Хлоропласты содержание ДНК

Протеазы. В листьях обнаружено, по меньшей мере, четыре типа этих ферментов [101]. Они локализованы среди других в хлоропластах и вакуолях [85, 112]. Физиологическое значение этих протеаз неясно. Однако замечено, что их содержание нередко повышается в вакуолях в-процессе старения тканей [115]. Кроме того, природные поликатионы, такие, как кадаверин, спермин, путресцин или спермидин, подавляют активность некоторых протеаз в клетках [18]. В листьях люцерны потери белков могут достигать 40 % между заготовкой зеленой массы и ее гомогенизацией Финли и др. [31] относят их за счет протеаз, выявленных в листьях. Из люцерны была выделена протеаза с молекулярной массой 68 ООО Да, у которой оптимальная активность проявляется при pH 7—9, это позволяет ей оставаться активной даже после обработки зеленого клеточного сока люцерны [108]. [c.256]

Разумеется, содержание липидов зависит от липидных структур, имеющихся в рассматриваемых тканях. Однако липиды мембран всегда составляют небольшую часть всех липидов клетки. Так, даже в листьях, которые обеспечивают с помощью хлоропластов накопление световой энергии, на долю липидов, представляющих около половины состава ламелл хлоропластов (см. 6.3), приходится лишь 2% сырой массы листьев [22]. [c.288]

Прокариотические сине-зеленые водоросли (цианобактерии) являются простейшими фотосинтезирующими организмами, выделяющими кислород. Они не содержат хлоропластов, но имеют более или менее развитые внутренние фотосинтетические мембраны, включающие хлорофилл а, каротиноиды и фикобилины. Опишите все изменения в морфологии, ультраструктуре и составе пигментов, которые можно ожидать при переносе цианобактерий из 1) условий низкой освещенности в условия высокой освещенности и высокого содержания кислорода, 2) условий высокой освещенности в условия низкой освещенности, 3) условий освещения белым светом в условия освещения зеленым или красным светом. [c.402]

Существование такого взаимодействия, очевидно, необходимо для координирования ростовых процессов. Известно, что у этиолированных растений содержание ингибиторов практически ничтожно. В таком растении происходят в основном процессы растяжения осевых органов, а листья и боковые побеги недоразвиты. Свет активирует синтез природных ингибиторов, и прежде всего фенолов, т. е. осуществляет регуляцию функционирования метаболических вилок . Образование этих соединений начинается в связи с активацией функций хлоропластов. [c.212]

Хлоропласты значительно крупнее митохондрий и могут иметь самую разную форму. Из-за высокого содержания в фотосинтезирующих клетках пигмента хлорофилла они обьино окрашены в зеленый цвет, однако их окраска может меняться в зависимости от относительных количеств других пигментов, содержащихся в хлоропластах. Молекулы этих пигментов, которые в совокупности способны поглощать световую энергию во всей видимой области спектра, располагаются во внутренней мембране хлоропласта. Эта мембрана свернута весьма сложным образом в виде дисков, называемых ти- [c.47]

Для того чтобы достичь этой цели, необходимо оценить относительную важность различных факторов, ограничивающих фотосинтез. Действие этих факторов определяется как внутренними фотобиологическими и физиологическими ограничениями,, так и теми характеристиками окружающей среды, которые сказываются на проявлении этих лимитирующих факторов. К числу таких важнейших факторов относятся индекс урожайности,, свет, СОг, вода, температура, питательные вещества, вредители и болезни, влияние кислорода и фотодыхание, темновое дыхание, ограничение скорости переноса электронов, содержание ферментов карбоксилирования, светособирающих пигментов,, диссипация энергии в побочных реакциях и скорость переноса веществ из хлоропластов. [c.49]

Рис. 4. Содержание фенольных соединений в хлоропластах, выделенных из листьев ивы (май 1966 г.)

Цифры, приведенные в табл. 35 (0,5—2,5% аскорбиновой кислоты в веществе хлоропластов), являются величинами того же порядка [251, 258], что и показатели концентрации витамина С в различных листьях (по данным Жиру, от 0,05 до 3% от сухого веса листьев). Содержание аскорбиновой кислоты сильно варьирует не только от вида к виду, но и с возрастом листьев, сезоном года и временем дня. [c.280]

Ноак [10] пытался подтвердить свою теорию особыми экспериментами. Он пытался доказать, что сернистый ангидрид и окислы азота действительно влияют на состояние железа в хлоропластах. Эти опыты, приводимые в главе XIV, показали, что сернистый ангидрид вызывает увеличение содержания воднорастворимого железа в листьях с 6 до 12 /о. Цианистый калий вызывает увеличение до 10%, а роданистый калий — до 12,6%. [c.327]

Содержание вещества хлоропластов в. листьях, высушенных при во [c.371]

В последние годы исследованию белков хлоропластов были посвящены работы О. П. Осиповой, которая установила следующее. Характер белков хлоропластов не только разных видов, но и одного и того же вида не вполне постоянен и меняется как в связи с возрастом, так, вероятно, и в связи с условиями роста и питания. Так. например, с возрастом меняются вязкость, изоэлектрические точки, количественные показатели аминокислотного состава. Содержание белков в составе хлоропластов достигает 50 — 60 и даже 80%. Белки хлоропластов обладают более резко выраженной восстановительной способностью, чем белки плазмы, и большим сродством к хлорофиллу, т. е. способностью лучше его связывать. Связь хлорофилла с белком не адсорбционная, а химическая и осуществляется при участии кислотных группировок белков (ем. также примечание на стр. 384). В осуществлении связей хлорофилла е белком, очевидно, принимают участие и группировки белков, участвующие в восстановительных реакциях связывание белком хлорофилла уменьшает его восстановительную способность. [c.374]

Чнбнел[99] подсчитал, что в листьях шпината белки распределены равномерно в цитоплазме и хлоропластах. Содержание белков и липоидов в различных частях листа показано в табл. 48. Резуль- [c.372]

В опытах Агафоновой (1964) было показано, что использование при некорневой подкормке фасоли Fe-ЭДТА делает железо более подвижным. Содержание его мгк/г сухого веса вещества) в этом случае по сравнению с сульфатными вариантами резко снижается в сосудисто-проводящих пучках и клеточных мембранах. Сравнительно низким оказывается также количество железа в вариантах с Fe-ЭДТА в ядрах, фрагментах клеточных оболочек и хлоропластах. Содержание железа во фракции митохондрий в зависимости от условий питания почти не изменяется. [c.277]

Митохондриальная Н -АТФ-синтаза построена из субкомплекса Fl (пять типов субъединиц), субкомплекса Fq (четыре типа субъединиц) и еще четырех дополнительных субъединиц. При этом, как ку Е. соИ, фактор Fi содержит субъединицы За, 3 , 7, o и е. Крупные субъединицы (а и ) очень напоминают таковые Е. соИ. Так в -субъединицах фактора Fi из митохондрий сердца быка, дрожжей, Е. oli и хлоропластов содержание консервативных последовательностей составляет около 70%. Подобная ситуация наблюдается и в случае а-субъединицы. [c.131]

Защищенные новыми энзимами живые клетки постепенно начали выносить все большее содержание Ог в газосфере. На рис. 193 показано при увеличении в 4-10 раз расположение пероксозом, митохондриев и хлоропластов внутри листа табака. [c.377]

ДНК, не влияя при этом на репликацию ДНК в ядре. Этот эффект сходен с описанным выше действием этидиумбромида на митохондриальную ДНК- Вместе с тем клетки hlamydomonas, обработанные эти-диумбромидом, способны в дальнейшем восстанавливать содержание ДНК в хлоропластах. При интерпретации этих данных было высказана предположение о существовании исходных копий хлоропластной ДНК в специально защищенных участках. При такой интерпретации необходимо учитывать также данные, свидетельствующие о том, что, хотя репликация ДНК в ядре и в других органеллах происходит в разные периоды клеточного цикла, соотношение между содержанием ДНК в ядре и органеллах поддерживается на постоянном уровне. Должен, по-видимому, существовать какой-то регуляторный механизм, обусловливающий сопряжение процессов репликации ДНК в ядре, митохондриях и хлоропластах [184]. [c.271]

При поглощении хлоропластами СО2, меченного С, первым органическим соединением, в котором обнаруживается радиоактивная метка, оказывается 3-фосфоглицерат. Две молекулы этого соединения образуются под действием присутствующего в хлоронластах фермента рибулозо-1,5-дифосфат — карбоксилазы (в листьях шпината его содержание составляет 16% общего количества белка). Этот фермент содержится в зеленых растениях, а также в пурпурных и зеленых бактериях. Реакция, катализируемая данным ферментом, отличается от других реакций карбоксилирования тем, что продукт карбоксилирования расщепляется тем же самым ферментом. Структура субстрата, к которому фермент проявляет абсолютную специфичность, не допускает образования наблюдаемого продукта путем прямого р-карбоксилирования. На основании косвенных доказательств было сделано предположение о реализации следующего механизма [c.175]

Биосинтез белков в клетках листьев зависит от экспрессии генетической информации трех различных геномов ядра, хлоропластов и митохондрий. Эта генетическая информация проявляется через три генетические системы, включающие ДНК, ДНК-полимеразу, РНК-полимеразу и аппарат белкового синтеза (рибосомы, транспортные РНК, ферментный набор...). Ядерные гены подчиняются закону двуродительского наследования, тогда как гены органелл имеют исключительно материнское наследование. Именно эти носители генетической информации с их собственными законами передачи определяют структуру и свойства белков листьев, а также содержание в них белков, липидов, волокон и т. п. Более подробные сведения о передаче и проявлении генетической информации в хлоропластах можно получить из литературных источников [25, 27, 1П , как и по тем же вопросам применительно к митохондриям [67]. [c.237]

Наиболее характерные для хлоропластов ферменты катализируют фотосинтетическую фиксацию двуокиси углерода — это так называемый цикл Кальвина. Ферментом карбоксилиро-вания является рибулозобисфосфаткарбоксилаза/оксигеназа. Этот фермент обладает многими весьма примечательными свойствами [26], в частности очень слабой энзиматической активностью по сравнению с активностями других ферментов цикла Кальвина. Кинетическое равновесие устанавливается очень высоким содержанием рибулозобисфосфаткарбоксилазы/оксигеназы, которая может составлять 80 % общего количества белков стромы. [c.242]

Два замечания, касающиеся (З-лектинов они образуют комплексы с некоторыми гомополисахаридами или гетерополисахаридами, а в пределах последних — с гликозилированными фла-вонолами [48] они скорее локализованы в цитоплазматических мембранах, тогда как оболочка и ламеллы хлоропластов, по-ви-димому, лишены гликопротеинов и, следовательно, лектинов [54]. Поэтому их реактивность несомненна, но такая субклеточная локализация определенно приводит к уменьшению их содержания в суммарных белковых препаратах, выделенных из листьев. [c.258]

Однако хлоропласты и митохондрии эукариотических клеток содержат рибосомы, отличные от 80S типа. Рибосомы хлоропластов высших растений принадлежат к истинному 70S типу и практически не отличимы от рибосом эубактерий и синезеленых водорослей по вышеприведенным показателям и по более детальным молекулярным характеристикам. Митохондриальные рибосомы более разнообразны в зависимости от принадлежности организма к тому или иному царству эукариот. Наиболее изучены рибосомы митохондрий грибов и млекопитающих. Митохондриальные рибосомы грибов (Sa haromy es, Neurospora) похожи на прокариотические 70S рибосомы, но, может быть, лишь слегка крупнее (около 75S) и содержат относительно больше белка абсолютное содержание рибосомной РНК в них, повидимому, почти такое же, как в типичных 70S рибосомах. Митохондриальные рибосомы млекопитающих, однако, существенно мельче типичных 70S рибосом, имея также и существенно меньшее абсолютное количество рибосомной РНК на частицу их иногда называют мини-рибосомами . Действительно, коэффициент седиментации рибосом из митохондрий млекопитающих составляет всего около 55S, а тотальная масса рибосомной РНК на частицу более чем на 1/3 меньше, чем в типичных 70S рибосомах. В то же время, митохондриальные рибосомы млекопитающих содержат довольно много белка, так что общие размеры их как будто бы не сильно отличаются от таковых прокариотических рибосом. В целом, несмотря на ряд необычных черт, по ряду своих признаков, и в том числе по функциональному поведению, митохондриальные рибосомы млекопитающих все же близки к прокариотическим 70S рибосомам. [c.54]

Фотосинтетические пигменты представлены хлорофиллами а и b и каротиноидами. Основную массу последних составляют Р-каротин и ксантофилл, близкий к зеаксантину. Обнаружено несколько каротиноидов в незначительных количествах, среди которых идентифицированы эхиненон, Р-криптоксантин, изокриптоксантин и др. Все эти каротиноиды найдены и у цианобактерий. По составу жирных кислот и гликолипидов прохлорофиты также близки к цианобактериям. В цитоплазме обнаружены 705-рибо-сомные частицы, содержащие РНК 165- и 235 -типов, аналогично рибосомальным РНК прокариот и хлоропластов эукариот. Молярное содержание ГЦ в ДНК — 39 —53 %. [c.322]

На модельной системе [530] был исследован процесс получения водорода из воды с использованием природных и синтетических катализаторов и солнечной радиации в качестве источника энергии. Солнечный свет поглощается мембраной из хлоропласта в качестве катализатора процесс переноса электронов использовали ферредоксин, флаводоксин, цитохром, красители на основе виологена, синтетические кластеры, содержащие Ре — Мо — 5-центры, а в качестве активатора протонов — гидрогеиазу или РЮг. Основная модельная система состояла из мембраны — буферной суспензии изолированного хлоропласта, энзима гидрогеназы и носителя электронов. При освещении такой системы выделяется водород. Скорость и продолжительность выделения водорода зависит от природы хлоропласта и гидрогеназы, содержания кислорода в системе, природы переносчика электронов [530]. [c.345]

Две важнейшие специфические для растений функции осуществляются фо-тосмитезнруюшимн клетками, которые содержат хлоропласты и служат для всего организма источником органических веществ-продуктов ассимиляции углерода, и всасывающими клетками, которые поглощают из окружающей среды воду и растворенные минеральные вещества. У большинства высших растений эти две функции не могут выполняться одними и теми же клетками, так как для первой из них нужен свет, а вторая осуществляется в толше почвы в темноте. Для каждого из этих процессов требуется и ряд других условий. Фотосинтез, например, должен протекать в особой микросреде, где строго регулируется относительная влажность и содержание СОг. Достигается это с помощью устьиц-особых отверстий в покрытом кутикулой эпидермисе, которые способны открываться и закрываться в зависимости от тургора замыкающих клеток (рис. 19-10). С другой стороны, для эффективного поглощения веществ из почвы нужна очень большая всасывающая поверхность, которую обеспечивают корни необходимы также мембранные транспортные [c.175]

Определение фенольных соединений в побегах ивы, выращенных на свету и в темноте, показало, что на свету содержание фенолкарбоновых кислот и флавонол-гликозидов резко возрастает, в то время как у этиолированных побегов флавонолов почти не содержится и содержание фенолкарбоновых кислот резко снижено (рис. 13). Аналогичные данные были получены Коф (1970) и для других растительных объектов (табл. 8). Образование флавоноидов у растений, как показали исследования но фотоморфогенезу, регулируется главным образом низко- и высокоэнергетическими системами фотоморфогенеза. Однако в зеленеющих побегах с функционирующими хлоропластами, по-видимому, начинают играть роль и продукты фотосинтеза, участвующие в биосинтезе фенольных соединений (Запрометов, 1964). [c.72]

Уменьшенное содержание фенольных соединений в хлоропластах осенних листьев можно объяснить затуханием их фотосинтетических функций, а отсутствие в них изосалипурпозида — его переходом в цитоплазму. Монтье (Monties, 1969) подтвердил наши данные относительно локализации фенолов в хлоропластах. Однако характер перемещений фенолов из хлоропластов в цитоплазму остается до конца неясным. [c.76]

Пластиды — внутриклеточные структуры округлой формы размером 3—10 1. Среди пластид наибольшее значение в жизнедеятельности клеток имеют хлоропласты и меньшее—хромопласты и лейкопласты. В хлоропластах содержится 65—75% воды и 25—35% сухого вещества. В сухом веществе 35—50% занимают белки, 30—35% липиды, около 10% зола, 4—5% хлорофилл, 1—2% нуклеиновые кислоты. Кроме того, в хлоропластах содержится небольшое количество углеводов, а также витамины и не.которые другие соединения. В хромопластах липиды могут составлять 55%, а в лейкопластах — 20—25% в содержании остальных веществ (кроме хлорофилла) между хлоропластами, хромопластами и лейкоиластами существенных различий не наблюдается. [c.31]

Установив наличие водорастворимых фенольных соединений в хлоропластах, мы попытались определить их относительное содержание в этих органеллах. Сделать это оказалось не так просто, поскольку большая часть хлоропластов при их выделении разрушается. Поэтому пришлось использовать косвёйный путь рассчитать выход хлоропластов по сОдёржаний [c.178]

МногЬкратная проверка показала, что пр и Принятой нами методике выход хлоропластов составляет 6- 7% от их общего количества в листьях чая и ивы. Отсюда можно было определить, что содержание водорастворимых фенольных соединений в хлоро пластах листьев чайного растения составляет 3,2—4,8% (среднее 4,0%), а в хлоропластах листьев ивы— 4,1 6,4%) (среднее 5,25 %) от общего количества полифенолов в листьях этих растений. [c.178]

Значительная доля фосфора приходится на хлоропласты ко.иичество Р2О5 в них достигает (в % от обш его содержания в листе) у озимой ржи 15,1, у салата 22. [c.240]

У всех организмов, за исключением вирусов и бактерий, клеточная ДНК сосредоточивается в основном в ядрах. Некоторое количество ДНК содер-HiHT H также в хлоропластах, митохондриях и других крупных органеллах, которые обладают по крайней мере потенциальной способностью к самовоспроизведению. В бактериальных клетках ДНК присутствует, по-видимому, в виде нескольких (от 1 до 3) агрегатов, или нуклеоидов, которые хотя и располагаются внутри клетки, но при этом связаны с мембраной,, тогда как у ДНК-содержащих вирусов она занимает центральную часть головки вириона (имеющей форму шара или многогранника). Ядра животных клеток содержат около 2 мг ДНК на 1 г свежего веса ткани. Это означает, что на ядро приходится от 4-10 до 8-10 г, или от 4 до 8 пикограммов пг) ДНК. Содержание ДНК в клетках совершенно не зависит от физиологического сося-ояния животного, но зависит от плоидности клеток, т. е. от [c.131]

Таким образом, мы убедились в несостоятельности допущения прямого фотохимического образования жиров или белков . Вернемся теперь снова к проблеме первого углевода , упомянутой на стр. 42. Эту роль приписывали то глюкозе, то сахарозе, то инозиту, то крахмалу, обычно экспериментируя с абсолютными и относительными концентрациями этих углеводов в различные часы дня и различные сезоны года. Следует иметь в виду, что концентрация растворимых сахаров в клеточном соке и содержание твердого крахмала в хлоропластах сильно варьируют во время фотосинтеза. При голодании содержание их может падать до нуля при интенсивном фотосинтезе, особенно в условиях отсутствия оттока ассимилятов, например в отрезанных листьях, может подниматься до 20—30% от сухого веса. Браун и Моррис [37] обнаружили в 5 час. утра в листьях Trqpaeolum та jus 9,7% сахаров и 1,2% крахмала и 9,6 и 4,6% — в 5 час. дня. В срезанных листьях этого же растения при освещении с 5 час. утра до 5 час. вечера концентрация сахаров возрастала до 17,2%, а крахмала—до 3,9%. [c.49]

Кислотное брожение происходит независимо от водородного. Поэтому отношение ДСОц/ДНа может варьировать в широких пределах. Ввиду одновременного проявления у Seenedesmus водородного брожения и фоторедукции естественно предположить, что водородное брожение локализуется в хлоропластах, а кислотное брожение может происходить в любых местах клетки. Нелетучие кислоты, образующиеся при самоброжении водорослей, содержат лишь незначительное количество молочной кислоты в присутствии глюкозы содержание молочной кислоты возрастает до 50°/q. У некоторых бесцветных гетеротрофов сбраживание глюкозы дает до 95°/о молочной кислоты. [c.143]

Вилер [64] сделал новую попытку отождествить гранулы хлорофилла с масляными капельками. Он считал, что восстановление азотнокислого серебра хлоропластами (реакция Молиша, глава XIV) вызывается содержанием в них гексенового альдегида однако это мнение встретило возражения со стороны Дишендорфера [65]. [c.263]

Главные составные части хлоропластов — белки и липоиды. В данном случае липоиды пони.маются в очень ягироком смысле, охватывая все соединения, растворимые в эфире или в смеси эфира со спиртом. Прежде считалось, что у растений хлоропласты являются главным вместилищем белков, так как был обнаружен статистический параллелизм между величиной хлоронластов и процентным содержанием азота в листьях. Однако Шумахер [76] оспаривал верность этого положения, а аналитические данные Менке, Нейша, Бота и Комара показали, что в то в )eмя как в хлоропластах содержится 40—50% белка, цитоплазма представляет почти чистый белок. [c.372]

Данные Граника указывают, что от 24 до 32% всех белков листьев шпината содерлштся в хлоропластах аналогичная величина (86%) получена для Phalaris tuberosa [1Ш]. Данные Менке [106] о содержании белков в клеточных стенках, протоплазме и хлоронластах приведены в табл. 47 [c.372]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология