Ферментативные фосфолипидов

Определение содержания яиц в пищевых продуктах с помощью ферментативного гидролиза фосфолипидов [791]. [c.372]

Азот в питании человека. Азот составляет около 3% живой массы и около 10% сухой массы организма человека. На долю белков приходится большая часть азота, на долю нуклеиновых кислот и липидов — меньшая. Почти 100% азотсодержащих веществ в системе пищеварения человека претерпевают ферментативный гидролиз и распадаются на 20 аминокислот. Из них затем заново строятся все нужные человеческому организму белки, нуклеиновые кислоты, фосфолипиды. [c.420]

Липиды составляют вместе с белками и углеводами основную массу органического вещества живой клетки. Они присутствуют в организмах различного происхождения растительных, животных, бактериальных. В высокой концентрации липиды (особенно фосфолипиды) обнаружены в различных органах животных и человека головном и спинном мозге, крови, печени, сердце, почках и т. д., особенно велико содержание липидов в нервной системе (20—25%). Липиды входят в состав всех структурных элементов клетки, в первую очередь клеточных мембран, и мембран субклеточных частиц липиды (в виде липопротеидов) составляют не менее 30% общей сухой массы мембраны. С участием липидов протекают такие важнейщие биохимические процессы, как передача нервного импульса, активный перенос через мембраны, транспорт жиров в плазме крови, синтез белка и другие ферментативные процессы, особенно процессы, связанные с цепью переноса электронов и окислительным фосфорилированием. [c.185]

Для изучения структуры фосфолипидов используют комплекс химических, ферментативных и физико-химических исследований. [c.270]

Ферментативные методы. Для изучения структуры фосфолипидов широкое распространение получили ферментативные методы, с помощью которых осуществляется специфическое расщепление сложноэфирных связей фосфолипидов [119, 120]. [c.271]

Используя совокупность указанных ферментативных превращений, можно провести структурный анализ фосфолипидов. Так, с помощью фосфолипаз Ai и Аг в сочетании с различными хроматографическими методами можно определить состав и положение жирных кислот в фосфолипидах. Именно ферментативные методы позволили выявить определенные закономерности в расположении жирных кислот в фосфолипидах ненасыщенные жирнокислотные остатки обычно этерифицируют гидроксил при Сг- [c.272]

В настоящее время ферментативные методы являются наиболее перспективными и надежными в структурном анализе фосфолипидов. [c.272]

Многие ферментные комплексы цепи транспорта электронов в митохондриях могут быть выделены в виде дискретных липопротеидов, в состав которых включаются фосфолипиды [323]. Удаление фосфолипидов из этих липопротеидов сопровождается потерей ферментативной активности. Добавление очищенных фосфолипидов и убихинона восстанавливает активность. Степень реактивации в каждом случае пропорциональна количеству фосфолипидов, связанных в митохондрии. [c.381]

Ферментативную инактивацию антибиотика и связывание его фосфолипидами в момент прорастания спор следует рассматривать как приспособление, снимающее ингибирующее действие грамицидина С на процесс прорастания спор. [c.112]

Дальнейший анализ липидов проводят методами гидролиза и количественного определения компонентов сложных смесей фосфолипидов, В результате избирательного гидролиза липидов мембран образуются продукты, которые можно разделить по полярности или по остающимся неполярным группам. Описаны различные способы щелочного или кислотного гидролиза мембранных липидов. При использовании ферментативного гидролиза [c.227]

Изолированные индивидуальные мембранные белки можно реконструировать в липосомы с разным соотношением фосфолипид белок и исследовать ферментативные свойства и физико-химические параметры бислоя в зависимости от того, какое количество молекул липида приходится на 1 молекулу белка. При этом проявляются различия в поведении липидов, не связанных с белком, и липидов, непосредственно примыкающих к белковой глобуле. [c.41]

В микросомной системе окисления проходит метаболизм стероидных гормонов, липидов (в том числе ферментативное перекис-ное окисление полиненасыщенных ацильных цепей мембранных фосфолипидов), а также различных гидрофобных ядов, лекарств, канцерогенных веществ. [c.133]

Термин липид в определенной мере условен, поскольку под липидами понимают жироподобные вещества, входящие в состав всех живых клеток. Иногда к липидам относят различные по строению органические соединения, присутствующие в живых тканях, не растворимые в воде и извлекаемые из тканей неполярными органическими растворителями (диэтиловый эфир, бензол, хлороформ). Однако при таком подходе в состав липидов наряду с жирами попадают самые разные по своей природе соединения терпены и терпеноиды, смоляные кислоты, каротиноиды, хлорофиллы, витамины и др. Поэтому часто при отнесении соединений к липидам учитывают и химическое строение. В соответствии с химическим строением вьщеляют три группы собственно липидов жирные кислоты и продукты их ферментативного окисления (простагландины и другие гидроксикислоты) глицеролипиды (содержат в молекуле остаток глицерина) липиды разного состава, не содержащие остатка глицерина и не относящиеся к липидам первой группы (некоторые фосфолипиды и гликолипиды, диольные липиды, стерины и воски). Существуют и другие системы классификации липидов. Липиды создают в растительной ткани энергетический резерв, образуют защитные покровные ткани, служат запасными питательными веществами, входят в состав клеточных мембран. [c.534]

Двумя мембранами ограничены от цитоплазмы митохондрии. Внутренняя митохондриальная мембрана образует складки - кристы, которые увеличивают ее активную поверхность. Здесь на долю фосфолипидов приходится почти 30% от суммы липидов. Вся ферментативная активность принадлежит именно внутренней мембране, там находятся все ферменты. Наружная мембрана митохондрий более прочная, она не содержит ферментов дыхания и фосфорилиро-вания, но другие ферменты в ней есть. [c.43]

С помощью комбинированного метода ГХ — МС анализировали и диглицеридные производные фосфолипидов [111]. Для этого вначале производили расщепление фосфолипидов по реакции ферментативного гидролиза без перегруппировки углеродного скелета. Получающиеся 1,2-диглицериды превращали затем в триметилсилильные производные, которые в нормальных температурных условиях системы ГХ — МС перегруппировываются в 1,3-диглицериды. Предварительные результаты [111] этого анализа также демонстрируют целесообразность использования систем ГХ—МС в биохимии. [c.235]

Слейки и Ленде [63], используя ферментативную реакцию с участием липазы поджелудочной железы и комбинируя тонкослойную хроматографию на обычном силикагеле и на силикагеле, пропитанном раствором нитрата серебра, с газохроматографическим определением метиловых эфиров, установили состав жирнокислотных остатков в положениях 1,2 и 3 при разделении триглицеридов печени крысы. Они нашли, что распределение остатков кислот в положениях 1 и 3 не беспорядочное. Применяя стереоспецифический анализ триглицеридов, Брокер-хофф [64] частично разрушал триглицерид метилмагнийброми-дом до образования 1,3-диглицерида, который удалось выделить хроматографированием на слоях силикагеля, пропитанных 3 %-ным раствором борной кислоты. Последующее превращение в фосфолипид и обработка фосфолипазой А позволили определить кислотные группы, находящиеся в положениях I и 3. [c.64]

Алке№1<ильные фосфолипиды, биосинтез — ферментативный процесс образования плазмалогенных рм фосфолипидов-глицеридов, содержащих холин и этанола-мин. Алкениловый эфир глицерина — общий предшественник синтеза для фосфа-тидальхолина и фосфатидальэтаноламина. [c.222]

Фосфолипиды-глицериды, биосинтез — ферментативный процесс их образования. Основным предшественником биосинтеза является фосфатидиая кислота. Процессы биосинтеза отдельных фосфолипидов имеют ряд общих черт, основной из них — участие аитидиновых нуклеотидов в качестве коферментов. В результате взаимодей- [c.257]

Газо-жидкостная хроматография природных фосфолипидов осложнена их распадом в процессе хроматографии. Для структурного анализа фосфолипидов, как правило, проводят их ферментативный гидролиз до соответствующих диглицерндов, которые затем подвергают ГЖХ в виде ацетатов или силильных эфиров. [c.190]

Катаболизм липидов с простой эфирной связью в организме изучен в меньшей степени, чем для липидов со сложной эфирной связью [173]. Расщепление нейтральных липидов с простой эфирной связью (алкилдиацилглицерины и нейтральные плазмалогены) происходит под действием панкреатических липаз, которые активны к первичной сложноэфирной группировке, но не атакуют 0-алкильные и О-алкен-1-ильноэфирные связи. Замена жирнокислотного остатка в фосфолипидах на алкильную и алкенильноэфирные группы не изменяет специфичности действия фосфолипаз Аг, С, О (стр. 271), но существенно сказывается на скорости ферментативного гидролиза [290]. [c.364]

Глицерофосфолипиды и сфингомиелины удобнее всего анализировать после удаления полярных головок ферментативными или химическими методами. Например, фосфорилхолино-вая часть холинсодержащих фосфолипидов может быть легко [c.197]

В липопротеинах связь между липидами и белком осуществляется за счет взаимодействий различной природы адсорбционных (белок адсорбируется на поверхности липида, повышая растворимость и термическую устойчивость последнего) гидрофобных (между неполярными фрагментами молекул липида и белка) ион-дипольных (когда липид представлен фосфолипидом, способным к ионизации). Чаще всего в липопротеинах действуют комбинированные силы, способствующие образованию в высшей степени упорядоченных структур. В живых организмах липопротеины выполняют транспортную (перенос белком липопростетической группы), ферментативную, гормональную функции. [c.89]

Биохимические функции. Витамин К регулирует процессы свертывания крови участвует в синтезе протромбина (белковый фактор свертывания крови) из его предшественника. Витамин К выполняет кофермент-ную функцию в реакции (3-карбоксилирования остатков глутаминовой кислоты, содержащихся в молекуле протромбина, после чего протромбин через ионы Са " связывается с фосфолипидами и подвергается ферментативному расщеплению с образованием тромбина. Тромбин автоматически запускает систему свертывания крови с образованием фибринового сгустка. [c.139]

Одновременно с ферментативной инактивацией грамицидина С в прорастающих спорах В. ba illus происходит связывание антибиотика фосфолипидами. Взаимодействие антибиотика с фракцией фосфолипидов, вьщеленных из клеток 24-часовой культуры, показано в табл. 24. [c.111]

На основании экспериментальных данных, полученных в лаборатории Д. Грина [57] с использованием препаратов цито-хромоксидазы, содержащей фосфолипиды, и цитохрома с, сделан вывод о прямом сопряжении процесса переноса электронов с переносом катионов (К , Са +) и выталкиванием протонов в среду. Таким образом, оспаривается сама возможность непрямого сопряжения через мембранный потенциал. Автор полагает, что принцип непрямого сопряжения несовместим с ферментативной природой энергосопрягающих комплексов. [c.41]

Противоречивые данные получены также при исследовании избирательности связывания белков с различными фосфолипидами. Так, селективность взаимодействия фосфолипидов, несущих определенные полярные группы, была выявлена для родопсина, На+, К -АТФазы из 8диа1из a antus, цитохром-с-оксидазы, Са +-АТФазы. Вместе с тем многочисленные эксперименты по реактивации выделенных мембранных ферментов путем добавления экзогенных липидов и детергентов показали, что в большинстве случаев не существует специфических белок-липидных взаимодействий, обеспечивающих ферментативную активность разные типы липидов могут одинаково влиять на функционирование мембраносвязанных белков. Несмотря на то, что взаимодействие липидов с интегральными белками носит в основном гидрофобный характер, электростатические силы связывания заряженной гидрофильной части белковой молекулы и полярных групп окружающих липидов могут существенно влиять на характер липидного микроокружения белка. Кроме того, для активирующего действия липидов по отношению к некоторым мембранным ферментам важны такие факторы, как степень подвижности ацильных цепей и способность липидов образовывать мицеллы. По-видимому, сродство разных липидных молекул к белкам мембраны определяется не спецификой белков, а спецификой липидных молекул. [c.60]

По современным представлениям, Ма , К -АТФаза является типичным липидзависимым ферментом для формирования его функционально-активной конформации необходимы кислые липиды. Показано, что мембранные гликолипиды, локализованные преимущественно в наружной половине бислоя, обеспечивают правильную ориентацию Ма , К -АТФазного комплекса относительно плоскости мембраны (т.е. они отвечают за проявление векторных свойств фермента). Вместе с тем остается неясным, какова специфическая роль мембранных фосфолипидов в обеспечении транспортной функции Ма, К -АТФазы. По-видимому, функционирование центров связывания нуклеотидов и катионов на молекуле фермента не зависит от липидов, тогда как для осуществления конформационных перестроек в ферментном белке важна его связь с мембранными липидами. Кривые, описывающие зависимость ферментативной активности от концентрации липида, имеют сигмоидную форму, что свидетельствует о кооперативном характере связывания липидов с белком. Однако абсолютная потребность фермента в тех или иных фосфолипидах (или их полярных головках) экспериментально не доказана. Так, опыты по ферментативному превращению одних фосфолипидов в другие (например, фосфатидилсерина в фосфатидилэтаноламин) в препаратах мембраносвязанной Ка" , К+-АТФазы показали, что фермент может функционировать без отрицательно заряженных фосфолипидов, но с уменьшением молекулярной активности. [c.92]

I. J. Бе PoIlt е% а1. (1978) показали, что гидролиз различных фосфолипидов, содержащихся в высокоочищенном препарате Ма+, К -АТФазы из ткапи почек крокодила с помощью фосфолипазы С, существенно не влияет на активность фермента. С другой стороны, удаление 60 % фосфолипидов из такого же препарата белка с помощью фосфолипазы А приводило к потере 70 % АТФазной активности, в то время как число уабаин-связываю-щих центров оставалось неизменным. Такой разброс данных о липидной потребности Ма , К -АТФазы объясняется тем, что снижение ферментативной активности обусловлено не только уменьшением содержания фосфолипидов, но и ингибирующим действием жирных кислот, образующихся при гидролизе фосфолипидов фосфолипазами. [c.93]

Фосфолипазы — обширный класс липолитических ферментов, имеющих первостепенное значение для регулирования разнообразных процессов жизнедеятельности всех живых организмов. Это связано с многообразием их функций. Во-первых, они участвуют в обновлении мембранных фосфолипидов, что определяет стабильность и биохимическую активность мембран и в 1со-нечном итоге функциональное состояние целой клетки. Во-вторых, продукты фосфолипазной реакции (жирные кислоты, лизо-фосфатидилхолин, холин, диглицерид, фосфорилхолин и др.) являются мощными эффекторами мембранных процессов. В-третьих, фосфолипазам принадлежит ключевая роль в биосинтезе простагландинов, лейкотриенов и других продуктов превращения арахидоновой кислоты. Так, реакцию гидролиза фосфолипидов, приводящую к образованию свободной арахидоновой кислоты, катализирует фосфолипаза А , Эта реакция является лимитирующей стадией в каскаде ферментативных реакций биосинтеза физиологически активных эйкозаноидов. [c.157]

Фосфолипиды в нативных мембранных системах эффективно защищены от неферментативного перекисного окисления наличием в биомембранах антиоксидантов, структурной организацией мембран, а также специальными ферментативными системами, регулирующими концентрации в мембране активных форм кислорода, ингибирующими развитие липопереокисления (подробнее об этих системах смотрите в следующем разделе). [c.187]

Тем не менее липиды абсолютно необходимы для проявления ферментативной активности Са-АТФазы, Обработка мембран саркоплазматического ретикулума фосфолипазами и последующее удаление продуктов расщепления фосфолипидов приводят к подавлению АТФазы при внесении экзогенных липидов активность фермента восстанавливается (А. Martonosi el al,, 1968). [c.55]

Мембраны ЗЦС и НЦС близки по строению л химическому составу. Некоторые функции являются общими для обоих типов мембран известно, что ряд ферментов имеется как в ЗЦС, так и в НЦС. Через полости ЦС транспортируются секретируемые клеткой белки. Каждый тип-мембран имеет и свои индивидуальные функции синтез и ферментативная модификация синтезируемых белков происходит на ЗЦС, синтез фосфолипидов и наличие детоксифицирующих ферментов характерны для НЦС. [c.329]

Самосборка в биологических системах проявляется в бислойном расположении фосфолипидов в мембранах, комплементарной последовательности азотистых оснований в нуклеиновых кислотах, во взаимодействии фермента и субстрата, белка-рецептора и эффектора (например, фитогормона), в сборке многокомпонентных ферментативных комплексов и т. д. Например, рибулозодифосфаткарбоксилаза в хлоропластах собирается из восьми больших и восьми малых субъединиц. [c.319]