Стерины экстракция

Технология производства заключается в омылении жира спиртовой щелочью, двойной экстракции витамина А из мыльного клея хлористым метиленом, охлаждении и фильтрации с целью выделения мыла, промывке экстракта водой, отгонке растворителя, выделении стеринов и стабилизации концентрата антиоксидантами (подробно см. [8]). [c.414]

Как радиоактивный реагент (радиореагент) для определения первичных и вторичных гидроксильных групп уксусный ангидрид имеет много преимуществ. В пиридине реакция ангидрида (в избытке) с этими группами протекает быстро и часто количественно при комнатной температуре при повып1енных темперагурах мож-1Ю обеспечить по существу полную этерификацию. Избыток ангидрида можно удалить путем гидролиза и последующей экстракции водным раствором щелочи или с помощью хроматографического разделения. Полученное соединение можно метить как изотопом так и тритием, что особенно ценно при использова[ши метода с двумя изотопами. При этом для реагентов, меченных тритием и изотопом можно получить удельные активности более 2 Ки/мМ (кюри на миллимоль) и до ОД Ки/мМ соответсгвеино, что обеспечивает высокую чувствительность метода. Помимо этого с помощью перегонки полученное соединение можно легко отделить от нелетучих примесей. Меченый уксусный ангидрид является ценным реагентом для определения стероидов и стеринов в микро- и макроколичествах, а гакже макроколичеств многих других соединений с гидроксильны ш группами. [c.71]

Дегидрохолестерин выделяют путем экстракции жира и стеринов органическими растворителями с последующим омылением жира щелочью, а стеринов — экстракцией спиртом или ацетоном из реакционной смеси с последующей кристаллизацией. [c.131]

Кукурузное (маисовое) масло получается экстракцией или прессованием из зародышей кукурузного зерна. Цвет — светло-желтый, вкус — очень приятный содержание неомыляемых (наполовину состоящих из стеринов) 1,3—2,5%. Состав глицеридов жирных кислот (в %) [c.14]

Полученный после экстракции стеринов белково-дрожжевой шрот после освобождения от спирта должен быть использован для пищевых или кормовых целей, а также для получения нуклеиновых кислот. На рис. 100 изображена технологическая схема по комплексной переработке дрожжей в объеме проверенных методов [1]. [c.424]

Для анализа сложных смесей используют также другие методы, иногда более эффективные, чем описанный выше метод противоточного распределения Крэга, Применяют, в частности, метод экстракции по схеме, подобной приведенной на рис. 205, но с однократным вводом испытуемой смеси в начале процесса (метод поочередного вывода фаз из процесса). Метод двойного вывода фаз проводят по аналогичной схеме, но при этом справа и слева от трубки, в которую вводится исходный раствор, располагается одинаковое количество трубок. Можно также использовать преимущества, связанные с применением флегмы. Разработан аппарат для распределения веществ между тремя жидкими фазами Все эти методы дают возможность разделять очень сложные природные и синтетические смеси. Такими методами удается выделить различные гормоны, антибиотики, стерины и алкалоиды, т. е. такие соединения, для выделения которых трудно применить какие-либо другие способы. [c.431]

Такой способ фракционирования можно сочетать с выделением пробы. Например, при исследовании липидных фракций одноклеточных организмов первой стадией является деструкция клетки, обычно выполняемая под давлением или с помощью ультразвука. В любом случае разрушаемые клетки помещают в метанольный или водный раствор. Раствор сильно подщелачивают (10%-ный раствор гидроксида натрия) и оставляют на ночь. На этой стадии большинство эфирных связей (триглицериды) гидролизуются, а свободные кислоты, конечно, полностью нейтрализуются сильным основанием. Экстракция таким неполярным растворителем, как -гептан, приводит к удалению только так называемых не омыляемых липидов (стеринов), не затрагивая заметную часть основы клеточного вещества. Большие массы остатков органического вещества клетки могут создавать затруднения при экстракции, особенно после гидролиза. Поэтому перед экстракцией удобно проводить чисто механическое разделение — удалять остатки органических веществ центрифугированием. Фракция, содержащая жирные кислоты, может быть получена подкислением водной фазы с последующей второй экстракцией гептаном. [c.516]

Для выделения витамина А применяется метод омыления жиров раствором едкого кали при 60° в отсутствии воздуха, извлечение витамина А дихлорэтаном при температуре 50°. Процесс экстракции лучше вести в непрерывно действующем герметичном экстракторе, с надежной приточно-вытяжной вентиляцией. После отгонки растворителя необходимо выделить из концентрата стерины путем охлаждения их до —10°, выдержки в течение 3—5 н и фугования на центрифуге. [c.684]

Мешающие вещества. Стерины. Вещества неизвестного строения, присутствующие в дрожжах, которые не отделяются от витамина Ог при его экстракции и с двухлористым оловом дают окрашенные соединения. [c.213]

Экстракция каротина. Большинство исследователей [14, 16, 18] сходятся на применении в качестве органического растворителя для экстракции -каротина хлорированных углеводородов (в основном дихлорэтан). Существует мнение (А. Вечер [ 14 ]) о целесообразности предварительной экстракции белкового коагулята спиртом для удаления стеринов, фосфа-тидов, свободных жирных кислот и других веществ. Однако дополнительная экстракция спиртом сильно осложнит технологию производства, поэтому необходимость этого процесса нуждается в технико-экономическом обосновании. Экстракцию осуществляют дихлорэтаном в экстракторах непрерывного действия (при крупном производстве) или в аппаратах типа Сокс-лета при небольших масштабах производства. Дихлорэтана в реактор / (рис. 96) загружают 400% к массе сухого коагулята. Экстракцию ведут в течение 1—1,5 ч. Содержание каротина в шроте не должно превышать 5% к введенному каротину с белковым коагулятом. Затем в испарителе 2 в присутствии СО2 отгоняют дихлорэтан (температура не должна быть выше 50° С). [c.406]

Краситель аннато получают экстракцией растительным маслом при температуре 90° С. При исследовании красителя аннато установлено, что в нем содержится (в мг%) витамин Е— 150, каротиноиды — 1,9, стерины 200—300. [c.432]

В производстве, гле главным. ТТРЛРНММ прпдук тп>т ап. ляются микробные липиды, микроорганизмы выращиваются при минимальном азотистом питании. В этом случае они накапливают значительные количества (до 20% от массы клетки) липидов, состав которых зависит от используемого источника углерода. В липидную фракцию входят фосфолипиды, стерины, свободные жирные кислоты, MOHO-, дп- и триглицериды, стериновые эфиры и воски. Липиды извлекают экстракцией, а оставшуюся биомассу используют как белковую добавку в корма животных, однако содержание белка в ней в 1,5—2,0 раза меньше, чем в обычных кормовых дрожжах. [c.8]

С точки зрения синтеза практически более полезным представляется метод, в котором индикаторный изотоп вводится в ангидрид. Однако при использовании подходящего способа метки радиоактивными можно сделать и определяемые стероид или стерин. Возможность определения степени превращения по реакции с помощью меченых веществ отмечалась в ранних работах, посвященных использованию радиоизотопных методов в анализе аминокислот [90, 91]. Стероиды и стерины трудно количественно экстрагировать из биологических жидкостей добавление к этим жидкостям радиоактивных субстратов в качестве индикаторов дает удобный способ измерения выхода. Если радиоактивный субстрат добавить в жидкость перед экстракцией, то по относительной радиоактивности выделенного вещества можно точно оценить полные потери целевого соединения в ходе анализа, включая и потери, обусловленные неполным ацетилированием. В работе [92 описано использование в таких анализах стероидов, меченных тритием, имеющих высокую удельную радиоактивность. Приготавливали такие стероиды методом Вильсбаха. В настоящее время большое число стероидов, меченных изотопом С, имеется в продаже. [c.72]

Получение фитостерина из таллового пека. В процессе дистилляции или ректификации содержащийся в талловом масле фитостерин подвергается существенным количественным и качественным изменениям, образуя с жирными и смоляными кислотами практически нелетучие эфиры С40— С50. Для получения стеринов из пека необходимо провести его омыление в достаточно жестких условиях и выделить фитостерин из растворов омыленного пека. При омылении стерины переходят из связанного состояния в свободное и могут быть удалены из раствора экстракцией или кристаллизацией. [c.96]

Диэлектрическая постоянная жидкого диоксида углерода при 10 °С равна 2,68. Такое значение величины диэлектрической постоянной, характерное для неполярных растворителей, указывает на возможность извлечения неполярных или слабополярных веществ. К ним относятся эфирные и жирные масла, карбонильные соединения, жирорастворимые витамины (А, О, К, Р), токоферолы, стерины, алкалоиды в виде оснований, фурокума-рины, фуранохромоны. Экстракция и отгонка растворителя при невысоких температурах (до 30 °С) дают возможность получать эфирные масла, сохраняющие аромат исходного сырья, и биологически активные компоненты в нативном состоянии. Углекислота не поддерживает жизнедеятельности микроорганизмов и плесеней, что обеспечивает стерильность даже при использовании сырья, обсемененного микроорганизмами. [c.116]

При экстракции с>хого измельченного коагулята все жирорастворимые вещества, содержащиеся в сухом коагуляте, переходят в масляный раствор Сюда относятся различные каротиноиды (ликопин, ксантофилы и др ), фитол и стерины Каротиноиды и стерины довольно хорошо растворимы в спирте, а каротин, как известно, в спирте нерастворим Поэтому обрабогка спиртом коагулята в процессе сушки имеет важное значение для очистки коагулята, а следовательно, и масляных препаратов каротина, от ксантофилов и стеринов [c.130]

Рафинаты с обеих стадий экстракции можно использовать для получения гидрированных жиров. Экстракты могут служить сырьем для получения лаков. Побочными продуктами являются стерины, токоферолы и свободные жирные кислоты. Экстракцию фурфуролом можно применять также для выделения из льняного масла фракции с высокой степенью ненасыщенности и для выделения витаминов из жира морских рыб. Свободные жирные кислоты можно разделять экстракцией двумя растворителями — фурфуролом и нафтой. Moho-, ди- и триглицериды также можно разделять фракционной (дробной) экстракцией, используя в качестве растворителей водный раствор этилового спирта и гептан. [c.643]

В практике контроля используют целый ряд методов определения веществ, растворимых в органических растворителях. Однако все они, как правило, отличаются друг от друга только некоторыми деталями в выполнении анализа и применяемым растворителем. Некоторые из этих методов подобны методам определения смол и жиров в древесине. В качестве органических растворителей обычно применяют дихлорэтан, спирт, эфир, бензол и их смеси. Так, по методике ГОСТ 6841—54 в качестве растворителя применяется дихлорэтан, по чехословацкому стандартному методу [1] — спирто-бензольная смесь, по скандинавским стандартным методам [2] S AN — С7 62 и S AN — СВ 62 соответственно дихлорметан и спирт. Оба эти скандинавских метода применимы ко всем сортам целлюлозы, причем достаточно полное извлечение смол и жиров достигается при дробной экстракции целлюлозы — дихлорметаном и спиртом. В этом случае целлюлозу сначала рекомендуется экстрагировать дихлорметаном, а затем спиртом, так как экстрагирующая способность у спирта выше, чем у дихлорметана. Как дихлорметан, так и спирт извлекают из целлюлозы смоляные кислоты, жиры, жирные кислоты, стерины, терпены и воски, а также продукты окисления и хлорирования. Спирт, кроме указанных компонентов, удаляет также продукты окисления смол, некоторые продукты разрушения лигнина и целлюлозы, а также неорганические соли. Вообще дихлорметан рекомендуется применять вместо эфира, так как последний легко воспламеним. [c.177]

Процесс выделения из чистого сусла ничем не отличается от обычной химической процедуры. В то же время выделение нз самого организма (такого рода твердые объекты называют пленками, лепешками, мицелием или шариками) 1йожет потребовать известной изобретательности, особенно если необходимо разрушить клетки. В таком случае удовлетворительные результаты может дать экстракция ацетоном или другим подходящим растворителем. К сожалению, обработка клеток большинства микроорганизмов органическими растворителями приводит также к экстракции стеринов и других липидов, что осложняет дальнейшие исследования. Поэтому химик Должен стремиться сделать всегда все от него зависящее, чтобы обнаружить продукт реакции в чистом сусле. [c.221]

Из-за высокого содержания насыщенных кислот масло начинает мутнеть уже при 10—12 °С. Присутствие ненасыщенной линолевой кислоты обусловливает быстрое прогоркание масла. В косметические кремы его вводят обычно в смеси с оливковым маслом и редко самостоятельно, так как в больших количествах оно придает специфический запах изделию и вызывает необходимость ввода антиоксидантов — антала-С, аскорбилпальмитата и др. КУКУРУЗНОЕ МАСЛО получают экстракцией или прессованием зародышей кукурузного зерна. Цвет светло-желтый, вкус приятный. Содержит предельных кислот до 11%, олеиновой до 45%, линолевой до 48%, неомыляемых веществ (преимущественно стерина) до 2,5% плотность 0,921—0,926 температура застывания от 10 до —20° С число омыления 185,7—201,1 йодное число 111,0—133,0. [c.127]

В нескольких работах [97—101, 126, 127] изучалось превращение стеринов растительного происхождения в холестерин в организме насекомых. Икекава и сотр. [128] сообщили, что в личинках и куколках шелкопряда -ситостерин превращается в холестерин. В своих экспериментах они тем или иным способом вводили в личинки или куколки тутового шелкопряда -ситостерин, меченный тритием. По истечении определенных интервалов времени фракции стерина выделяли из личинок и куколок путем экстракции и хро- [c.313]

Стериновую фракцию, а также фракцию сложных эфиров стеринов отделяют от неочищенного и неомыленного шерстяного жира путем многократной экстракции жидким пропаном при повышенных температуре и давлении [145]. В литературе описан промышленный способ получения холестерина из шерстяного жира [1461. [c.36]

Денситометрическое определение всех классов соединений на основе использования обычных методов проявления хроматограмм недостаточно точно ввиду отсутствия единой для всех соединений пропорциональности оптической плотности и концентрации. Однако оно менее трудоемко, чем при использовании экстракции. Исходя из этих положений, Д. И. Кузнецов и Л. И. Семенова [4] разработали методику денситометрического определения индивидуальных классов липидов, в том числе стеринов, на основе хроматографии в тонком слое силикагеля. Принцип метода состоит в том, что перед анализом к силикагелю добавляют краситель метиловый красный. Липиды проявляются в виде пурпурных пятен на розовом, а затем желтом фоне. После обесцвечивания фона парами аммиака хроматограмму фотографируют, а фотокопии денситометрируют, сравнивая оптическую плотность изучаемых фракций с оптической плотностью стандарта. [c.320]