы хранили в эксикаторе. Сухой озоленный материал смешивали с равным количеством графитового порошка спектральной чистоты, гомогенизировали встряхиванием в капсуле из карбида вольфрама и брикетировали в электроды. При подобном соотношении пробы и графита (1 1) были получены наилучшие результаты. Для изготовления стандартов заданное количество окиси определяемых элементов, высокой чистоты смешивали с графитом и добавляли к озолен-ному биологическому объекту. Количественный анализ проводили по обычной методике. Результаты анализа проб озоленных легких приведены в табл. 9.8. [c.315]

Молибден. Данные о потерях молибдена прп сухом озолении противоречивы. Одни авторы отмечают значительные потери молибдена при 450 и 500 °С [5.204, 5.258], другие не обнаружили потери молибдена при 550—600 °С и только очень небольшие потери отмечены при 800 °С [5.27, 5.36]. При озолении пробы крови, меченной радиоактивным изотопом молибдена, потери составили 0% при 400 °С за 24 ч, 3 0 при 500 °С за 12 ч, 15% при 700 °С за 6 ч и 17% при 900 °С за 3 ч [5.32]. Следует иметь в виду, что М0О3 с) блимируется, поэтому пробы, содержащие молибден, не следует озолять при высокой температуре без добавок веществ основного характера. [c.145]

Для извлечения урана из проб после озоления применяются и другие экстрагенты [ПО, 197]. После озоления пробу обрабатывают 0,Ш раствором Н2504. Трехвалентное железо восстанавливают сернокислым гидроксиламином, проводят экстракцию н-октиламином. Затем уран реэкстрагируют в водную фазу раствором карбоната аммония, раствор упаривают досуха. Остаток растворяют в НЫОз, уран определяют флуориметрически. Этот метод применяется при анализе крови, легких, почек и печени. В тканях животных содержатся десятые доли микрограмма урана на 1 г ткани содержание урана в протоплазме—от ЫО-9 до Ы0-<% [71а]. [c.63]

Методы анализа без разрушения образца, такие, как рентгенофлуоресцентный или нейтронный активационный анализ, исключительно удобны для определения микроэлементов в тканях животных, поскольку они не требуют озоления образцов. Эти методы хорошо приспособлены к определению некоторых микроэлементов в крови или других биологических жидкостях. При анализе твердых тканей рентгепофлуоресцентпым методом эталонные кривые следует строить для каждого тина тканей, чтобы свести к минимуму влияние основы. В нейтронном активационном анализе без разрушения образца возможность образования ири активации тканей животных радиоизотопов, мешающих определению данного элемента, является серьезным препятствием, но, вероятно, менее серьезным, чем при анализе растений или почв. [c.76]

Задача удаления органических соединений, главным образом белка, из анализируемого раствора решалась самыми различными методами. Анализируемый образец часто подвергали озолению при 650—700°. Однако некоторыми исследователями было показано [10], что при этой температуре имеют место некоторые потери калия. Были предложены также методы разложения в жидкой фазе, которые даже при работе с очень малыми количествами вещества всегда требуют большой затраты времени. Применяли также различные методы выделения белка [11] в виде осадка. Некоторые аналитики тщетно пытались осуществить осаждение калия в присутствии белка, например, при определении калия в плазме крови. В некоторых случаях при соблюдении необходимых условий можно пользоваться любыми методами разрушения органических веществ или их выделения. Однако следует отметить, что при работе с очень малыми количествами анализируемого вещества самым простым и быстрым методом разрушения органических соединений является метод озоления. Если проводить озоление при температуре, не превышающей 400°, то можно избежать потерь калия [6], хотя, как показал Линдерштром-Ланг [12], незначительные потери калия могут иметь место при озолении уже при 330°. При озолении малых количеств анализируемого вещества в небольшом платиновом тигле, нагреваемом в микромуфельной печи, при 400° можно получить чистую золу. Тонкий твердый слой при легком доступе воздуха в процессе озоления дает возможность легко сжигать органические соединения в таких образцах, как, например, сыворотка крови, при сравнительно низкой температуре. Однако в настоящее время не ясно, можно ли указанным методом обрабатывать любые образцы биологического происхождения. [c.167]

Веществами, мешающими определению кальция и часто содержащимися в образцах биологического происхождения, являются фосфаты, небольшие количества магния и белок. Имеются указания 128, 30] на то, что определению кальция мешает также плазма крови, содержащая значительные концентрации холестерина и жиров. Фосфаты и магний образуют осадки только в щелочной среде. Поэтому, устанавливая pH раствора таким образом, чтобы избежать осаждения фосфатов и магния, можно устранить вредное действие этих примесей. На вредное влияние белка, которым обычно раньше пренебрегали [31, 32], впервые указали Ван-Сляйк и Сендрой [20] и другие [33]. Вредное влияние белка выражается в том, что в его присутствии часть оксалата кальция образует коллоид, который может проходить через фильтр, а также в том, что часть белка может попасть в осадок и обусловить избыток в расходовании окислителя. Поэтому перед определением кальция, безусловно, необходимо удалить белок из анализируемого раствора. При работе с очень малыми количествами анализируемого раствора, как было указано выше, озоление можно осуществить быстро и легко. Кроме того, для выделения белка с успехом можно использовать трихлоруксусную кислоту [20], а также разложить белок в жидкой фазе [34]. Озоление и разложение с помощью окислительного действия кислот приводит также к разрушению холестерина, что иногда существенно при проведении точных анализов [28, 30]. [c.173]

В тех случаях, когда образец биологического происхождения представляет собой жидкость (кровь, моча, спинномозговая жидкость и т. д.), требуемое количество этой жидкости вводят с помощью капиллярной пипетки в описанную выше платиновую чашку. При анализе образцов ткани, а также других твердых и полутвердых образцов, их взвешивают в закрытом сосуде, если требуется определить их вес во влажном состоянии, или сушат и взвешивают в сухом виде. Твердые образцы также помещают в платиновый сосуд для озоления. Сосуды, изготовленные из материала, содержащего кремний, например из фарфора или термостойкого стекла, не могут быть использованы для этой цели ввиду образования нерастворимых силикатов, препятствующих последую- [c.173]

Для анализа мочи берут пробу объемом 50 мл или более и проводят мокрое озоление в соответствии с указаниями на стр. 387 (первые два абзаца, исключая Н3РО4). Для анализа крови берут пробу не более 5 г, животных тканей — 15 г и помещают в стакан Филлипса из боросиликатного стекла на 125 мл, добавляют 0,1 г сульфата калия и концентрированную азотную кислоту из расчета 1 мл на каждый 1 г пробы. Осторожно нагревают до оседания пены и далее, поступают, как в случае с мочой К остатку, полученному упариванием пробы почти досуха на водяной бане, добавляют 1 мл концентрированной азотной кислоты и 50 мл воды и упаривают смесь до 25 мл. [c.842]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология