Рибонуклеиновые кислоты щелочной

Бариевые соли адениловой, гуаниловой, уридиловой и ци-тидиловой кислот являются наиболее удобной формой для выделения, хранения и применения нуклеотидов. Последние находят все больщее применение как для препаративных целей (синтез нуклеозидов, коферментов и т. д.), так и для биохимических исследований и в медицинской практике. Нуклео-зид-2 (3")-фосфаты бария могут быть получены из рибонуклеиновой кислоты щелочным гидролизом с последующим разделением методом ионообменной хроматографии и осаждением в виде бариевых солей. [c.93]

Четыре простых пиримидиновых р ибо нуклеотида, полученных щелочным гидролизом рибонуклеиновых [458] (уридиловой и цитидиловой) кислот, являются 2 - и З -фосфатами нуклеозидов уридина и цитидина [459а]. 5 -Фос-фаты уридина и цитидина найдены в энзиматических гидролизатах рибонуклеиновых кислот [460]. Монофосфаты этих соединений синтезированыфосфорили-рованием соответствующих нуклеозидных производных [461]. 2, 5 - и 3, 5 -Дифосфаты уридина и цитидина найдены в продуктах гидролиза рибонуклеиновых кислот змеиным ядом [462а] . Были синтезированы циклические 2, З -фос-фаты уридина и цитидина, встречающиеся в гидролизатах рибонуклеиновых кислот под действием рибонуклеазы [463]. [c.257]

Белки рибосом характеризуются относительно низким молекулярным весом и обладают щелочными свойствами. При изучении нуклеиновых кислот было установлено, что в каждой рибосоме содержатся только две молекулы рибонуклеиновой кислоты с молекулярным весом 500 000—1000 000. При разделении рибосомы на две субъединицы каждая содержит только одну молекулу рибонуклеиновой кислоты, связанную с несколькими белковыми молекулами. [c.36]

В настоящее время считается, что рибосома представляет пористую сферическую частицу с высокой степенью гидратации. Эта частица состоит из двух молекул рибонуклеиновой кислоты и белковых молекул, обладающих щелочными свойствами. [c.36]

Природный образец. Хроматограмма природного образца, полученного в результате щелочного гидролиза 3 мкг гидролизата рибонуклеиновой кислоты Е. соИ В, приведен на рис. 9.2. Как видно из хроматограммы, природная смесь содержит больше компонентов, чем стандартная смесь. Это объясняется, по-видимому, тем, что в природном образце присутствуют в следовых количествах другие нуклеотиды, либо родственные соединения. [c.204]

Однако в 1949 г. Кон, применив ионообменную. хроматографию, выделил из щелочных гидролизатов дрожжевой рибонуклеиновой кислоты две изомерные адениловые кислоты [42, 43]. Затем и для других нуклеотидов было обнаружено существование подобных пар изомеров [44—46]. Для всех этих нуклеотидов менее кислый изомер (в отношении ионообменной хроматографии) назвали а -изо-мером, а другой — Ь -изомером будучи довольно устойчивыми к щелочам, эти изомеры в кислых условиях легко превращались [c.127]

В результате был предложен общий план строения рибонуклеиновой кислоты, согласно которому нуклеозидные единицы соединены повторяющимися фосфодиэфирными связями между З (или 2 )-и 5 -гидроксильными группами соседних нуклеозидов [81]. Щелочная деградация, как можно было теперь ожидать, дала бы нуклеозид-2, З -циклофосфаты в результате разрыва исключительно связи Сб — О — Р с последующим гидролизом до смеси нуклеозид-2 - и нуклеозид-З -фосфатов. При использовании мягкого щелочного [c.374]

Левый конец каждой из помещенных выше схем нуклеиновых кислот обозначим как головное звено, а нуклеозидную компоненту справа — как хвостовое звено. Из рассмотрения описанных выше механизмов очевидно, что хотя при щелочном гидролизе цепь разрывается с образованием нуклеозид-2 - и нуклеозид-З -фосфатов, в случае нуклеиновой кислоты первого типа хвостовое звено появляется в виде свободного нуклеозида, второго типа — головное звено освобождается в виде нуклеозид-2, 5 - и нуклеозид-3, 5 -дифосфатов, а хвостовое звено — в виде нуклеозида, в то время как из нуклеиновой кислоты четвертого типа головное звено освобождается в виде нуклеозид-2, 5 - и нуклеозид-3, 5 -дифосфатов, но не образуется свободного нуклеозида. Нуклеиновая кислота третьего типа дает исключительно нуклеозид-2 - и нуклеозид-3 -фосфаты. Ферментативный гидролиз диэстеразой селезенки (специфичной для эфиров нуклеозид-З -фосфатов) привел бы к тем же результатам. Однако при применении диэстеразы змеиного яда (специфичной для эфиров нуклеозид-5 -фосфатов) можно получить дополнительную информацию. Так, в случае рибонуклеиновой кислоты первого типа из головного звена получается нуклеозид, а из остальной части цепи — нуклеозид-5 -фосфаты из нуклеиновой кислоты второго типа [c.388]

Однако разделение ВТМ на РНК и белок сопровождается заметным уменьшением оптического поглощения, что указывает на то, что структуры в изолированной РНК, поддерживаемые внутренними водородными связями между основаниями, исчезают под влиянием особой упаковки белковых субъединиц в интактном вирусе, что, в частности, видно из рентгенограмм [368]. В отсутствие соли оптическое поглощение (при 260 жц) разрушенного вируса практически то же, что и у интактного вируса. Добавление солей вызывает немедленное уменьшение оптической плотности, обусловленное образованием связанной водородными связями (беспорядочными или какими-то иными) вторичной структуры у рибонуклеиновой кислоты. Нагревание этого раствора вызывает увеличение (на 25%) оптического поглощения РНК в интактном вирусе. Для сферического вируса кустистой карликовости характерна промежуточная стадия, когда при разрушении вируса на РНК и белок происходит небольшое уменьшение оптической плотности, а при нагревании оптическая плотность возрастает до значений, которые на 23% выше величины оптического поглощения интактных частиц. Более того, при щелочном гидролизе целого вируса [341] оптическая плотность возрастает на 47%, и поэтому РНК внутри вируса, по-видимому, обладает довольно упорядоченной вторичной структурой. Уровень упорядоченности структуры РНК внутри вируса повышен благодаря тому, что определенным образом упакованные [c.630]

Дезоксирибонуклеозид-5 -фосфаты и щелочные гидролизаты рибонуклеиновой кислоты из дрожжей анализировали методом двумерной хроматографии [58]. Чтобы удалить примеси из адсорбента, слои РЕ1-целлюлозы элюировали на расстояние 5 см 10 %-ным раствором хлорида натрия. Сейчас же вслед за этим помещали слои в растворитель — воду и элюировали дважды до самого верха. После сушки при комнатной температуре слои готовы для хроматографирования. Многостадийное хроматографирование предусматривает элюирование водой вплоть до начальной линии, затем 1 н. муравьиной кислотой (без промежуточной сушки) на расстояние 10 см и, наконец, элюирование 60 % -ным насыщенным раствором сульфата аммония во втором направлении на расстояние 8 см. Перед элюированием разделенных соединений со слоя адсорбента пластинку вымачивали в метаноле 15 мин, чтобы удалить избыточные соли, затем сушили и элюировали с нее разделенные соединения 60 %-ным насыщенным раствором сульфата аммония. [c.127]

Фосфаты и пирофосфаты . Эфиры моносахаридов с фосфорной и пирофосфорной кислотами имеют важное биологическое значение. Они участвуют почти во всех биохимических реакциях моносахаридов, приводящих к распаду моносахаридов, их взаимным превращениям и биосинтезу более сложных углеводсодержащих соединений. Обычно из природных источников выделяют фосфаты моносахаридов, у которых остаток фосфорной кислоты находится либо у первичного гидроксила моносахарида (например, глюкозо-6-фосфат), либо у гликозидного гидроксила (гликозилфосфаты, например а-Д-глюкозо-1-фосфат). При расщеплении некоторых природных биополимеров образуются фосфаты сахаров, содержащие остаток фосфорной кислоты у вторичного гидроксила (например, смесь производных рибозо-2- и рибозо-З-фосфатов при щелочном гидролизе рибонуклеиновой кислоты). [c.143]

Помимо описанной выше повышенной устойчивости межнуклеотидных связей в олигонуклеотидах к гидролизу (по сравнению со связями в рибонуклеиновой кислоте), имеются дагшые о существовании компонентов, которые можно назвать щелочеустойчивыми. Ввиду трудностей, связанных с получением однородных препаратов рибонуклеиновой кислоты, очень сложным является установление факта наличия ковалентных связей между кo. шoнeнтaми такого рода с исходной рибонуклеиновой кислотой. Щелочные гидролизаты фракций РНК из икринок лягушки содержат, как сообщают, 10—20"о устойчивого к гидролизу фрагмента [199]. Частично этот фрагмент может состоять из нуклеозиддифосфатов, особенно если учесть олигонуклеотидную природу препарата РНК . [c.401]

Применение методов хроматографии на бумаге для быстрого анализа пуриновых и пиримидиновых оснований [76, 77] в гидролизатах небольших количеств рибонуклеиновых кислот вскоре показало, что молярная эквивалентность этих оснований скорее была исключением, чем общим правилом. Еще более важным было наблюдение, что разделение смеси нуклеотидов в щелочном гидролизате рибонуклеиновой кислоты при помощи ионообменной хроматографии дает изомерные пары нуклеотидов, являющихся, как позже было показано, нуклеозид-2 - и пуклеозид-З -фосфатами [78]. Хотя эти изомеры не подвергались взаимопревращению в щелочи, кислота легко катализировала миграцию фосфатного остатка между 2 - и З -гидроксильными группами. Таким же методом были обнаружены 5 -фосфаты аденозина, цитидина, гуанозина и уридина (среди прочих продуктов) после гидролиза кишечной фосфодиэстеразой рибонуклеиновых кислот, предварительно обработанных рибонуклеазой [79]. Со значительно более высокими выходами нуклео-зид-5 -фосфаты получены при действии диэстеразы змеиного яда на рибонуклеиновые кислоты из дрожжей и печени теленка гидролизаты содержали также свободные нуклеозиды и нуклеозид-2 (3 ),5 -ди-фосфаты [80]. [c.373]

При проведении щелочного гидролиза в осадок выпадают различные примеси ненуклеотидного характера. Количество осадка зависит от чистоты исходного образца рибонуклеиновой кислоты н не оказывает существенного влияния па дальнейшее разделение. [c.99]

Хотя на данном этапе методы химического гидролиза не позволяют сделать выбора между 3 —5 - и 2 —5 -межнуклеотидными связями, доказательства, по-видимому, исключительного присутствия 3 —5 -структуры были получены на основании исследований ферментативного гидролиза рибонуклеиновых кислот и простых нуклеотидных производных. Из различных источников был выделен ряд нуклеаз, которые катализируют гидролиз нуклеиновых кислот на более мелкие фрагменты. Панкреатическая рибонуклеаза [93] — один из группы ферментов, обнаруживающих высокую специфичность к рибонуклеиновым кислотам,— была тщательно изучена и дано объяснение механизма ее действия. Ранние исследования показали, что фермент действует по пиримидиннуклеозидным звеньям, так как крупные педиализуемые остатки после ферментативного расщепления рибонуклеиновой кислоты значительно обогащены пуринами [94] кроме того, выделяются пиримидиновые мононуклеотиды, но не обнаружено свободных пуриновых мононуклеотидов [75, 95, 96]. Дальнейшие исследования кислотного или щелочного гидролиза продуктов, полученных в результате последовательной обработки рибонуклеиновой кислоты рибонуклеазой и фосфомоноэстеразой предстательной железы, привели к заключению, что специфичность рибонуклеазы такова, что нуклеиновые кислоты расщепляются ею с образованием смеси пиримидиновых мононуклеотидов и пуриновых олигонуклеотидов, содержащих в качестве концевой единицы пиримидиновый нуклео-зид-2 (или 3 )-фосфат [75, 97]. [c.377]

Все перечисленные изомеры мононуклеотидов хорошо известны. Смесь 2 - и З -фосфатов образуется при гидролизе рибонуклеиновых кислот наилучшим с препаративной точки зрения является щелочной гидролиз. Как будет подробно рассмотрено ниже, образование смеси 2 - и З -фос-фатов является следствием механизма гидролиза нуклеиновых кислот, и поэтому принципиально невозможно направить этот процесс таким образом, чтобы получить только 2 - или только З -замещенные изомеры. Эти изомеры с чрезвычайной легкостью переходят один в другой, и их разделение стало возможным лишь в последнее время в связи с развитием техники ионообменной хроматографии. [c.215]

Название нуклеозид, введенное Левиным и Джекобсом в 1909 г., сначала относилось к углеводным производным пуринов, выделенным из щелочных гидролизатов дрожжево рибонуклеиновой кислоты [ 1 ]. [c.12]

Первый нуклеотид, инозиновая кислота (по-гречески — мышечная ткань), был выделен Либихом [2] в 1847 г. из мясного экстракта отчасти как результат полелп1ки, поднятой Берцелиусом по поводу наличия креатина в сыром и вареном мясе). С тех пор было выделено большое число мононуклеотидов, как правило, 5 -фосфаты, хотя в яде тигровых змей и родственных видов был найден также аденозин-З -фосфат 13]. Эти соединения выделяют прямой экстракцией тканей или организмов 14—9], в которых они обычно присутствуют в небольших количествах в качестве промежуточных соеди-нени1 обмена. Однако основным источником мононуклеотидов являются их полимерные производные, нуклеиновые кислоты. При щелочном гидролизе в мягких условиях [10, 11] рибонуклеиновой кислоты образуется смесь 2 - и З -фосфатов нуклеозидов, которую можно легко разделить с помощью ионообменной хроматографии 112], Для выделения аналогичных 5 -эфиров требуется применение ферментативного гидролиза, как правило, с использованием фосфо-диэстеразы змеиного яда 113, 14]. Подобная ферментативная обработка дезоксирибонуклеиновой кислоты после предварительной обработки дезоксирибонуклеазой приводит к дезоксинуклеозид-5 -фосфатаы [15—17]. Очищенная диэстераза змеиного яда значи- [c.123]

В течение многих лет считалось, что при щелочном гидролизе рибонуклеиновых кислот в мягких условиях образуется смесь только З -фосфатов аденозина, цитидина, гуанозина и уридина. Это ошибочное представление существовало главным образом из-за несовершенства методов классической органической химии применительно к идентификации и характеристике нуклеотидов. Многое в ранних работах Левина и его сотрудников, касающихся определения положения фосфорного остатка, противоречиво, вероятно, вследствие того, что нуклеотиды, с которыми они работали, представляли собой смеси 2 - и 3 -изомеров. Кроме того, они выделяли оптически неактивный рибнтфосфат в результате восстановления рибозофосфата, полученного из гуаниловой кислоты (через продукт дезаминирования — ксантиловую кислоту). Однако при использовании условий, в которых проходит миграция фосфорного остатка, такое выделение не имеет никакого смысла. Тем не менее уже это исследование показало, что именно 2 - или З -гидроксильная группа сахара в таких нуклеозидах этерифицирована фосфатом. Так, дезаминирование адениловой кислоты приводило к инозиновой кислоте, дающей при гидролизе гипоксантин и рибозофосфат, который не был рибозо-5-фосфатом [40]. Фосфорилирование 5 -0-три-тилуридина приводит к уридиловой кислоте, которая оказалась [c.126]

Часть промежуточных продуктов, образующихся при действии рибонуклеазы на рибонуклеиновые кислоты, составляют пиримидиновые нуклеозид-2, 3 -циклофосфаты, которые при дальнейшей обработке рибонуклеазой дают исключительно З -фосфаты [68, 69]. При гидролизе рибонуклеиновой кислоты под действием карбоната бария [68] или лучше трет-бугклата калия [70] были выделены пуриновые и пиримидиновые нуклеозид-2, 3 -циклофосфаты. Они образуются также при нагревании раствора нуклеиновой кислоты в формамиде с аммиаком [7П- На основании данных титрования этих веществ, их поведения при хроматографировании на бумаге и электрофорезе, кислотного и щелочного гидролиза их до 2 - и З -фосфатов, а также из сравнения их с синтетическими образцами этим соединениям было приписано строение 2, 3 -циклофосфатов [52, 53]. [c.133]

В то время было известно, что рибонуклеиновые кислоты могут быть гидролизованы щелочью до мононуклеотидов, которые, как тогда считали, были исключительно нуклеозид-3 -фосфатами. Общий план строения нуклеиновых кислот с 2 —З -фосфодиэфирными связями был предложен Левиным и Типсоном [71], причем было сделано допущение, что 2 -связь гораздо менее устойчива, чем З -фос-фоэфирная связь, и обусловливает таким образом образование при щелочном гидролизе исключительно нуклеозид-З -фосфатов. Однако, когда рибонуклеиновую кислоту обработали змеиным ядом (который содержит фосфомоноэстеразу, специфичную для нуклеозид-З -фосфатов), то получили неорганический фосфат и нуклеозиды [72, 73]. Далее, изучение рибонуклеиновой кислоты методом дифракции рентгеновских лучей, проведенное Астбери, позволило предположить, что основной межнуклеотидной связью является скорее 2 —5 или 3 —5, чем 2 —3 [74]. С другой стороны, прямого химического доказательства наличия 5 -фосфатной связи не существовало, и отсутствие 5 -фосфорилированных производных в кислых гидролизатах рибонуклеиновой кислоты, несмотря на их известную стабильность, действительно находилось в явном противоречии с предположением о 2 (или 3 ) — 5 -межнуклеотидной связи. Устойчивость дезоксирибонуклеиновой кислоты (неизбежно 3 —5 -связанной) по отношению к щелочи в противоположность неустойчивости рибонуклеиновой кислоты также указывало, как считали в то время, на различие в типах связи. В противоположность этому при действии панкреатической рибонуклеазы на рибонуклеиновую кислоту получается смесь олигонуклеотидов, устойчивых к перио- [c.372]

И З -фосфатов пуриновых нуклеозидов и З -фосфатов только пиримидиновых нуклеозидов. (Миграции моноэтерифицированного фосфата в щелочных условиях не происходит.) Специфическое действие рибонуклеазы, катализирующей образование пиримидиновых нуклеотидов из участков нуклеиновой кислоты с двумя или более соседними пиримидиновыми остатками и олигонуклеотидов из участков, где пуриновые нуклеотиды ограничены пиримидиновыми нуклеотидами, было показано в результате изучения ферментативного гидролиза простых эфиров мононуклеотидов. В то время как алкиловые (бензиловые, метиловые и этиловые) эфиры пиримидиновых нуклеозид-З -фосфатов легко превращаются в свободные З -нуклеотиды через нуклеозид-2, З -циклофосфаты, аналогичные эфиры пиримидиновых нуклеозид-2 -фосфатов (или пуриновых нуклеозид-2 - или нуклеозид-З -фосфатов) совершенно не затрагиваются. Следовательно, в рибонуклеиновой кислоте все остатки пиримидиновых нуклеотидов соединены скорее через З -фосфатную, чем через 2 -фосфатную группу [87]. Наконец, применение нуклеазы селезенки, которая расщепляет рибонуклеиновую кислоту как на пуриновые, так и на пиримидиновые нуклеотиды, этерифицированные по З -гидроксильной группе без промежуточного образования нуклеозид-2, З -цикло- [c.378]

С установлением для дезоксинуклеотидов, полученных из дезоксинуклеиновой кислоты под действием кишечной диэстеразы, структуры 5 -фосфатов [348] становится ясным, что основной межнуклеотидной связью является 3 —5 -фосфодиэфирная группировка. На основании этого Браун и Тодд предложили для дезоксинуклеиновых кислот ту же структуру, что и для рибонуклеиновых кислот, одновременно объяснив различия в устойчивости этих двух типов полимеров по отношению к кислоте и щелочи [81]. Как упоминалось выше, дезоксинуклеиновая кислота проявляет нормальную устойчивость к щелочному гидролизу, характерную для диал-килфосфатов, в то время как рибонуклеиновая кислота в этих же условиях легко расщепляется благодаря присутствию смежных ц с-гидроксильных групп. [c.421]

После гидрогенолиза бензильной группы и обработки щелочью в очень мягких условиях образовалась смесь продуктов, из которой аденилил-2 5 -уридин (аденозин-2 -уридпп-5 -фосфат) выделяли с помощью ионообменной хроматографии. В противоположность щелочеустойчивому ди(нуклеозид-5 )-фосфату, который был описан выше, этот диэфир обнаружил многие свойства, характерные для рибонуклеиновых кислот. При щелочном гидролизе этого динуклеозидфосфата образуются уридин и смесь аденозин-2 -и аденозин-З -фосфатов ферментативный гидролиз диэстеразой змеиного яда приводит к аденозину и уридип-5 -фосфату а при окислении перйодатом с последующим выдерживанием при pH 10 получаются урацил и аденозин-2 -фосфат [8. [c.477]

За исключением влияния молекулярного веса иа вязкость, седиментацию и связанные с ними физические свойства [347—349[, транспортные рибонуклеиновые кислоты по своему поведению сходны с микросомальиыми нуклеиновыми кислотами (рис. 8-34), хотя их нуклеотидный состав совершенно различен. Изменения коэффициента экстинкции и оптического врашения с изменением температуры вновь указывают на суш,ествование структуры, связанной водородными связями [344, 349, 352], и это подтверждается низкой скоростью реакции с формальдегидом [349[. То, что их структура несколько более стабильна и более упорядочена, чем у микросомальных РНК, видно из того факта, что они имеют более высокую температуру плавления и характеризуются более резким подъемом температурной кривой (т. пл. примерно 60 в 0,1 М растворе хлористого натрия, причем возрастание оптической плотности начинается с 40 ). Повышение или понижение ионной силы увеличивает или уменьшает температуру плавления, а мочевина в высокой концентрации заметно влияет на оптическое поглощение даже при комнатной температуре, что обусловлено понижением температуры плавления [349[. Увеличение оптического поглощения в бессолевом растворе фактически достигает того же значения, что и при максимальной температуре (24%). Эти изменения вновь полностью обратимы, и действительно, при нагревании до 70° при pH 6,8 ((X = 0,2) РНК не теряет своей биологической активности [344]. Хотя остаточным гипохромизмом зачастую можно пренебречь, особенно в случае ДНК, можно заметить, что в случае растворимой РНК из печени крысы [351 [ структурный (после нагревания или прибавления 6 М мочевины) гиперхромизм составляет приблизительно 21%, а гиперхромизм при щелочном гидролизе равен 49%. Это показывает, что и в отсутствие вторичной структуры с ее водородными связями значительная часть оснований остается в таком состоянии, что их плоскости параллельны. (Ср. с соответствующими данными для рибосомальной РНК из Е. oli.) [c.622]

Рандерат [42, 43] показал эффективность применения этого ионообменного вещества для разделения нуклеотидов. Довольно хорошее разделение на нем получено с 0,02 н. соляной кислотой. Аденозиндифосфат (ADP) нельзя отделить от 5 -уридинмоно-фосфата (UMP), а цитидиндифосфат ( DP) в какой-то степени перекрывает зоны этих двух соединеиий. Чтобы разделить эти соединения, которые остаются вблизи стартовой линии, можно провести элюирование 0,03 н. соляной кислотой. Этот элюат позволяет добиться лучшего разрешения СТР, UDP, АТР, GTP и иТР, хотя пятна в какой-то степени перекрываются. Хорошее разделение трифосфатов получают при повышении концентрации элюирующего растворителя до 0,04 н. и удлинении пути хроматографирования от примерно 9 до 12,8 см. Дайер [44] использовал двустадийное элюирование для разделения гуаниловой, ури-диловой, адениловой и цитидиловой кислот — продуктов щелочного гидролиза рибонуклеиновой кислоты. Перечисленные соединения были получены в результате 18-часового, гидролиза РНК дрожжей илн проростков ржи 0,3 н. раствором гидроксида калия при 37°С. Гидролизат освобождали затем от калия, пропуская через катионообменную смолу или осаждая калиевую соль хлорной кислотой. Первое элюирование проводили смесью [c.122]

Аналогично объясняют лабильность к щелочному гидролиз) рибонуклеиновых кислот в противоположность устойчивости, проявляемой по отношению к такому гидролизу дезоксирибонуклеиновыми кислотами , В случае рибонуклеиновых кислот присутствие цис-гидроксильных групп у атомов углерода, соседних с межнуклеотид- ыми связями, благоприятствует быстрому гидролизу, протекающему через промежуточное образование циклических рибонуклеозид- сфатов до нуклеозид-2 - и нуклеозид-З -фосфатов - [c.686]

Другой важной группой природных соединений, представляющн.ч собой, так же как и рибонуклеиновые кислоты, диэфиры ортофосфорной кислоты, в молекулах которых имеются гидроксильные группы, расположенные так, что возможно образование пятичленных фосфатных циклов, явля[отся эфиры фосфорной кислоты и глицерина кефалины (коламинфосфатгщы), лецитины, инозитфосфатиды и другие, более сложные фосфатиды. Установлено - , что эти диэфиры ортофосфорной кислоты подвержены щелочному гидролизу (как и кислотному) в противоположность диэфирам типа диметилфосфата, которые особенно устойчивы к действию щелочей. Остаток К в [c.686]

Смотреть страницы где упоминается термин Рибонуклеиновые кислоты щелочной: [c.85] [c.1047] [c.702] [c.48] [c.166] [c.22] [c.176] [c.233] [c.317] [c.318] [c.378] [c.390] [c.393] [c.400] [c.401] [c.402] [c.409] [c.435] [c.438] [c.520] [c.1047] [c.674]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология