Крахмал фракционирование

Следуя далее в этом направлении, муку определяют как растительные белковые продукты, получаемые из сырья (обычно из семян) путем удаления целлюлозных соединений или благородных небелковых соединений, таких, как крахмал или масло. Для получения муки применяют рассматриваемые ниже приемы физической обработки шелушение, или удаление оболочек, дробление, измельчение, сортировка (фракционирование) по размеру или плотности, прессование, отжим и т. п., или используют растворители, например гексан. Содержание белка в такой муке обычно бывает в пределах 50—65 % в пересчете на ЫХб,25 от массы сухого обезжиренного вещества. [c.362]

Выделение фракций. Закончив электрофорез, блок извлекают из ванны и, слегка подсушив, разрезают на фрагменты шириной 1 см. Каждый фрагмент переносят в центрифужную пробирку соответствующего размера и размешивают с 3 мл буферного раствора. Осадок крахмала отделяют центрифугированием, а в надосадочной жидкости определяют содержание белка и на основании этих данных строят кривую фракционирования. В соответствии с этой кривой нужные фракции объединяют. [c.84]

Для разделения жидких олигомеров широко используется адсорбционная хроматография [13]. При фракционировании этим методом необходимо, чтобы адсорбция протекала с большой скоростью и обратимо, а также монотонно возрастала или убывала в зависимости от молекулярной массы олигомера. В качестве адсорбентов обычно используется древесный уголь, порошкообразные металлы, крахмал. При фракционировании полимеров с высокой молекулярной массой эти условия не всегда выполняются и метод становится малоэффективным. Однако таким методом удобно фракционировать полимеры, неоднородные по химическому составу. [c.219]

Фракционирование крахмала связано с большими трудностями, так кая трудно подобрать такие агенты, которые разъединяли бы комплекс амилозы и амилопектина, не затрагивая связей между остатками глюкозы. В настоящее время пользуются четырьмя группами методов фракционирования крахмала [c.705]

Амилоза. При фракционировании крахмала методом избирательного осаждения удается получить криста.ллическую амилозу, присутствие которой и обусловливает обнаруживаемую рентгеновским анализом кристалличность некоторых препаратов крахмала. Амилоза дает с иодом чисто синее окрашивание она может быть полностью расщеплена ферментом -амилазой до мальтозы (если препарат не содержит точек ветвления или -гликозидных связей). [c.705]

Адсорбционная хроматография. Избирательное адсорбирование белков некоторыми материалами и последующая их избирательная элюция часто используются для очистки белков. Такое фракционирование может проводиться как па колонках, так и на пластинках адсорбента. Для адсорбционной хроматографии белков применяют обычно такие носители, как гель фосфата кальция, алюмогель, диатомовая земля (целит), крахмал г гидроксилапатит. [c.80]

Лучшим методом анализа аминокислотного состава белковых гидролизатов является хроматографическое фракционирование на колонках из крахмала (Мур и Штейн , 1948) или при помощи ионообменных смол (Мур и Штейн, 1951). Количественное определение на ионообменных смолах с применением автоматической схемы (1958) делает возможным за несколько часов провести полный анализ смеси аминокислот, содержащей лишь 10 —10 моль каждого компонента. [c.642]

Фракционирование крахмала связано с большими трудностями, так как трудно подобрать такие агенты, которые разъединяли бы комплекс амилозы и амилопектина, не затрагивая связей между остатками глюкозы. [c.611]

Амилоза. При фракционировании крахмала методом избирательного осаждения удается получить кристаллическую амилозу. Именно присутствие кристаллической амилозы обусловливает обнаруживаемую рентгеновским анализом кристалличность некоторых препаратов крахмала. [c.612]

Адсорбционные методы фракционирования и очистки ферментов, несомненно, имеют наибольшее будущее области их применения стремительно расщиряются. В качестве адсорбентов чаще всего используются гидроокись алюминия, гель трифосфата кальция, каолин, целлюлоза, крахмал, гидроокиси цинка, меди, магния, реже — бензойная кислота, древесный уголь и бентонит, применяемые обычно для удаления нежелательных примесей. [c.149]

Электродиализ позволяет освободиться от следов электролитов и широко применяется для очистки различных белков, а также для фракционирования крахмала на амилозу и амилопектин (амилоза у катода, амилопектин—у анода). [c.63]

В качестве общего метода для фракционирования белковых смесей и для исследования гомогенности белков электрофорез в таких средах, как гранулированный крахмал, целлюлозный порошок [c.251]

В сравнении с хроматографическими методами все другие способы очистки белков за последние годы начинают несколько отступать на задний план. Все же следует упомянуть здесь о препаративном электрофорезе, который применяется довольно широко в разных исполнениях. Для фракционирования малых весовых количеств белков разделение смеси белков на зоны ведут в том или ином стабилизирующем наполнителе для ликвидации конвекционного перемешивания. Пригодными наполнителями являются волокна целлюлозы, в частности бумага. Бумажный электрофорез белков похож на разделение аминокислот и пептидов на бумаге, о чем мы уже говорили выше. Другой широко употребительной средой является гель крахмала, который разрезается на кусочки после завершения электрофореза, и из каждого куска элюируется содержащийся в нем белок. [c.131]

Выделенный из многих растений природный крахмал (например, из риса, конского каштана, ириса) оказался состоящим почти целиком из амилопектина, который дает с йодом красно-фиолетовое окрашивание. Амилоза в горячей воде дает чистый раствор, который при охлаждении не переходит в клейстер. Окраска амилозы с иодом чисто голубая. Разделение амилозы от амилопектина довольно затруднительно, но может быть проведено фракционированным осаждением с такими органическими растворителями, как н-бутанол, н-амило-вый спирт, тимол и другие. Амилоза, по-видимому, образует с этими растворителями комплексы аналогично соединению с йодом. Содержание амилозы в крахмале находится в довольно широких пределах от О до 70 процентов. [c.73]

В противоположность интенсивным исследованиям, предпринимаемым в отношении целлюлозы и ее производных, внимание ученых к амилозе и ее производным значительно слабее. Возникает возможность улучшения этого положения, так как амилоза производится в промышленном масштабе путем фракционирования картофельного крахмала в Голландии. [c.332]

Существует мнение, согласно которому основным (первичным) веществом крахмала является амилопектин, а амилоза — вторичного происхождения (образуется при обработке крахмала во время его выделения из растений, при фракционировании крахмала и при технологической переработке крахмалсодержащего сырья). [c.337]

Новейшие методы фракционирования крахмала основаны на различных физико-химических свойствах амилозы и амилопектина. Эти методы мо/кно разделить на трп группы. [c.117]

Адсорбция полисахаридов на ДЭАЭ-целлюлозе весьма зависит от строения разделяемых соединений, поэтому нельзя дать общей методики, применимой для всех полисахаридов. Необходим предварительный подбор условий наилучшего разделения для каждого полисахаридного препарата, подлежащего фракционированию. Необходимо отметить, что в общем случае адсорбции на ДЭАЭ-целлюлозе способствует увеличение числа кислотных групп в молекуле полисахарида. В гомологичной серии линейных полисахаридов вещества с низким молекулярным весом удерживаются менее прочно, чем высокомолекулярные [8, 20]. Далее, следует ожидать, что форма молекулы полисахарида также влияет на адсорбцию например, при фракционировании растворимого крахмала и декстринов линейные компоненты удерживаются прочнее разветвленных [5]. При применении ДЭАЭ-целлюлозы в боратной форме могут проявляться дополнительные влияния на процесс разделения. [c.269]

Помимо двух названных групп методом фракционирования крахмала применяются и другие. [c.172]

Фракционирование крахмала [82] на компоненты обычно осу-1Цествляют прибавлением к водной суспензии зерен крахмала полярного органического растворителя при этом амилоза образует нерастворимый комплекс. Амплоза затем может быть очищена повторным осаждением. Для первого осаждения используют ти-для последующей очистки — бутанол [83]. Фракцию амилопектина извлекают из надосадочной жидкости, которая остается Осле удаления комплексного соединения амилозы. Для предотвра- ения деградации этих фракций их очистку необходимо проводить тсутствие кислорода для более полного диспергирования часто [c.235]

Для осаждения и фракционирования полисахаридов можно использовать комплексосбразователи. Хорошо известна ярко выраженная способность амилозы давать нерастворимые комплексы с рядом органических спиртов, кислот, нитрссоединений, кетонов, сложных эфиров и фенолов Осаждение амилозы в виде комплекса с -бутанолом — обычный прием разделения крахмала на амилозу и амилопектин . Очень большое число [c.484]

Сублиматор может быть снабжен шлифом [85] в этом случае он пригоден для фракционированной сублимации. Подобна5 же пробирка, имеющая плоское дно, на котором сублимируемое вещество распределяется тонким слоем, пригодна для количественной микросублимации. Расстояние сублимируемого вещества от конца конденсатора составляет всего лишь 10 мм. Это устройство применялось для определения 2-метил-4-нафтохинона, ацетилсалициловой кислоты, фенацетина, фенобарбитола, никотинамида, салола и сульфаниламида в фармацевтических таблетках. Другие соединения, содержащиеся в таблетках, например крахмал, сахароза, лактоза, тальк, стеарат магния, /-цистин и а-углутаминовая кислота, при 150° и 10 (i. не сублимируются. [c.524]

Исследованы ранее не известные кристаллические комплексы мочевины и тиомочевины с полиэтиленоксидами, молекулярный вес которых составлял от нескольких сот тысяч до 4 млн. Образование комплексов связывают с появлением водородных связей между цепью полиэтиленоксида и кристаллической рещеткой мочевины 339. Рассмотрена возможность применения таких комплексов для фракционирования полимера. Изучено взаимодействие полиэтиленоксида с иодом. Замечено, что в присутствии полиоксиэтилена не происходит характерного окращивания крахмала при взаимодействии с йодом. Высказано предположение, что в водной среде имеет место взаимодействие между полиэтиле-ноксидом и Лз-, приводящее к образованию двух комплексов 390,391. При изучении взаимодействия свободных радикалов, образующихся в результате термического распада перекиси дикуми-ла, с полиэтиленоксидом в вакууме при 140° С было обнаружено, что образующиеся радикалы вызывают сшивку полимера 392. [c.164]

Гели (гидроокиси алюминия, фосфата кальция), используемые для адсорбции, при фракционировании на колонках малопригодны. Здесь необходимы иные материалы. Так, применяют одну из форм фосфата кальция — гидроксилапатит, имеющий характерную микрокристаллическую структуру. Формула гидро-ксилапатита as (ОН) (Р04)з. Его иногда смешивают с инертными материалами — целлюлозным порошком, селитом, инфузорной землей, чтобы ускорить протекание жидкости черев колонку. Однако необходимости в этом нет, ибо гидроксилапатит можно приготовить в форме достаточно крупных кристаллов, через которые жидкость проходит свободно, без повышения давления. В колонки помещают также силикагель, инфузорную землю, крахмал или боксит. [c.150]

Помимо этих методов фракционирования крахмала применяются и другие. Так был предложен метод электродиализа, в основе которого лежит идея Самека о разделении крахмала на золь (амилоза) и гель (амилопектин). [c.128]

Механизм действия специфических гидролитических ферментов, принимающих участие в метаболизме крахмала, и строение крахмала взаимозависимы, поэтому их лучше всего рассматривать вместе. По, поскольку этот вопрос будет подробно рассматриваться ниже, здесь мы лишь отметим следующее Мейер и др. [119] предложили линейное строение для амилозы и разветвленное для амилопектина, основываясь на том факте, что при действии Р-амилазы на амилозу происходит полное осахари-вание последней, тогда как из амилопектина образуется остаточный декстрин. Группа Мейера впервые иредлоя ила специфичный метод разделения амилозы и амилопектина, основанный на том, что амилоза в отличие от амилопектина растворима в горячей воде (70—80°). Позднее Шох [156] нашел, что амилоза избирательно осаждается к-бутанолом, с которым она образует кристаллический комплекс он использовал это свойство для фракционирования и очистки кукурузного и картофельного крахмала. Позднее было обнаружено, что еще более эффективным осадителем по сравнению с / -бутанолом являются к-амиловый спирт, к-пропиловый спирт и тимол. [c.141]

Спустя два года Линдквист и Сторгардс [185] опубликовали данные по фракционированию аминокислот и пептидов на колонках с крахмальным гелем и объяснили полученные результаты на основе эффекта молекулярных сит. В том же 1955 г. Лейт и Рутвен [167, 186] провели фракционирование смесей различных белков и меньших по размеру молекул на колонках с крахмальным гелем. Они первыми осуществили фракционирование образцов, молекулярные веса которых изменялись в широких пределах, и объяснили полученные данные на основании ограниченной проницаемости фракционируемых молекул в гели в зависимости от размеров этих молекул. Эти авторы далее показали, что область молекулярных весов фракционируемых молекул можно было значительно расширить путем набухания гранул крахмала и увеличения размеров пор в этих гранулах.. На содержащих набухший крахмал колонках Лейт и Рутвен [167] определили молекулярные веса инсулина (6000) и миоглобина (35 ООО). На таких же колонках этим авторам [c.114]

Среди природных гелей, применяемых при фракционировании методом ГПХ, следует отметить крахмал [167, 186], желатину [190а] и агар [138, 170, 171]. Общим для указанных трех гелей является низкая степень сшивания, пластичность и высокое сопротивление потоку растворителя в колонке. Кроме того, эти гели содержат группы, обусловливающие возможность ионного обмена и адсорбции, поэтому для большинства целей природные гели использовали гораздо реже, чем синтетические, параметры которых легче регулировать. С другой стороны, агаровый гель содержит, вероятно, поры необычно больших размеров. Полсон [138], используя в качестве геля гранулированный агар, смог осуществить фракционирование белков молекулярного веса вплоть до 6,6 10 . Стир и Аккерс [170, 171] на агаровых гелях разделили даже вирусы и компоненты клеток. Полсон [138] получил простое соотношение между концентрацией агара в геле (с) и диаметром молекулы растворенного вещества (ё), проникающей в гель [c.136]

Рецептуры смесей и способы получения полистирольных гелей в виде шариков путем суспензионной полимеризации весьма подробно рассмотрены в работах, посвященных ионообменным смолам [203, 231—237]. Согласно этим работам, капли масляной фазы, содер кащей мономеры и катализатор полимеризации, суспендируют при непрерывном перемешивании и нагревании в водной (непрерывной) фазе, в которой находится защитный коллоид. Соотношение количеств водной и масляной фаз обычно изменяется от 4 1 до 1 1. Капли затвердевают в течение 1 или 2 час при температуре 60—80°, и полимеризация, как правило, завершается в течение 20 час. После этого путем отмывания удаляют коллоид насколько возможно. Размеры шариков и их однородность по размеру зависит главным образом от условий перемешивания и от присутствующего коллоида, однако природа и количество разбавителя мономеров также влияют на размеры капель. В качестве коллоидов используют многие соединения, в частности полиакрилат натрия, поливиниловый спирт, мети лцел ЛЮ лозу, растворимый крахмал, желатину, тщательно измельченные соли щелочных металлов фосфорной кислоты, силикаты и карбонаты. Для получения меньших по размерам шариков необходимо вести перемешивание с большей скоростью и добавлять в систему повышенное количество коллоида. В общем случае для проведения фракционирования методом ГПХ подходят шарики диаметром 10—100 мк, предпочтение все же следует отдавать более узкой по размерам фракции этих шариков. [c.138]

Синге и Тизелиус [15] впервые наблюдали эффект молекулярного сита в гелях при фракционировании продуктов гидролиза амилозы в агар-агаровом геле. Для детального исследования механизма молекулярного сита Лейт и Ратвен [16] использовали зерна крахмала. Они нашли, что белки не проникают в обычный гидратированный [c.218]

В гл. 4 и 9 приведены ссылки на некоторые методики хроматографии, где с успехом применяют концентрированные растворы мочевины интересно отметить, что электрофорез в крахмальном геле также проводят в присутствии высоких концентраций мочевины. Пулик [24] недавно опубликовал убедительные результаты фракционирования продуктов, полученных при восстановительном расщеплении з-макроглобулина с применением геля, приготовленного следующим образом. Гидролизованный крахмал (60—65 г) смешивали с 250 г мочевины и смесь добавляли маленькими порциями к 300 мл буфера при энергичном перемешивании. Затем вязкий раствор нагревали при 70° в течение 10 мин, удаляли пузырьки воздуха и гель выливали в лоток для электрофореза. [c.257]

Вторая, наиболее распространенная группа методов использует способность амилозы давать нерастворимые комплексы с высшими спиртами и некоторыми другими вешествами. Фракционирование картофельного крахмала по этому методу дает следую-гцие результаты. 50 г картофельного крахмала обрабатывают водой при 60° С. После осаждения фильтрата метанолом получают 5 г легкой амилозы со средней степенью полимеризации 70. Оставшийся после центрифугирования гель растворяют в воде посредством нагревания в автоклаве прп 109° С. При этом амилоза н амилопектин полностью переходят в раствор. После охлаждения раствора до 90° С и осаждения амилозы циклогексанолом получают высо- [c.117]

Этот метод дает очень чнстые фракции, но фракционирование длится очень долго и обработка крахмала под давлением при высокой температуре вызывает некоторый гидролиз крахмала. [c.118]

Эфирные масла, душистые экстракты (резиноиды) и экстрагированные смолы, которые стандартизированы удалением некоторых основных ингредиентов, классифицируются в настоящей товарной позиции при условии, что состав стандартизированного продукта соответствует нормальным пределам, характерным для таких продуктов в их естественном состоянии. Однако эфирные масла, душистые экстракты (резиноиды) и экстрагированные смолы, подвергнутые фракционированию или модифицированные иным образом (отличным от удаления тер-пеновых углеводородов), исключаются из данной товарной позиции, если состав полученного продукта стал существенно отличаться от первоначального (обычно товарная позиция 3302). Из этой товарной позиции исключаются продукты, полученные с помощью добавления разбавителей или носителей таких, как растительное масло, декстроза или крахмал (обычно товарная позиция 3302). [c.307]

Предложено много различных методов фракционирования крахмала на полисахариды с разветвленной и линейной структурой. Причем наилучший метод фракционирования для одного вида крахмала не обязательно оказывается оптимальным применительно к другому виду многое здесь зависит от источника крахмала и характера его предварительной обработки. Цель, преследуемая при фракционировании, также влияет на выбор метода. Этот раздел написан в нредполон<ении, что задача исследователя состоит в препаративном получении определенных количеств амилозы и амилопектина, а не в изучении крахмала как такового. В последнем случае нельзя рекомендовать какой-либо общий метод. [c.308]

При фракционировании небольших количеств крахмала можно центрифугировать нейтрализованньн раствор в тот же день. Установлено, что если центрифугировать при 10 ООО об/мин в течение 15 мин, то полученный продукт имеет высокую степень чистоты. Раствор амилозы, как было сказано выше, следует фильтровать дважды. [c.309]

Методы ультрацентрифугального фракционирования растворов белков показывают, что хотя существуют и полидисперсные белки, представляющие собой смеси полимергомологов различного молекулярного веса (например, желатин — от 12 000 до 70 000), но в основном белки монодисперсны и в отличие от целлюлозы, крахмала и синтетических полимеров являются химическими индивидуумами, а не смесью полимергомологов (Сведберг). [c.659]

Углеводы также фракционировались при помощи электрофореза. Пионером в этой области является Са-мек, но он применял метод электрорасслоения, которьп будет упомянут в этом обзоре позже. Здесь будут рассмотрены некоторые другие простые приборы для фракционирования крахмала. [c.267]

Теперь рассмотрим различные типы экстрактов. При работе с некоторыми животными тканями частицы составляют незначительную часть экстракта и ими можно пренебречь. Они агрегируют, скажем, при первом же фракционировании сульфатом аммония и затем удаляются. С другой стороны, есть животные ткани, содержащие больше жиров и мембранных структур при экстрагировании таких тканей образуются суспензии. Подкисление среды до pH 6,0—5,0 обычно приводит к агрегации материала, который можно затем отцентрифугировать при относительно низкой скорости. Рибосомы и другие нуклеопротеиды обычно удаляются при подкислении, которое можно рассматривать как одну из форм изоэлектрического осаждения (разд. 3.2) фосфатные группы протонируются и нейтрализуют или по крайней мере снижают заряд частиц суспензии. Этот способ дает очень хорошие результаты при условии, что нужный фермент г) не осаждается изоэлектрически при данном значении pH, б) не адсорбируется на образовавшемся осадке или в) остается стабильным при нефизиологических значениях pH. Экстракт охлаждают и снижают pH соответствующей кислотой (например, 1 М уксусной, разд. 6.1). После перемешивания в течение 10—20 мин осадок отделяют центрифугированием, а pH надосадочной жидкости доводят, если необходимо, до нужного значения перед тем, как приступить к первому этапу фракционирования. Растительные ткани отличаются прежде всего тем, что реакция среды в них более кислая и содержащиеся в них частицы, такие, как фрагменты хлоропластов, агрегируют значительно труднее. К тому же растительные экстракты содержат сравнительно мало корпускулярного материала, если не считать грубых частиц типа зерен крахмала, которые легко осаждаются после приготовления экстракта. [c.49]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология