Нитраты в питательной среде

Состав питательных сред для каждого вида используемых нами микроорганизмов неоднороден [50], следовательно, изменение концентрации нитратов и фосфатов в сточных водах, подаваемых на очистку, будет оказывать влияние на активность микроорганизмов и, в конечном счете, на степень очистки воды. [c.285]

Источниками азота в питательной среде могут быть белки, пептиды, аминокислоты, соли аммония или аммиака, нитраты, а также атмосферный азот. Количество азотсодержащих веществ для образования биомассы можно вычислить, если известно содержание азота в данной биомассе и вероятный урожай ее. Обычно принимают, что 5% азота остается в питательной среде неиспользованным. [c.52]

В зависимости от показателей бактериологического и микроскопического анализов время от времени (на 3-и, 5-е, 8-е, 10-е и 15-е сутки) производят химические определения величин pH и бихроматной окисляемости, содержания специфических загрязнителей, азота аммонийного, нитритов и нитратов. О влиянии сточных вод (вещества) на процессы нитрификации можно судить также при посеве 1 0,1 0,01 0,001 мл жидкости на соответствующие питательные среды. [c.127]

Поскольку эта система является чаще адаптивной и развива- ется после определенной лаг-фазы, правильнее испытывать способность грибов к усвоению нитратов уже на заранее выращенном мицелии, отмывая его от первоначальной питательной среды перед [c.99]

В составе питательной среды для культивирования необходимо наличие источников азота, фосфора, калия, микроэлементов и других ростовых факторов. Потребность в азоте бактериальные штаммы могут удовлетворять за счет нитратов, солей аммония, аммиака и даже молекулярного азота, однако вид. источника азота в большей степени определяет экономический коэффициент усвоения субстрата (У), который равен для NH -формы 0,85, для нитратной формы 0,70, а удовлетворение, потребности в азоте его молекулярной формой снижает У до 0,65. [c.89]

Активная кислотность питательной среды, благоприятная для начала роста микроорганизмов, часто меняется в процессе культивирования микроорганизмов. Эти изменения могут быть результатом образования продуктов метаболизма или неравномерного потребления отдельных компонентов среды. Например, при сбраживании углеводов в среде накапливаются органические кислоты, снижающие pH среды. В средах с КНОз pH возрастает, как уже отмечалось, благодаря более интенсивному потреблению нитрат-иона и накоплению ионов калия. [c.56]

Потребности значительного числа микроорганизмов в азоте Могут быть удовлетворены нитратами. Питательные среды для культивирования таких микроорганизмов содержат KNO3, или NaNOa. В отличие от солей аммония нитраты — физиологически щелочные соли, так как при использовании аниона NOs" в среде накапливаются катионы К+ или Na+. Нитриты в кислых условиях для многих микроорганизмов токсичны, поэтому в качестве источника азота почти не используются. [c.44]

В смеситель 1 (рис. 83) подают составные части питательной среды (в %) соевую муку—1,0 крахмал — 2,0 хлорид натрия — 0,5 нитрат натрия — 0,2 мел — 0,1 фосфор (в виде солей)—5,0 и воду. Питательную среду в смесителе нагревают до температуры 80°С, насосом 2 перекачивают в греющую колонку 3, в которой нагревают до 132°С, затем выдерживают в выдерживателе 4 при этой температуре 40 мин, охлаждают в теплообменнике 5 до 30°С и направляют в рабочий ферментатор 14. Посевной ферментатор 12 заполняют горячей питательной средой, ее охлаждают через рубаш- [c.248]

В качестве питательной среды применяют различные источники азота нитрат натрия — 0,6%, кукурузный экстракт — 4% источники углерода лактозу 3—5%, глюкозу 1—2%, и минеральные соли кислый фосфат калия (КН2РО4) — 0,15%, сульфат или лучше тиосульфат натрия 0,2—0,3%, сульфат магния — 0,05%, мел—0,5—0,8%, сульфат цинка — следы. Вместо кукурузного экстракта также применяют муку из хлопковых семян, [c.730]

Высокое содержание нитратов, ионов аммония, калия, фосфата способствует быстрому росту клеток. Истощение среды значительно снижает рост и процессы вторичного метаболизма. Однако изначально низкое содержание фосфатов в питательной среде способно стимулировать синтез вторичных метаболитов. Установлено, что культивирование каллусов солодки голой на среде с половинной концентрацией азота и фосфора в темноте увеличивает содержание фенольных соединений в 1,6 раза по сравнению с каллусами, растущими на полной среде. В среду могут бьггь добавлены эндоспермы незрелых зародышей (кокосовый орех, конский каштан и др.), пасока некоторых деревьев, различные экстракты (солодовый, дрожжевой, томатный сок). Введение их в среду дает интересные результаты, но такие эксперименты трудно воспроизводимы, так как действующий компонент, как правило, точно неизвестен. Например, добавление в прггательную среду отдельных фракций кокосового молока не давало никаких результатов, в то время как нефракционированный эндосперм вызывал деление клеток. [c.162]

Для приготовления питательных сред в микробиологической промышленности используют сырье минеральное, животного и растительного происхождения, а также синтезированное химическим путем. Эти веш,ества, входя в состав питательной среды, обеспечивают развитие культуры и биосинтез определенных продуктов. Они не должны содержать вредных примесей. При выборе сырья необходимо учитывать его влияние на себестоимость, так как в микробиологическом синтезе важное значение имеет стоимость исходных веществ и материалов. В качестве источников углерода чаще всего используют углеводы (глюкоза, сахароза, крахмал, лактоза) или богатые углеводами натуральные продукты (меласса, кукурузная мука, гидроль и др.), а также жиры и даже вещества, содержащие углеводороды (нефть, парафин, керосин, природный газ, метан и др.). Источником азота обычно бывают неорганические соли — сульфат аммония, двузамещенный фосфат аммония, аммиак, нитраты, а также мочевина или натуральные продукты — кукурузный экстракт, соевая мука, дрожжевой автолизат и т. д. [c.75]

В качестве источников азотного питания продуцентами антибиотиков могут усваиваться органические (сложные белки растительного и животного происхождения, простые белки, пептоны, аминокислоты) и неорганические (аммонийные соли и нитраты) соединения азота. Органический азот может вводиться в состав питательных сред в виде дрожжевого, солодового, кукурузного и мясного экстрактов, пептона, казеинового гидролизата, всевозможных жмыхов, шротов, соевой, гороховой, кукурузной, ячменной и рыбной муки, мицелия продуцентов антибиотиков (Иофина и др., 1967 Полатовская, 1968), содержащего 3,75—4,6% азота. В качестве нового вида сырья для биосинтеза антибиотиков предложены белково-витаминные концентраты (Сойфер и др., 1973), концентраты безбел-кового картофельного сока (Вечер и др., 1978) и др. Многие нз названных органических комплексов применяются в биосинтезе полиеновых антибиотиков (см. главу I). [c.151]

Среды, уплотненные агар-агаром, при культивировании бактерий ие изменяют своей консистенции лишь очень немногие бактерии заметно разрушают агар-агар. Среды с желатином разжижаются очень многими бактериями с резко выраженными протеолитическими свойствами. Этот признак всегда используется для характеристики и определения вида бактерий. Определяется гидролиз крахмала. По характеру роста на жидких питательных средах также судят о некоторых свойствах изучаемой культуры. Образование пленки или кольца на стенках пробирки, равномерное помутнение или выпадение хлопьевидных или пылевидных осадков составляют дополнительную характеристику вида. Учитываются максимально физиологические и биохимические признаки окислительно-восстановительные функции, в частности редукция метиленовой сини и нитратов, образование индола, сероводорода, ам.миака, свертывание молока, иептонизация казеинового сгустка, сбраживание сахаров с образованием кислот и газов либо с образованием только кислот. Чем подробнее будет дана характеристика культуры, тем надежнее результаты ее идентификации. [c.53]

Перспективным направлением предотвращения загрязнения водоемов нефтепродуктами является их микробиологическое разрушение. Для некоторых бактерий не< ь является питательной средой. Однако естественная скорость микробиологического разрушения нефти в воде слишком низка, и этот процесс требует большого периода времени. Было установлено, что биологическая активность в большей степени зависит от температуры скорость микробиологических процессов удваивается при каждом увеличении температуры на 10 С. На развитие микроорганизмов большое влияние оказывает содержание высоколет их компонентов нефти. Введение в воду незначительного количества нитрата и фосфата (0,1 и 0,35 г на 100 мл соответственно) увеличивает степень разрушения нефти на 70 %. Так как нет микроорганизмов, которые полностью удовлетворяли. бы требованиям разрушения нефти на воде (способных расти и размножаться, оставаться знеспособными продолжительное время, не служить пищей для других водных организмов), рекомендуется использовать колонии из нескольких видов микроорганизмов. [c.387]

Многие бактерии, однако, и в анаэробных условиях используют окислительное (электрон-транспортное) фосфорилирование при этом происходит перенос электронов, получаемых при расщеплении субстрата, по (укороченной) электрон-транспортной цепи на экзогенные (добавленные в питательную среду) или эндогенные (образующиеся при разложении субстрата) акцепторы. Акцепторами электронов могут быть ионы нитрата, сульфата, карбоната и фумарата, а также сера соответствующие виды бактерий объединяют в физиологические группы нитратвос-станавливающих, денитрифицирующих, сульфатредуцирующих, метаногенных и ацетогенных бактерий, а также бактерий, восстанавливающих серу. Все эти бактерии играют важную роль в природном балансе. Так как фосфорилирование, сопряженное с транспортом электронов, долгое время считалось характерной принадлежностью аэробного дыхания, то, говоря о преобразовании энергии при окислительном фосфорилирова-нии в анаэробных условиях, в настоящее время пользуются также термином анаэробное дыхание (см. гл. 9). [c.248]

Рис. 7.16. Важнейшие пути ассимиляции азота. Ионы аммония, содержащиеся в питательной среде, непосредственно поглощаются клетками (а). Ионы нитрата при ассимиляционной нитратредукции (б), а молекулярный язох (N2) при фиксации азота (в) восстанавливаются до ионов аммония. В органические соединения аммонийный азот переводится либо при участии АТР путем образования глутамина, либо без затраты АТР путем прямого восстановительного аминирования 2-оксоглутарата или пирувата.

Ассимиляция нитрата. В процессе ассимиляции нитрат сначала восстанавли вается до нитрита, а затем до аммиака последний используется для синтеза аминокислот и других азотсодержащих компонентов клетки. Первый этап катализирует нитпрстредуктаза этот фермент (нитратредуктаза В) находится в цитоплазме, и его синтез индуцируется в том случае, если нитрат оказывается единственным источником азота в питательной среде. Нитрит восстанавливается до аммиака с помощью нитритредуктазы, на что затрачивается 6 электронов. Электроны поступают от 1ЧАВ(Р)Н2 (у грибов и бактерий) или ферредоксина (у [c.305]

Нитратредуктаза является адаптивным ферментом и образуется только в присутствии нитрата в культуральной среде. Чрезвычайно интересные данные получены в опытах с индуктивным образованием этого фермента как у микроорганизмов, так и у высших растений [14]. При выращивании некоторых растений в стерильных условиях нитратредуктаза вообще не образуется, если в качестве источника азота растения используют аммиак. В то же время при добавлении нитрата происходит быстрый синтез этого фермента [1]. Важно отметить, что в течение 1—2 дней после удаления нитрата из питательной среды активность нитратредуктазы уменьшается па 50—80%. Возможно, что Y Е. oli [29] в отсутствие нитрата уменьшается активность не нитратредуктазы, а нитратпер-меазы — переносчика, ответственного за проникновение нитрата в клетку. Таким образом, индуцируемой системой является нитратредуктаза или белок-переносчик, ответственный за [c.280]

Для получения культур грибов, обильно образующих активные ферменты, особое значение имеет выбор источника азота в питательной среде. Аспергиллы относятся к группе грибов, способных нормально развиваться и образовывать ферменты как на средах со сложными азотистыми веществами, так и с минеральными источниками азота. Поэтому при культивировании этих грибов можно в качестве источников азота использовать аммонийные соли неорганических и органических кислот, нитраты, гидролизаты белков, содержащие аминокислоты, продукты неполного гидролиза белка и сами белки. Усвоение,последних двух источников азота связано со способностью грибов к образованию протеолитических ферментов, которые должны расщепить белки, пептоны и полипептиды до усвояемых аминокислот. Многие исследователи считают кислотные гидролизаты белков наилучшими источниками азота для образования грибами ферментов. Однако высокая активность амилазы в культурах Asp. oryzae достигается и при культивировании на средах с нитратами. [c.139]

В случае же питания азотнокислыми солялш (селитрами, нитратами) растения потребляют больше азотной кислоты и меньше оснований. В результате питательная среда становится щелочной. Поэтому соли азотной кислоты (за исключением [c.21]

Кальций способствует росту корней. Потребность растений в нем проявляется с момента прорастания семени. Если при недостатке азота, фосфора и калия в первую очередь ослабляется развитие надземной части, то нри недостатке кальция — рост корневой системы. При отсутствии кальция во внешней питательной среде корни ослизняются и заболевают, на листьях появляются желтые пятна, нарушается углеводный и азотный обмен, затрудняется восстановление в растениях нитратов до аммиака. Кальций способствует усвоению растениями аммиачного азота, оказывает влияние на физико-химические свойства протоплазмы — ее вязкость и проницаемость, нейтрализует образующиеся в растениях органические кислоты, в частности щавелевую, устраняет или ослабляет вредное действие на растения одностороннего избытка других катионов. На кислых почвах растения часто страдают от избытка ионов водорода, алюминия, железа и марганца внесение кальция на этих почвах сни/кает их вредное действие на растения. Молодые, растущие части растения содержат мало кальция. Меньше всего кальция в семенах, больше — в листьях и стеблях, особенно стареющих. [c.29]

Питательную среду, состоящую из 30 г декстрозы, 20 г жидкости из мякоти зерна, 12 г нитрата натрия, 12 г ацетата натрия, 1 г монокалийфосфата, разбавленную водой до 1 л и имеющую рН=7,0, после стерилизации доводят до рН=6,7 и заражают Newospora sitophila (АТСС 9278). Культуру оставляют при 25° на 24 часа и для насыщения воздухом перемешивают со скоростью 200 об/мин. Затем вносят 3 г прогестерона, растворенные в 150 Л1Л ацетона, и оставляют при тех же условиях на следующие 48 час. После отделения мицелия, экстракции жидкости хлористым метиленом и сушки получают 4,7 г экстракта, из которого перекристаллизацией выделяют 0,12 г чистого оксипрогестерона с т. пл. 165— [c.160]

Бактерий этой группы многократно выделяли из мертвых насекомых, и была доказана их патогенность при пероральном введении насекомым. Стефенс [199] обнаружила в мертвых гусеницах яблонной плодожорки бактерию, которая была способна размножаться на обычных питательных средах, образуя серые, сухие колонии. Этот факультативно анаэробный вид на желточных средах не вырабатывает черный пигмент, так как не содержит фосфатазу, разжижает желатин, гидролизует крахмал и образует кислоту из глюкозы, мальтозы и сахарозы. Он не расщепляет ара-бинозу, лактозу, глицерин и маннит. На кровяных средах не вызывает гемолиз, восстанавливает нитраты до нитритов, дает положительную реакцию с метиленовой красной. Реакция Воже — Проскауера непостоянная. Индола не образует. Вегетативные клетки размером 0,9—1,4X1,4—3,0 и до 7,0мк, споры правильно яйцевидной формы, 1—1,3X1,0 мк. Параспоральные тельца и кристаллы не образует. [c.192]

Применение солей аммония. 1. Сульфат аммония (NH4)2S04 и нитрат аммония NH4NOз применяются в качестве удобрений в сельском хозяйстве. Азот в аммиачной селитре NH4NOз содержится как в аммиачной (НН4+), так и в нитратной (МОз ) форме. Нитратный азот является более быстро действующим, чем аммиачный азот особенно эффективен он в период роста растений. Аммиачный азот действует в удобрениях более медленно, в течение длительного периода. Наличие обеих форм азота в аммиачной селитре делает ее более универсальным удобрением, подходящим для большинства почв и сельскохозяйственных культур. Академик Д. Н. Прянишников показал, что аммиачное питание растений в ряде случаев преобладает над нитратным. При более кислой реакции лучшим источником являются нитраты, при нейтральной — аммиачный азот. Внося в питательную среду карбонат кальция для нейтрализации кислотности, можно сильно повысить эффективность аммиачных форм азота. В СССР аммиачные формы азотных удобрений преобладают над нитратными. Недостат- [c.295]

Дрожжи 5. erevisiae могут метаболизировать разные азотистые соединения. Они успешно поглощают аммиак и могут отлично размножаться на средах, в которых он является единственным источником азота (помимо нескольких витаминов — например, биотина и никотинамида). Хорошим источником азота является мочевина, которая в дрожжевой клетке преобразуется в аммиак. В качестве источников азота не используются нитраты и нитриты. Дрожжи утилизируют все а-аминокислоты и мелкие цепочки пептидов. Пролин может усваиваться дрожжами только в аэробных условиях, так как его метаболизм включает фазу катализа оксидазы. Органические соединения в качестве единственных источников питания дрожжей обладают разными свойствами, но наилучший рост дрожжей обеспечивается смесью аминокислот. У дрожжей отсутствует внеклеточная активность протеазы, в связи с чем они не могут усваивать крупные цепочки пептидов или белки. В промышленном производстве в питательной среде обычно содержится широкий диапазон аминокислот и аммиак в некоторых случаях добавляют и мочевину, так что в ней не бывает недостатка в азоте. Иногда для поддержания необходимого роста дрожжей количество ассимилируемого дрожжами азота сознательно ограничивают. Считается, что это улучшает эффективность преобразования сахаров в этиловый спирт и Oj, а также улучшает сопро-тив-ляемость конечного продукта бактериальному загрязнению. [c.51]

Установлено, что молибден входит в состав фермента нитрзтредуктазы, осуществляющей восстзиовленне нитратов в растениях. Активность этого фермента зависит от уровня обеспеченности растений матнбденом, а также от форм азота, применяемых для их питания. При недостатке молибдена в питательной среде резко снижается активность нитратредуктазы. [c.17]

Опытами Я. В. Пейве и Г. Я. Жизневской было доказано, что активность нитратредуктазы в листьях растений гороха, люпина и ячменя зависит от содержания нитратов в питательной среде в почве или питательном растворе и доз молибдена, причем повышается она под влиянием не только молибдена, но и меди. [c.17]

Этот метод обладает некоторыми недостатками. В частности, оказывается практически невозможным дифференцировать биогенные и абиогенные процессы, приводящие к выделению тех или иных газов. Ряд газов, которые предполагается регистрировать с помощью газового хроматографа, может образоваться при взаимодействии компонентов питательной среды с неорганическими составляющими почвенных образцов. Показано, например, что кальций, кадмий, магний и цинк могут вызывать химические процессы образования водорода и метана сурьма образует водород ртуть, медь, висмут и мышьяк не инициируют химических реакций. Все абиогенные процессы происходят в начале первого цикла, при повторных перезарядках инкубационпой камеры свежей средой и атмосферой неорганические катализаторы, но-видимому, инактивируются и химические реакции не проявляются. Однако образующиеся окиси металлов гидролизуются при контакте с водой питательной среды с образованием ионов карбоната и бикарбоната. В связи с этим количество СОг, выделяющегося в результате биогенных процессов, оказывается заниженным. Кроме того, на выделение углекислого газа влияет также восстановление нитрат-иона, способствующего образованию гидроксила. Это в свою очередь вызывает подщелачивание среды и связывание углекислого газа. [c.130]

Изучение влияния концентрации водородных ионов на биосинтез танин-ацилгидролазы грибом Asp. arbonarius показало, что при использовании аммонийных солей на глюкозо-минеральной среде с галлотанином оптимальный pH для биосинтеза фермента около 2,5. При выращивании микроорганизма на питательных средах с нитратами биосинтез таназы наиболее интенсивно происходил при pH 5,3—5,5, Внесение в питательные среды углекислого кальция приводило к полному прекращению образования фермента. [c.188]

Весьма интересно подчеркнуть, что в последнее время способность образовывать адаптивные ферменты обнаружена и у высщих растений. Так, проростки риса, развивающиеся на воде либо на питательной среде, содержащей в качестве источника азота аммиак, не содержат нитратредуктазы. Фермент этот появляется после внесения в среду нитратов. У проростков, перенесенных вновь на буферный раствор, нитратредуктаза исчезает (Tang а. Wu, 1957). [c.88]

Согласно исследованиям ряда авторов, нитратредуктаза образовывалась в проростках риса только при обязательном наличии Б питательной среде нитратов. Это свидетельствует об адаптивной природе данного фермента. Недавно установлено, что молибден является также обязательным компонентом другого представителя ферментов флавиновой группы — ксант иноке и-дазы. Высказываются также предположения об участии Мо в построении редуктазы цитохрома С (Анфинсен). [c.437]

Первые высказывания по этому вопросу принадлежат Нейсону и Ивенсу (1953), а также Николасу и др. (1954). Они подчеркивали, что одним из условий образования активного фермента у грибов является наличие в питательной среде нитратов. Позже Кинский (1958) подтвердил наличие количественной зависимости между эффектом адаптации у Neurospora rassa и концентрацией в среде нитратов. [c.114]

Восстановление нитратов у АпаЬаепа ylindri a при недостатке молибдена в опытах Фогга и Вольфе еще продолжалось, в то время как синтез белка был полностью подавлен. Восстановление нитратов у молибденнедостаточных растений шло с обычной скоростью при добавлении в питательную среду как фумарата (а также сукцината, цитрата, с трудом в присутствии глюкозы или ацетата), так и молибдена. [c.131]

Содержащиеся в подземных водах бактерии выполняют большую геохимическую работу, видоизменяя химический и газовый состав вод. Например, аэробные сапрофиты (учитываемые при росте на питательной среде) разлагают легко усвояемые органические соединения белкового и углеводного характера гнилостные бактерии, используя белковые вещества, образуют НгЗ и Нг денитрифищ1рующие бактерии восстанавливают нитраты до газообразного азота, а нитрификаторы окисляют аммиак до нитратов и нитритов тионовокислые бактерии окисляют тиосуль-фаты или H2S до серной кислоты и т. д. Продуктами метаболизма бактерий могут быть также токсины, ферменты, антибиотики и др. Следует подчеркнуть, что многие развивающиеся в подземных водах бактерии являются безвредными для здоровья человека и даже участвуют в бактериальной очистке вод от загрязнения. [c.16]

Подавляющее большинство организмов удовлетворяет свои потребности в этом элементе, используя обе формы кислорода. При выращивании Pseudomonas в присутствии Юг и На 0 источником приблизительно 10% кислорода, входящего в состав клеточного материала, служил газообразный кислород, 50—60% клеточного кислорода происходило из воды. Остальной кислород в клетку поставляли органические и неорганические компоненты питательной среды (глюкоза, фосфаты, нитраты, сульфаты и др.). [c.97]