Крахмал место образования

Представителями группы гидролаз являются карбогидразы, катализирующие гидролиз полисахаридов, важное место среди них занимают мальтаза, расщепляющая а-гликозидную связь в дисахаридах (мальтозе), инвертаза, расщепляющая сахарозу на глюкозу и фруктозу. Амилазы — группа ферментов, гидролизующих крахмал с образованием декстринов и мальтозы. По характеру действия различают а-амилазу, 3-амилазу и глюкоамилазу. [c.24]

На рис. 7 показано распределение осадка Соз(Р04)г в колонках, представляющих смесь различных дисперсных веществ (носителей) с фосфатом натрия (осадитель). Наиболее четкие хроматограммы были получены на колонках, где в качестве носителей использовались окись алюминия, гидрат окиси алюминия, стеклянная пудра, кремневый ангидрид, крахмал (кривые 1—5) на носителях — силикагель, речной песок (кривые 5 и 7) хроматограмм не образовывалось, т. е. осадки размещались по всей длине колонки без заметного их удержания в месте образования. В осадочной хроматограмме наблюдается эквивалентное соотношение между плотностью осадка в зоне и количеством сорбированного осадителя в ней при получении промытой осадочной хроматограммы на предварительно промытой растворителем колонке (рис. 8). [c.40]

Углеводы — это обширный класс органических соединений с эмпирической формулой С (Н, 0) , образование которых связано с процессом фотосинтеза. Углеводы в растениях находятся в виде моносахаридов (глюкоза — С Н О ), олигосахаридов (крахмал) и полисахаридов (целлюлоза — (С Н О ) , где п > 10000. Целлюлоза — основной строительный материал растительных тканей. Она выполняет в растениях опорные функции и придает им механическую прочность. По распространенности органических веществ на земном шаре она занимает первое место. [c.47]

При образовании различных высших полиоз гликозидный гидроксил молекулы моносахарида может взаимодействовать с различными спиртовыми гидроксилами другой молекулы, очень часто образуя 1,4 -гликозидную связь (в крахмале, гликогене и целлюлозе). Однако встречаются и другие связи, например 1,6 (в некоторых местах молекул полисахаридов крахмала), 2,Г (в инулине) и т. д. [c.698]

Запасные полисахариды присутствуют в растениях в коллоидном состоянии или в водонерастворимой форме, благодаря чему они могут накапливаться в растительных клетках в большом количестве, не влияя на осмотическое давление. Крахмал — наиболее важный и накапливающийся в наибольшем количестве запасный полисахарид в мире растений. У всех растений — от низших водорослей до некоторых высших растений, главным образом двудольных,— углеводы, образовавшиеся в процессе фотосинтеза в хлоропластах, немедленно превращаются в крахмал (фото 46). Такой крахмал называют ассимиляционным. Согласно Смиту [160], у подсолнечника в крахмал превращается почти весь ассимилированный углерод. Однако ассимиляционный крахмал представляет собой довольно лабильную, переходную форму он либо довольно быстро используется в процессах метаболизма, либо превращается в ряде органов, например в семенах, плодах, стеблях, листовых влагалищах и корнях, в запасный крахмал. Эти общие метаболические особенности присущи так называемому крахмалистому листу. Напротив, в сахаристом листе злаков (однодольные растения) крахмал почти не обнаруживается. Сахара здесь представлены главным образом сахарозой и различными моносахаридами они транспортируются в другие части растения и превращаются в запасный крахмал в специальных органах. Например, энергичный синтез крахмала обычно имеет место в листовых влагалищах и в семенах злаков, начиная от периода цветения и кончая периодом созревания зерна. В ряде работ показано, что образование крахмала в зерне ячменя, риса и ржи в стадии налива специфически связано с ассимиляционной активностью верхних листьев и колоса, но не с ассимиляционной активностью расположенных ниже листьев [8, 144]. [c.140]

Выполнение анализа. В колбу вместимостью 250 мл вносят навеску ударопрочного полистирола 0,5—0,2 г либо АБС- или МБС-пластика (в зависимости от количества каучука, введенного при сополимеризации — 5—25%), взвешенную с точностью до 0,0002 г. При определении каучука в гель-фракции и исходном каучуке навески в количестве 60—80 мг и 30—40 мг соответственно взвешивают с точностью до 0,005 мг. Навески заливают 25 мл хлороформа, выдерживают 12 ч при комнатной температуре или нагревают в течение 1 ч на песчаной бане, присоединив к колбе холодильник. Затем пипеткой добавляют 20 мл 0,2 н. раствора бромида иода в тетрахлорметане. Колбы помещают в темное место на 30 мин, после чего наливают 15 мл 10 %-ного раствора иодида калия, 50 мл воды, 20 мл этилового спирта и титруют 0,1 н. раствором тиосульфата натрия, прибавляя к концу титрования раствор крахмала. При титровании необходимо энергично встряхивать содержимое колбы для предотвращения образования эмульсии. Титрование продолжают до обесцвечивания раствора. В аналогичных условиях проводят два контрольных опыта. [c.171]

Живые паренхимные клетки сердцевинных лучей, расположенные вдоль ствола. Эти клетки являются местом, где происходит образование резервных веществ (крахмала и жиров) осенью и расходование их весной. [c.132]

Крахмал синтезируется при помощи хлорофилла в зеленых листьях растений из углекислоты воздуха и воды, поступающей в листья из земли через корни растений. Этот синтез требует затраты тепла и происходит за счет световой солнечной энергии, улавливаемой листьями растений. Крахмал не остается в местах первоначального образования. Под действием энзим он постепенно распадается на низкомолекулярные сахаристые соединения, вплоть до мальтозы, которые частью потребляются на постройку новых клеток, а частью переносятся по сосудам растений в семена, корни, клубни и стволы растений, где из мальтозы снова синтезируется крахмал и отлагается в виде зерен в качестве запасного материала, необходимого для прорастания семян и клубней и вообще для развития растений в начале вегетационного периода в следующем году. [c.116]

Если же в нагретую крахмальную суспензию снова вливать раствор едкого натра, в месте соприкосновения раствора щелочи с крахмалом произойдет моментальная клейстеризация и образование плотных сгустков, которые очень долго не будут размешиваться. Поэтому следует считать правильным прием вливания раствора едкого натра в холодную суспензию крахмала. [c.160]

Особое место в кристаллизации сульфата аммония занимают органические примеси. Они часто ускоряют рост кристаллов, способствуют образованию более крупных кристаллов округлой формы. В присутствии карбамида, например, сужается метастабильная область, растут кристаллы округлой формы и образуются двойниковые сростки. При определенных концентрациях примесь фенола также способствует осаждению кристаллов сернокислого аммония изометричной формы, увеличению их размеров и появлению агрегатов. В присутствии крахмала кристаллы (НН4)2504 становятся шестигранными пластинками, а примесь пиридина вызывает появление очень мелких кристаллов. [c.213]

При регенерации боксита воздухом выделяется сернистый газ, обнаруженный в опытах но обесцвечиванию синего раствора смеси раствора крахмала и 1/10 и. раствора иода. В случае регенерации боксита водяным паром имеет место интенсивное образование сероводорода. Таким образом, можно предположить, что химическая реакция взаимодействия боксита (состоящего в основном из окислов железа и алюминия) с сернистыми соединениями протекает по схеме [c.173]

Диализ. Вещества, которые растворяются с образованием истинных растворов, часто называют кристаллоидами в отличие от коллоидов. Кристаллоиды легко проходят чере мембраны, задерживающие коллоидные частицы. Вообще говоря, эти мембраны можно рассматривать как сита с отверстиями определенной величины. Если вещество, диффундирующее сквозь мембрану, имеет частицы меньшего размера, чем отверстия, как это имеет место в случае кристаллоидов, оно легко проходит но коллоидные частицы мембраной задерживаются. Если раствор, содерн ащш как коллоиды, так и кристаллоиды, поместить в пергаментный мешочек и подвесить последний в сосуде с дистиллированной водой, то кристаллоиды пройдут через мембрану в дистиллированную воду, а коллоиды останутся в мешочке. Такая мембрана называется диализирующей, а процесс разделения кристаллоидов и коллоидов носит название диализа. Схематическое изображение этого процесса дано на рис. 111 примером кристаллоида здесь служит хлорид натрия, а коллоида — крахмал. [c.137]

Для выяснения вопроса, вызывает ли ш елочь гидролиз крахмала с образованием декстрина (низкомолекулярный продукт гидролиза крахмала), как это имеет место при деххствии кислот, мы после шелочной обработки определяли количество образовавшегося декстрина. Для этого нагревали картофельный крахмал с 2,5%-ньтм раствором едкого натра в течение часа при 80° С, брали пробу и определяли процентное содерн ание органического вещества, растворимого в 50%-ном спирте. Состав клея был следующий (в проц.) [c.159]

Распад полисахаридов под действием внеклеточных ферментов протекает до моносахаридов, поскольку только моносахариды могут проникать через клеточную мембрану, а фосфаты сахаров лишены этой способности. Ряд ферментов растений может расщеплять полисахариды. Так, р-амилаза разрушает а-(1—>4)-гликозидные связи крахмала с образованием мальтозы. а-(1—>-6)-Гликозидные связи в местах разветвления расщепляются К-ферментом . При гидролизе крахмала в присутствии а-амилазы возникает смесь соединений адальтоза, мальтотриоза, глю коза и низкомолекулярные предельные декстрины. Мальтоза и мальтотриоза расщепляются мальтазой до глюкозы. [c.68]

Что определяет характер включения сахарных единиц в полисахариды Некоторые гомополисахариды, такие, как, например, целлюлоза и линейная форма крахмала (амилоза), содержат только один моноса-харидный компонент и только в одном типе связи. Для образования таких цепей один фермент может добавлять одну единицу активированного сахара ко второй со стороны растущего конца. В отличие от этого для сборки молекулы гликогена необходимы по крайней мере два фермента. Одним из них является синтетаза, катализирующая перенос активированных глюкозильных единиц от иОР-глюкозы к растущему концу полимера, а другим — трансгликозилаза, выполняющая функцию ветвящего фермента. После того как длина концов цепи достигнет приблизительно десяти единиц, ветвящий фермент атакует гликозидную связь в каком-нибудь месте цепи. Действуя аналогично гидролазе, он образует, по-видимому, промежуточное соединение, которое представляет собой гликозилфермент или стабилизированный карбоний-ион. В любом случае фермент не освобождает оторванный фрагмент цепи (как это имеет место в случае а-амилазы гл. 7, разд. В,6), а переносит его к другому, близко расположенному активному участку молекулы гликогена. Здесь фермент снова присоединяет связанную с ним цепь к свободной 6-гидроксильной группе гликогена, создавая таким образом новую ветвь, присоединенную при помощи а-1,6-связи. [c.493]

Несколько иначе обстоит дело с развитием работ в той области, которая послужила исходной позицией развития гомогенного катализа. Если иметь в виду самую сущность каталитических работ и первые объяснения каталитических явлений, то здесь можно заметить много общего между современными исследованиями в области гомогенного катализа и их весьма ранними предшественниками. В самом деле, уже в 1782 г. Шееле сформулировал положение о том, что этерификация органических кислот спиртом требует присутствия лишь незначительных количеств минеральных кислот, а гидролиз эфиров происходит посредством таких же количеств щелочей. Но еще более четко определена роль агента Клеманом и Дезормом в 1793—1806 гг. Выдвинутая ими теория процесса получения серной кислоты в какой-то степени может рассматриваться как начало современного учения о катализе. Но получился интересный исторический парадокс. Когда в 30-х годах появились обобщения по катализу, Берцелиус не назвал работ Клемана и Дезорма в числе первых каталитических исследований. Это случилось вовсе не потому, что они действительно не были таковыми, а по другим. причинам. Явное внестехиометрическое вмешательство азотной кислоты в реакцию окисления сернистого газа просто объяснялось образованием и распадом промежуточных соединений. Вслед за Клеманом и Дезормом Берцелиус обнаружил в системе реакций получения серной кислоты, а равно и в реакциях этерификации проявление знакомых ему химических действий, а не столько необычных сил , ка.кие имели место при реакциях на платине и превращениях сложных продуктов жизнедеятельности растений, например крахмала. [c.15]

Исследованы ранее не известные кристаллические комплексы мочевины и тиомочевины с полиэтиленоксидами, молекулярный вес которых составлял от нескольких сот тысяч до 4 млн. Образование комплексов связывают с появлением водородных связей между цепью полиэтиленоксида и кристаллической рещеткой мочевины 339. Рассмотрена возможность применения таких комплексов для фракционирования полимера. Изучено взаимодействие полиэтиленоксида с иодом. Замечено, что в присутствии полиоксиэтилена не происходит характерного окращивания крахмала при взаимодействии с йодом. Высказано предположение, что в водной среде имеет место взаимодействие между полиэтиле-ноксидом и Лз-, приводящее к образованию двух комплексов 390,391. При изучении взаимодействия свободных радикалов, образующихся в результате термического распада перекиси дикуми-ла, с полиэтиленоксидом в вакууме при 140° С было обнаружено, что образующиеся радикалы вызывают сшивку полимера 392. [c.164]

Растительные клетки содержат также пластиды других типов. В бесцветных лейкопластах запасаются крахмал и масла. Значительное место во многих растительных клетках занимают окруженные одиночной мембраной крупные пузьфь-ш-вакуоли (см. рис. 2-21). Они заполнены клеточным соком и различными продуктами, являющимися отходами метаболизма. Эти продукты часто агрегируют с образованием кристаллических отложений. В молодых клетках вакуоли имеют небольшую величину, но по мере старения клеток их размеры увеличиваются, и часто они заполняют весь объем клетки. Вакуоли встречаются также и в некоторых животных клетках, но здесь они, как правило, значительно мельче. У растительных клеток нет ни ресничек, ни жгутиков. [c.47]

Ход работы. Навеску (0,5 г) помещают в предварительно взвешенный платиновый тигель и взвешивают на аналитических весах. К навеске добавляют 1 г безводной соды. Тигель закрывают крышкой и сплавляют смесь при температуре 900—1000° С в течение 3—4 мин. Содержимое тигля выщелачивают 60 мл НС1 (1 4), нагретой до 80° С в стакане емкостью 200 мл, добавляют 6—7 капель HNO3, уд. в. 1,4 и кипятят до удаления окислов азота. Раствор переносят в коническую колбу емкостью 250 МЛ, нейтрализуют аммиаком до образования слабой мути, которую растворяют 2—3 каплями концентрированной НС1. Затем добавляют 1 мл НС1, уд. в. 1,19, охлаждают и прибавляют 1—2 г йодида калия. Колбу закрывают часовым стеклом, взбалтывают и ставят в темное место на 5—8 мин. Затем смывают часовое стекло и стенки колбы дистиллированной водой и быстро титруют выделившийся йод 0,01 и. тиосульфатом до светло-жел-той окраски, добавляют 2—3 мл раствора крахмала и продолжают титровать 0,01 н. раствором тиосульфата до обесцвечивания. Процентное содержание окиси железа определяют так же, как и по предыдущему способу. [c.28]

К. А. Тимирязев (Растение как источник силы. Русский вестник, 10, 617—548, 1875) своей знаменитой амилограммой показал зависимость образования крахмала от фотосинтеза отбрасывая на лист спектр солнечного света, он установил, что крахмал образуется только в местах, освещаемых лучами, поглощаемыми хлорофиллом (красные и слабее синие), т. е. теми, в которых ндет фотосинтез. Дрим. ред.) [c.47]

Только пигменты сине-зеленых водорослей распределяются более иди менее равномерно в хроматоплазме этих примитивных организмов. Сакс [1] утверждал, что образование крахмальных зерен внутри хлоропластов во время фотосинтеза указывает на то, что эти тела являются местом фотосинтетического процесса. Рейнке [6] заметил, что это доказательство неубедительно, так как хлоропласты также легко могут превраш ать в крахмал сахара, доставляемые извне (см. главу Ш). Однако наблюдения Энгельмана [4, 5], говоряш ие о том, что чувствительные к кислороду подвижные бактерии привлекаются хлоропластами, дают, по мнению Рейнке, неоспоримое доказательство образования кислорода в этих телах. [c.359]

Недавно было обнаружено, что форма, химические свойства и кристаллическая структура крахмальных зерен определяются многими генами [19], причем на эти признаки влияют также факторы окружающей среды в период развития зерна крахмала. Классическая работа Негели [128] положила начало интенсивному изучению расположения слоев в крахмальных зернах амилопластов. Вначале предполагали, что наличие чередующихся слоев, расположенных в зернах крахмала в радиальном направлении, обусловлено то высоким, то низким содержанием воды. Фрей-Висслинг [65] предположил, что наблюдаемые с помощью микроскопа структурные различия обусловлены изменением показателя преломления, который оказывается более высоким во внутренней части слоя и более низким — в его наружной части, причем имеет место резкое скачкообразное повышение показателя преломления в следующем слое. Слоистое строение крахмальных зерен картофеля, кукурузы и сорго [171], а также эндосперма злаков [34] окончательно доказано исследованиями с применением электронного микроскопа. Вполне очевидно, что содержание воды не единственный фактор, определяющий структурные особенности зерен крахмала, поскольку для исследований в электронном микроскопе использовались высушенные образцы. Бак-хайзен [22] был сторонником предположения, согласно которому образование слоев обусловлено отложением крахмала в разное время суток, причем крахмал, откладывающийся в дневное время, отличается высоким показателем преломления. Он привел данные, показывающие, что при неизменных внешних условиях во время роста у пшеницы формируются крахмальные зерна, лишенные видимой слоистой структуры. Эти данные были подтверждены электронно-микроскопическим исследованием образования зерен крахмала в эндосперме ячменя и пшеницы, произраставших в постоянных условиях [34, 36]. Однако микроскопические и электронно-микроскопические исследования клубней картофеля [36, 148] и РеШота [32] дали совсем иную картину. При выращивании этих растений в тщательно контролируемых условиях освещения и температуры их крахмальные зерна обладали слоистостью, идентичной слоистости нативного крахмала, который образовывался в нормальных полевых условиях то же было установлено [c.143]

ЯМР протонов воды в поликристаллических образцах картофельного крахмала с влажпостью 20% представлены суперпозицией сипглета и узкого дублета с параметрами Г]-= О, с = 0,05 Э и р/а = 0,4 (см. прило к. IV). Параметры узкого дублета не зависят ни от сорта катионов, которыми нейтрализованы фосфатные группы, ни от телшературы. Отсутствие температурной зависимости доказывает, что представления об анизотропной воде и в случае крахмала не могут отвечать действительности. Параметры анизотропного движения молекул воды с ростом температуры должны изменяться, приближаясь к параметрам изотропной жидкости, как это имеет место в жидких кристаллах. Среднее же значение ЛМП при диффузии воды, определяемое суммой (15), является структурной константой, отражающей строение находящейся в контакте с молекулами воды поверхности, в данном случае полисахарида с его центрами типов iS+(0 -), jS -(OH ), t m I. Полученные для крахмала обнадеживающие результаты подтверждают перспективность рассматриваемых методов при изучении не только нативной структуры белков, но и других важнейших макромолекулярпых образований в живом организме, в частности клеточных мембран, содержащих структурные единицы как белков, так и полисахаридов (гликопротеиды). [c.140]

Навески заливают 25 мл дихлорэтана, бензола или хлороформа и выдерживают примерно 12 ч или нагревают в течение 1 ч иа песчаной бане, присоединив к колбе холодильник. Затем пипеткой добавляют 0,2 н. раствор бромистого иода 15 мл при анализе ударопрочного полистирола и АБС-пластика и 20 мл при анализе гель-фракции. Колбы помещают в темное место на 30 мин, после чего добавляют 50 мл воды и 15 мл 10%-ного раствора К1 и титруют 0,1 н. раствором Na2S20з, прибавляя в конце титрования 20 мл спирта и раствор крахмала. При титровании необходимо энергично встряхивать содержимое колбы для предотвращения образования эмульсии. Титрование продолжают до обесцвечивания раствора. [c.13]

Явление Лизеганга может наблюдаться при выпадении в студнях самых разнообразных осадков (но далеко не всех, получаемых путем химической реакции обмена). Так, можно получить прослойки или кольца, содержащие РЬСг04, HgJ2 в агаре. М (0Н)г в желатине и других студнях. В качестве студнеобразных сред были испытаны как органические лиогели (желатин, агар, крахмал и другие), так и неорганические (кремниевая кислота, арсенаты марганца, цинка и железа, гидрат окиси церия и др.). Часто вместо колец наблюдается образование спиралей розеток и т. д., причем. имеет место радиальный или тангенциальный ритм в отложении осадков. [c.411]

Один из наиболее интересных опьтов с коацерватными каплями состоял в том, что в коацерваты, образованные из гистона и гуммиарабика, вводили фермент фосфорилазу, а затем эти капли помещали в раствор глюкозо-1-фосфата. Коацерватные капли поглощали из раствора глюкозо-1-фосфат, и в них осуществлялось ферментативное превращение глюкозо-1-фосфата в крахмал, за счет скопления которого увеличивались размеры капли. Если в коацерватные капли вводить два фермента (фосфорилазу и р-амилазу), то в них имеет место последовательное ферментативное превращение глюкозо-1-фосфата в [c.170]

Ступенчатый характер пщролиза крахмала рассмотрен ранее. Реакция гидролиза крахмала ускоряется амилазами—специфическими ферментами, относящимися к подклассу гидролаз гликозидов (кла.сс гидролаз). В зависимости от характера фермента разрьш гликозидных связей между остатками а-О-глюкопира-нозы в молекуле крахмала и присоединение по месту разрыва элементов воды (Н и ОН-группа) может происходить в различных позрщиях. Соответственно этому конечными продуктами гидролиза крахмала оказываются либо глюкоза, либо мальтоза, либо олигосахариды. Естественно, что в процессе постепенного укорочения молекулы крахмала в результате гидролитического отщепления моносахарид-ных, дисахаридных или олигосахаридных звеньев на какой-то ступени распада в качестве промежуточных продуктов возникают декстрины. Наличие и динамику их образования легко установить, прослеживая изменение окраски крахмала с иодом от синей до красно-бурой в процессе ферментативного гидролиза крахмала. [c.328]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология