Определение растительных материалах

Существенный недостаток определения количества крахмала методом кислотного гидролиза заключается в том, что наряду с крахмалом частично расщепляются и гемицеллюлозы, вследствие чего искажаются данные об истинном содержании крахмала. Особенно это наблюдается при анализе растительных продуктов, содержащих много гемицеллюлоз. Чтобы избежать этого, был разработан диастатический (ферментативный) метод определения крахмала. Обработка навески растительного материала в определенных условиях диастазом позволяет отделить крахмал от других углеводов. Диастаз, как и другие ферменты, обладает строгой специфичностью и расщепляет только крахмал, переводя его в растворимое состояние. Растворимые продукты ферментативного расщепления крахмала отфильтровывают, отбирают определенное количество прозрачного фильтрата и проводят гидролиз НС1. В гидролизате определяют глюкозу описанными методами. Весьма существенным недостатком ферментативного метода является длительность определения. [c.165]

Методика определения. Для анализа берут навеску растительного материала из свежих зеленых (3—5 г) илн сухих листьев (1 г). Свежий растительный материал помещают в фарфоровую ступку и тщательно растирают. Для лучшего растирания. прибавляют мелкое стекло или кварцевый песок. Если для опыта взят сухой материал, то его измельчают в ступке. [c.296]

Так как содержание алкалоидов в растениях обычно не велико — от сотых и десятых долей процента до 1—2%, реже 5—10% (хинная кора, опий), то их выделение связано с использованием особых приемов экстракции. Обычно алкалоиды концентрируются в определенных органах растений, напр, в листьях, семенах, корнях, которые подвергают измельчению и извлечению водой, спиртом или другими органическими растворите тями в присутствии щелочных агентов или кислот. При извлечении водой или спиртом растительный материал предварительно смачивают водой, подкисленной уксусной, соляной или другими кислотами. При извлечении органическими растворителями растительный материал увлажняют растворами щелочных агентов (аммиак, окись кальция) или смешивают с су- [c.417]

Указанные операции обычно проводят в определенной последовательности. Вначале из растительного материала удаляют экстрактивные вещества, затем освобождают ткань от лигнина, после чего из оставшейся холоцеллюлозы выделяют полисахариды экстракцией различными реагентами. Полученную смесь полисахаридов разделяют на отдельные фракции, которые затем очищают с целью получения индивидуальных полисахаридов, свободных от посторонних примесей. [c.23]

Определение каротина в свежем растительном материал Адсорбция на окиси магния или окиси алюминия и под [c.360]

Метод люминесцентной микроскопии применяется (где это целесообразно) для определения подлинности лекарственного растительного сырья. Преимуществом метода является возможность его применения для изучения сухого растительного материала, из которого готовят толстые срезы или препараты порошка, и рассматривают их в падающем свете, при [c.282]

Когда растительный материал высушивался при 105° С до определения в нем содержания лигнина, выход последнего повышался. Высокотемпературная сушка не отражалась на содержании метоксила в лигнине-сырце, если остаточные лабильные метоксилы удалялись при конечном гидролизе. Баланс метоксилов показал, что методы с предгидролизом не давали всего лигнина. Однако лигнин может быть получен по следующему методу. [c.162]

В этом процессе измельченный растительный материал обрабатывается раствором разбавленной азотной кислоты при 65— 70 (нагрев является результатом экзотермической реакции) в течение определенного времени, зависящего от характера используемого растительного материала. [c.358]

Приготовление вытяжки пероксидазы. 2—4 г растительного материала (в зависимости от ожидаемой активности фермента) тщательно растирают с чистым песком, не содержащим соединений железа, или битым стеклом. Растертую массу количественно переносят в мерную колбу емкостью 200 мл, доводят водой до метки, взбалтывают и настаивают 2 ч, а затем фильтруют. Фильтрат служит для определения активности. Активность пероксидазы можно также определять непосредственно в болтушке, не фильтруя ее. [c.108]

Параллельно ставят контрольный опыт, в котором вместо навески исследуемого растительного материала берут такое же количество дистиллированной воды определение проводят описанным выше методом. Содержание аскорбиновой кислоты (мг%)в исследуемом продукте можно определить по формуле [c.133]

При фотометрическом определении кобальта нитрозо-К-со-лью поступают следующим образом [492]. Высушенную навеску растительного материала озоляют при 450" С и обрабатывают концентрированной серной кислотой. Золу обрабатывают фтористоводородной кислотой для удаления кремнекислоты, остаток растворяют в горячей разбавленной соляной кислоте и раствор фильтруют. К фильтрату прибавляют цитратный буферный раствор с рП 8,3 и экстрагируют кобальт (также медь, никель, цинк) раствором дитизона в хлороформе. Хлороформ отгоняют, разрушают дитизонаты обработкой азотной или хлорной кислотой и далее определяют кобальт нитрозо-К-солью. [c.214]

Описано определение галлия в золе растений с использованием экстрагирования его хлороформными растворами диэтилдитиокарбамата, 8-оксихинолина и дитизона. После отгонки хлороформа и добавления растворов соли берил- шя (внутренний стандарт) и нитрата калия (буфер) смесь комплексов металлов озоляют, остаток растворяют в царской водке, выпаривают, растворяют в ЫС1 и наносят на угольный электрод В 1 г сухого растительного материала возможно определение 1 мкг Ga [1221] [c.191]

Описано применение электрофореза на бумаге для определения колхицина Метод позволяет определить наличие колхицина в семенах, для чего одно семя измельчают, помещают на бумагу и аналогично чистому алкалоиду подвергают электрофорезу. Преимущество метода состоит в объединении экстракции и определения отделение алкалоида от растительного материала производится электрическим током [c.107]

В состав хлебных злаков и других растительных материалов, имеющих клеточную структуру, обычно входят органические вещества, которые разрушаются значительно легче, чем уголь, поэтому определение истинного содержания воды в таких случаях является трудной проблемой. Обычно разрушение растительного материала происходит необратимо и сопровождается выделением таких соединений, как оксиды углерода, метан, водород и вода [262 ] при этом не наблюдается определенная температура деструкции, так как химические реакции протекают в значительном температурном интервале и с различными скоростями. Нельсон и Хьюлетт [262 ] непосредственно взвешивали конденсируемую из вакуумной системы воду и строили график зависимости количества воды от температуры. Измерения производили после высушивания образцов в течение 3—4 ч при каждой заданной температуре. Результаты анализов некоторых природных продуктов приведены на рис. 3-5. [c.75]

Содержание целлюлозы в торфянике, начиная с определенной глубины, мало меняется при переходе к нижним горизонтам, поэтому можно сделать вывод, что в торфяниках создаются условия, препятствующие дальнейшему превращению еще не успевшего разложиться растительного материала. Такие условия возникают либо в результате накопления гуминовых веществ, обладающих антисептическими свойствами, либо вследствие прекращения доступа кислорода (воздуха) в глубь торфяника, так как только в аэробных условиях растительный материал (древесина) может полностью превратиться в гуминовые кислоты. Поэтому вероятно, что оставшиеся в зрелом торфянике неразложившиеся части растений, состоящие главным образом из лигнина и целлюлозы, не будут превращаться в гуминовые кислоты, а подвергнутся каким-то другим изменениям. [c.28]

Природные воды, почвенные вытяжки, а также вытяжки из растительного материала или смывы с растений содержат некоторые ионы в столь малых концентрациях, что непосредственное количественное определение их химическими методами затруднительно. Поэтому анализ начинают с повышения концентрации определяемого иона путем выпаривания больших количеств раствора. Ио это требует времени и осложняет определение побочными операциями (сжигание органических соединений, удаление мешающих ионов и т.п.). Между тем повышение концентрации определяемого иона достигается быстро и просто при помощи ионообменных смол. [c.443]

Количественное определение гликозидов имеет значение при исследовании растительного материала и главным образом лекарственного ырья. [c.541]

Количественное определение сахаров с применением хроматографии на бумаге включает в себя следующие основные операции а) фиксацию растительного материала б) экстракцию сахяров и очистку вытяжки от белков и других примесей в) распределительную хроматографию сахаров на бумаге г) элюцию сахаров с бумаги д) определение их содержания в элюатах. [c.227]

Определение пентозанов по фурфуролу нельзя считать абсолютно точным. Выход фурфурола по сравнению с теоретическим снижается в результате его разложения, образования гуминоподобных веществ, конденсации с лигнином и другими фенольными соединениями, например, тан-нинами. Чем больше скорость выведения фурфурола из реакционной среды, тем меньше протекают реакции его разложения и другие реакции. При расчете массовой доли пентозанов в древесине и другом растительном сырье приходится пользоваться эмпирическими таблицами и коэффициентами пересчета, зависящими от исследуемого растительного материала, что также вносит ошибки в результаты анализа. Кроме того, источником ошибок могут стать другие летучие соединения, образующиеся в условиях определения и отгоняемые вместе с фурфуролом (схема 11.7). [c.301]

Распространенной характеристикой гемицеллюлоз растительной ткани является содержание в ней пентозанов. Для этой цели исследуемые образцы растительного материала гидролизуют разбавленной минеральной кислотой до пентоз, которые затем превращают в фурфурол. Последний отгонякэт и по сюдержанию его в дистилляте вычисляют содержание пентозанов в растител ном материале. Методы определения фурфурола в дистиллятах весьма многочисленны и разнообразны. Различают объемные, весовые, колориметрические, полярографиче ие и спектрофотометрические методы. Характеристика и оценка этих методов подробно изложены в соот- [c.58]

В 1949 г. было выяснено, что клетки меристематических тканей растений обычно не содержат вирусов. В 1952 г. Дж. Мораль и Г. Мартин предложили, используя культивирование меристем, получать здоровые, избавленные от вирусной инфекции растения. Они обнаружили, что при выращивании верхушки побега, состоящей из конуса нарастания и 2—3 листовых зачатков, на ней образуются сферические образования — протокормы. Протокормы можно делить, и каждую часть культивировать до образования корней и листовых примордиев, получая в большом количестве генетически однородные безвирусные растения. В настоящий момент культивирование меристем побега — наиболее эффективный способ оздоровления растительного материала от вирусов, вироидов и микоплазм. Однако при этом способе требуется соблюдать определенные правила. Как уже говорилось, чем меньше размер мери-стематического экспланта, тем труднее вызвать в нем морфогенез. [c.198]

Предложенный болгарскими авторами метод его колориметрического определения в сырье основан па извлечении из растительного материала суммы алкалоидов, хроматографическом выделении из нее зоны глауципа, проведении цветной реакции с HN02. Метод дает ошибку в определепии около 3% [3]. Однако авторами не обсуждается механизм хромогенной реакции и природа образующегося пигмента. В настоящей работе проведено изучение структуры красного пигмента, иолучеппого в результате этой реакции. [c.78]

Подтверждением сказанного являются опыты Клышева по подрезанию подземной части А. aphyila на определенную глубину. Мы провели химическое изучение. представленного после такой операции растительного материала и [c.178]

Ксилемовая доля еловой древесины, конечно, давала хорошо известные окрашивания. Эти гистохимические пробы были подтверждены химическими средствами, включая определения общего содержания метоксилов и лигнина, окисление всего растительного материала и выделенного лигнина нитробензолом. [c.25]

Щелочное окисление нитробензолом предварительно экстрагированного растительного материала давало 0,6% альдегидов, состоявших примерно из 90% и-оксибензальдегида, 4% ванилина, 0,6% сиреневого альдегида и 0,1 % формилванилина. Определения содержания этих продуктов проводили посредством [c.25]

При переработке растительного материала часто образуется большое количество лигноцеллюлозных отходов, которые раньше не находили применения. Сейсас лигноцеллюлоза служит сырьем для получения углеродсодержащих соединений, в первую очередь глюкозы, которые можно использовать в других процессах. Лигноцеллюлоза - это комплекс из лигнина, гемицеллюлозы и целлюлозы, не подверженный действию ферментов без предварительной обработки. Проводимые в последнее время исследования были направлены в основном на изучение механизма расщепления целлюлозы с образованием глюкозы. Клонированы и охарактеризованы гены эндоглюканаз, экзоглюканаз и р-глюкозидаз многих микроорганизмов, но пока не определен набор ферментов, осуществляющих масштабное эффективное расщепление целлюлозы in vitro. [c.303]

Под микроскопом ТГИ представляют србой характерные сочетания элементов растительного или животного происхождения (форменных элементов) и продуктов глубокого превращения веществ растительного материала (основной массы), не сохранившего определенной структуры. К форменным элементам относятся остатки растительных материалов — споры, кутикулы, смоляные тельца, пыльца, водоросли. Различают макроспоры (0,1 — 1,5 мм) и микроспоры (<0,1 мм). В углях находятся фактически не споры, а их превращенные оболочки — зкзины. Пыльца — остатки одноклеточных образований, служащих для размножения высших семенных растений. Кутикулы происходят от наружного слоя листьев молодых побегов и веток. Из смолистых веществ исходных растений образовались смоляные тельца. [c.16]

Торф представляет собой смесь продуктов превращения растительных остат ков и минеральных включений различного происхождения. По Г,Л,Стадникову стадия торфа характеризуется присутствием химически неизменных или же измв ненных очень мало форменных злементов растений (стебли, листья, корни, кора) в основном аморфной, иногда пластической массы, представляющей собой продукт глубокого изменения растительного материала. Превращения растительного мэ териала в процессе торфообразования происходят путем химических реакций и в результате жизнедеятельности микроорганизмов. Растения — торфообразо ватели - могут принадлежать к мхам, травам и древесным породам, Первоначаль но определенный вид растений произрастает на минеральной почве, по мере на копления торфа меняются условия, что приводит к изменению видов растительных ассоциаций. В связи с зтим отдельные слои торфа включают остатки различнь [c.24]

Определение каротина в сухом растительном материа.", Определение каротииа в растительных соках Определение каротина в жирах, маслах и масляных рас [c.360]

Стандартный раствор — 0,05 г тирозина растворяют в 100 мл 2,5%-НОГО раствора HjS04. Водную вытяжку из растительного материала готовят так же, как для определения аминокислот формольным титрованием с применением смешанных индикаторов (см. стр. 17). [c.19]

Для определения протеолитической активности ферментов пред] рительно приготовляют дрожжевую суспензию или водные вытяж из муки, солода и другого растительного материала. В качестве б( кового субстрата берут обезжиренный казеин. Казеин наиболее лег расщепляется протеиназами. Кроме того, он принадлежит к нат1 ным белкам, расщепляемым пептидазами. [c.70]

Приготовление вытяжки фермента из растительного материала. Н аналитических весах взвешивают около 1 г ржаной муки свежего помола. Навеск переносят в фарфоровую ступку, добавляют немного битого стекла, 5 мл дистилл рованной воды и тщательно растирают. Растертую массу количественно перенос в мерную колбу емкостью 100 мл при помощи широкой воронки. Ступку, пестик воронку несколько раз споласкивают дистиллированной водой. Содержимое колб доводят водой до метки, тщательно встряхивают и оставляют на 3—4 ч настаиватьс при комнатной температуре. По истечении срока настаивания содержимое колб хорошо встряхивают и болтушку фильтруют через складчатый фильтр. Фильтрг используют для определения тирозиназы. [c.112]

Пример расчета. Для определения пентозанов брали навеску растительного материала, равную 4,67 г. На титрование в контрольном опыте затрачено 24,68 мл 0,1 н. раствора NajSjOa, а в рабочем — 9,85 мл. Объем всего дистиллята составлял 500 мл. На титрование было взято 200 мл дистиллята. Для определения пентозанов подставляем полученные данные в формулу [c.170]

Фотометрическое определение кобальта после экстракции 1-нитрозо-2-нафтолата четыреххлористым углеродом [1138]. Навеску почвы (или растительного материала) разлагают фтористоводородной кислотой после озоления. Затем окисляют двухвалентное железо 37о-ным раствором Н2О2 и осаждают его в виде фосфата из уксуснокислого раствора, содержащего мочевину. К фильтрату прибавляют щелочный раствор 1-нитрозо-2-нафтола и извлекают окрашенный комплекс кобальта четыреххлористым углеродом. Экстракты промывают последовательно концентрированной соляной кислотой, водой, смесью (1 1) этанола и 0,1 Л/ NaOH. Оптическую плотность объединенных экстрактов измеряют при 400 ммк. Содержание кобальта находят по калибровочному графику. Относительная ошибка определения 0,3—0,5- 10" % Со достигает 5%. [c.212]

Изучение кинетики гидролиза нативных ГМЦ в концентрированных растворах сильных минеральных кислот, особенно в начальный исриод процесса, иредставляет определенные экспериментальные трудности ввиду высокой скорости реакции. Такие исследования проводились рядом авторов [51, 55, 59], причем иродолжитсльиость обработки растительного материала составляла обычно более 10 мин. Оирсделенные трудности вызывает и расчет кинетических характеристик этого процесса по тем же причинам, что и ири гидролизе разбавленными водными растворами кислот. [c.199]

Растительный материал и вытекающий из кювет раствор во всех опытах подвергался химическому анализу. Азот определяли после озо-ления растительного материала с серной кислотой колориметрически,с реактивом Несслера, общий фосфор из той же озоленной смеси — также колориметрическим методом, кальций и магний — трилоном Б. Данные ПС определению азота и фосфора в растениях томатов и огурцов из опыта 1 приведены в табл. 5. [c.249]

Ход определения. Точную навеску воздушно-сухого растительного материала (от 0,5 до 2,0 г) перенесите в колбу вместимостью 250 мл для сжигания. Прилейте 20—25 мл концентрированной серной кисло-ты(пл. 1,84 г/см ), стараясь смыть приставшие к стенкам колбы частицы. Добавьте туда же 1 г сульфата меди Си304, играющего роль катализатора, и 5 г сульфата калия К2804 для повышения температуры кипения и ускорения процесса окисления. [c.276]

Образцом для определения следов Си2 может служить также растительный материал, например зерно пшеницы, обработанное медьсодержащим протравителем, или листья растений, опрыснутые бордоской жидкостью. Следы меди смывают с растительного материала водой или 0,01—0,005 М хлороводородной кислотой. Нейтральный или слабокислый раствор фильтруют через катионобменную колонку для поглощения ионов Си и далее поступают, как описано выше. [c.445]

Флуориметрия. Нами был разработан флуориметрический метод количественного определения серпентина в искусственной смеси в препарате раунатин, а также в корнях раувольфии змеиной [38]. Недостатком этого метода является то, что определение можно проводить только методом стандартов, а это удлиняет время производства анализа. Поэтому целью дальнейшего исследования явилась разработка спектрофотометрического метода определения серпентина в препарате раунатин и в растительном материале. Условия экстрагирования суммы алкалоидов из растительного материала описаны нами ранее [39]. [c.238]

Кроме того, был разработан метод количественного определения серпентина в раунатине. Для этого 0,100 г раунатина (точная навеска) растворяли в этаноле в мерной колбе емкостью 10 мл. Хроматографирование, элюирование и спектрофотометрическое определение серпентина в элюате проводили таким же образом, как описано для растительного материала. При определении серпентина в различных сериях раунатина, а также корней раувольфии была достигнута воспроизводимость, равная + 0 02% при среднем содержании 0,41%,+0,5% — при 14,10% и +0,3% — при 11,10% серпентина в образце. [c.240]