Потенциал клеточной стенки

Потенциал клеточной стенки [c.10]

Удерживание в неоднородном электрическом поле белков и нуклеиновых кислот с сохранением их биологической активности свидетельствует о возможной роли этого явления в живой клетке. Общеизвестно, что клеточная стенка неоднородна ио своему составу, а следовательно, и по диэлектрической проницаемости и имеет довольно высокий электрический потенциал [ б, 17, 474]. Мембраны клеточных органелл (митохондрий, хлоропластов) и бактерий содержат молекулярные электрические генераторы [87], причем величина генерируемой трансмембранной разности электрических потенциалов достигает существенных значений— 100--300 мВ. Поэтому вполне резонно допустить существование в клеточных структурах неравномерного неоднородного электрического поля, аналогичного создаваемому нами в эксперименте, с высокой напряженностью и градиентом потенциала, и предположить его влияние на процесс удерживания, локализацию и работу биологически активных соединений, особенно высокомолекулярных. [c.228]

На клеточной стенке, или клеточной мембране, между внутренней и внешней сторонами обнаруживается электрический потенциал, так называемый потенциал покоя. Колебания потенциала при возбуждении — рецепторный потенциал — возбуждают нервный импульс, который распространяется в направлении к мозгу. Число импульсов характеризует высоту рецепторного потенциала и вместе с тем пропорционально степени возбуждения клетки. Импульсы, возникающие при возбуждении пахучим веществом, можно уловить, усилить и зарегистрировать. Так получают количественную характеристику ответа отдельной обонятельной клетки. [c.56]

Набор образцов растительной ткани приводят в состояние равновесия с растворами различной концентрации (с разными водными потенциалами) цель этого — подобрать раствор, который вызывает начальный плазмолиз, т. е. заставляет протопласты сморщиваться настолько, что они только-только начинают отставать от клеточной стенки. В этот момент гидростатический потенциал клетки равен нулю, поскольку протопласт уже не давит на клеточную стенку, так что / клетки = /(, клетки = )/раствора = /о раствора (см. уравнения выше). Другими словами, осмотический потенциал раствора, вызывающего начальный плазмолиз, такой же, как и у цитоплазмы. [c.103]

Удовлетворительное объяснение этим фактам дает теория сцепления (когезии), или теория натяжения. Согласно этой теории, подъем воды от корней обусловлен ее испарением клетками листа. Как мы уже говорили в разд. 13.3, испарение снижает водный потенциал клеток мезофилла, прилежащих к ксилеме, и вода поступает в эти клетки из ксилемного сока, водный потенциал которого выше при этом она проходит через влажные клеточные стенки у концов жилок, как показано на рис. 13.8. [c.121]

Влияние ауксинов на рост клетки достаточно хорошо изучено. Рост растяжением предполагает, что целлюлозный каркас клеточной стенки еще не приобрел окончательной жесткости. Увеличение размеров клетки осуществляется как за счет осмотического набухания (растягивания протопласта поступающей в него водой), так и за счет отложения нового материала стенки. Направление растяжения определяется, повидимому, ориентацией уже включенных в нее целлюлозных микрофибрилл. Мягкость стенки поддерживается кислотной средой и ауксинами. В 1973 г. четыре группы ученых независимо друг от друга продемонстрировали, что ауксины стимулируют секрецию протонов из цитоплазмы в клеточную стенку. Это приводит к снижению в ней pH (повышению кислотности) и, следовательно, к ее размягчению . Возможно, некий фермент с низким оптимумом pH разрывает связи в образующих стенку полисахаридах и тем самым обеспечивает растяжимость каркаса в целом. Кроме того, необходимо, чтобы в клетке поддерживался низкий осмотический потенциал и чтобы было достаточно воды, которая проникала бы в клетку и создавала высокое тургорное давление. Согласно более поздним данным, первичное действие ауксинов обусловлено, вероятно, не подкислением клеточной стенки не исключено, что они связываются с рецепторами в плазмалемме эпидермальных клеток, что приводит к изменениям генной активности. Эти изменения приводят к синтезу новых ферментов или других белков, имеющих непосредственное отношение к росту. [c.255]

Приведенные в табл. 3 данные позволяют судить о размерах пор, в которых не будет удерживаться вода, при разных значениях водного потенциала или относительного давления пара. Из таблицы видно, что при бар (индекс wl означает клеточную стенку) [c.145]

Составляющие потенциала в клеточных стенках [c.162]

При рассмотрении отдельных составляющих потенциала в клеточных стенках удобнее учитывать не только сам материал клеточных стенок, но и весь объем, окружающий протопласт, за исключением проводящих элементов. Сюда входят специфическое вещество клеточных стенок, граничащее с межклетниками, клеточные стенки смежных клеток и сами межклетники. [c.162]

Если все это лежащее кнаружи от протопласта пространство насыщено водой, то, очевидно, могут возникать и положительные давления, однако вряд ли атмосферное давление будет при этом заметно превышено. Положительные давления могут возникать вследствие того, что поверхностные силы, связанные со скелетом клеточной стенки, обусловливают поглощение воды, в результате чего возникает давление набухания. Доннановские явления, в силу которых давление в доннановской фазе бывает выше, чем в межклеточном растворе, также могут способствовать локальному повышению давления, если приток воды ограничен вследствие сжатия межклетников. При гуттации и аналогичных явлениях, связанных с корневым давлением, также могут возникать положительные давления, однако сомнительно [402, 405], чтобы они превосходили 1—2 атм, так как от чрезмерного повышения давления предохраняет способность системы выделять воду во внешнюю среду. В любом случае положительные давления возникают только в клетках с хорошо выраженным тургором. Когда водный потенциал падает ниже —2 бар, развитие положительных давлений оказывается практически невозможным. [c.162]

Как и в протоплазме, матричные и осмотические силы должны возрастать по мере того, как содержание воды в клеточной стенке снижается. Вначале при этом должно наблюдаться некоторое сжатие стенки однако при сближении твердых поверхностей начинают быстро возрастать матричные силы, вследствие чего скорость потери воды должна постепенно все больше снижаться. Если ширина межфибриллярных пространств составляет менее 100 ммк, то отток воды не начнется до тех пор, пока водный потенциал не упадет ниже —15 бар. При ширине <10 ммк соответствующим пределом будет = —150 бар. Это величина, при которой многие типы тканей погибают. [c.163]

Второй тип данных, по-видимому, также можно интерпретировать иначе. Вообще говоря, было показано, что ауксин существенно стимулирует поглощение воды и что этот эффект подавляется ингибиторами дыхания. Некоторые из ранних исследователей связывали влияние ауксина с усиленным накоплением в вакуоли осмотически активных веществ [152, 603, 604], но последующие работы этого не подтвердили [92, 289, 521, 524]. Первичное действие ауксина состоит, по-видимому, в том, что он увеличивает проницаемость и пластичность клеточной стенки это способствует снижению тургорного давления Р, а также водного потенциала F и таким образом вызывает поступление воды в клетку и расширение последней. [c.211]

В растении вода движется от поверхности корня до менисков на разделе вода—жидкость также в жидком состоянии. Из предыдущих разделов этой главы должно быть ясно, что большая часть общего потока фактически представляет собой поток воды и растворенных веществ и что основная зона сопротивления находится в корнях (см. также [359, 360, 395]). Поток через кору корня до эндодермы и через мезофилл листа по клеточным стенкам, по-видимому, движется вдоль градиентов матричного потенциала, или матричного давления йх/йх, а через ксилему — вдоль градиента гидростатического давления йР/йх. На всех этих этапах передвигается весь раствор целиком, особенно в ксилеме однако в клеточных стенках его передвижение затруднено явлениями обмена и поглощения ионов, которые влияют на состав и концентрацию раствора. У корней, не имеющих вторичного роста, основной источник сопротивления движению жидкой фазы находится, по-видимому, в эндодерме. В корнях с вторичным ростом главным барьером служат, очевидно, внешние камбиальные слои и пробка. Хотя мы и располагаем некоторыми данными, указывающими на то, что для эндодермы сг < 1, представляется приемлемым допущение, что фактической движущей силой потока воды является в этом случае с1Ч/йх. [c.237]

Хотя жидкая фаза может быть непрерывной вплоть до кутикулы, гидравлическая проводимость клеточных стенок, вероятно, настолько низка, что в зоне вторичного утолщения возникают очень значительные градиенты водного потенциала. Известно, что при удалении кутикулы кутикулярная транспирация может возрасти в несколько раз 1297, 335, 587]. Однако этот эффект не обязательно указывает на высокую водопроницаемость кутинизированных стенок он может просто означать, что сопротивление диффузии водяного пара в самой кутикуле является еще большей преградой для передвижения воды. Даже в тех случаях, когда кутикула удалена, сопротивление кутикулярного пути у большинства видов значительно превосходит сопротивление устьичного пути при открытых устьицах. Исключение будут представлять в основном виды, обитающие в наиболее -благоприятных условиях увлажнения клеточные стенки эпидермиса у таких растений утолщены слабо. [c.272]

Величина потенциала плазмалеммы у высших растений, по результатам исследований, оказывается весьма значительной (около —100 мВ и более) и, по существу, часто совпадает с величинами клеток в целом [36,112,346,379,404]. Следует, однако, учитывать, что плазмалемма при этом рассматривается авторами обычно как так называемая толстая мембрана [44]. т.е. в единстве с клеточной стенкой. [c.11]

Измерения потенциала клеточной стенки при постепенном введении микроэлектрода внутрь клетки, выполненные в основном на харовых водорослях [42.44,46], показали, что он имеет величину —40 + +—70 мВ. У высших растений его величина, возможно, несколько ниже —20 + —30 мВ [346]. Эти результаты показывают, что клеточная [c.10]

Попытки осуществить возможно более точную оценку величины потенциала плазмалеммы у растительных объектов в литературе предпринимались неоднократно. В частности, на крупных клетках харовых водорослей его величина, по данным Л.Н. Воробьева и соавторов [42,46], может быть измерена как скачок потенциала на границе клеточной стенки и цитоплазмы при постепенном введении микроэлектрода внутрь клетки. Потенциал плазмалеммы, измеренный таким способом, составляет —80 + —100 мВ, что заметно превышает величину потенциала клеточной стенки у этих же объектов. [c.11]

Измеренный с помощью микроэлектродов (МЭ) потенциал клеточной стенки харовых водорослей составлял -40. .. -70 мВ. У высших растений его величина, возможно, несколько ниже и равна -20. .. -30 мВ. Эти ре- [c.84]

Потенциал плазмалеммы. Измеренный с помощью микроэлек-тродной техники потенциал плазмалеммы клеток харовых водорослей составлял -80 -100 мВ, что заметно превьинает величину потенциала клеточной стенки у этих же объектов. [c.85]

Бактериальное окисление сульфидных минералов — электрохимический процесс. В присутствии нескольких сульфидов создаются гальванические пары, причем микроорганизмы окисляют прежде всего сульфид с меньшим электродным потенциалом. Это обусловливает возможность избирательного окисления отдельных минералов в концентратах. Окисляемое железо (II) поступает в пери-плазматическое пространство клеточной стенки, где электрон акцептируется медьсодержащим белком — рустицианином, а затем переносится по цитохромной цепи через цитоплазматическую мембрану. Возникающий при транспорте электронов и протонов потенциал обеспечивает синтез молекул аденозинтрифосфата (АТФ). [c.151]

Один из важных факторов, определяющих агрегативную устойчивость суспензий микроорганизмов, — наличие поверхностного заряда клетки. Этот заряд зависит от видовой принадлежности, строения и физиологического состояния клеток и может варьироваться в широких пределах [14]. В отличие от частиц небиологической природы, имеющих четко выраженную границу раздела фаз, клеточная поверхность формируется на основе ряда поверхностных структур, включающих клеточную стенку, а также капсулы, пили, жгутики и ряд других, каждая из которых может оказьшать влияние на электрические поверхностные характеристики суспензий и определять их устойчивость [15]. Клеточные стенки микроорганизмов могут различаться как строением, так и химическим составом. Диссоциация функциональных групп полимеров формирует поверхностный заряд клеток. Заметный вклад в возникновение ловерх-ностного заряда вносят адсорбированные ионы металлов. Кроме того, образование поверхностных зарядов клеток обусловлено наличием трансмембранного потенциала, т. е. разности потенциала между цитоплазмой клетки и окружающей ее средой. Причина возникновения разности потенциалов связана с наличием физико-химических гра-диентов между цитоплазмой и средой, обусловленных активным переносом ионов и молекул клеткой. Трансмембранный потенциал может оказать заметное влияние на электрокинетический потенциал клетки [14]. [c.17]

На основании изложенных выше литературных и экспериментальных данных можно предложить следующую гипотетическую схему биохимических процессов, возникающих в простейшем случае лод действием ауксина в растительной клетке, находящейся в фазе растяжения. Молекула ИУК, являющаяся донором электрона, образует лабильный комплекс с гипотетическим рибонуклеопротеидом-переносчиком поверхностной мембраны. Образование такого комплекса приводит к увеличению количества фосфатных групп, освобождающихся от связи с белком. Активированный таким образом переносчик связывает кальций пектатов клеточных стенок свободными фосфатными группами и транспортирует его на внутреннюю сторону мембран. Эта реакция идет с использованием энергии АТФ, в результате чего усиливается окислительное фосфорилирование и дыхание. В реакции переноса кальция принимают участие сократительные белки, содержащие сульфгидрильные группы. Перемещение кальция сопровождается изменением мембранного потенциала и активности ферментов, локализованных в мембранах и клеточных стенках (аскорбатоксидазы, метилпектинэстеразы). Изменяется также поглощение и выделение ряда катионов и анионов, в частности, увеличивается поглощение калия. В результате удаления части кальция клеточная стенка становится более пластичной, вследствие чего возрастают сосущая сила и поступление воды в вакуоль. Начинается растяжение клеточной оболочки. Переносчик под действием РНК-азы распадается на внутренней стороне мембраны и затем ресинтезируется для переноса новых ионов кальция. Растяжение клеточной стенки индуцирует системы синтеза пектинов, целлюлозы и других компонентов оболочки. Эти процессы также сопровождаются затратой энергии и усилением интенсивности дыхания. Растяжение и увеличение гидратации цитоплазмы приводит к уменьшению ее вязкости и активизации гидролитических ферментов. Вслед за поглощением воды в вакуоль поступают осмотически активные вещества, поддерживающие сосущую силу клетки. [c.42]

Если растительная клетка контактирует с раствором, водный потенциал которого ниже, чем у ее содержимого (например, с концентрированным сахарным сиропом см. опыт 13.1), то вода будет выходить из нее за счет осмоса через плазмалемму (рис. 13.2). Сначала воды станет меньше в цитоплазме, а затем и в вакуоле, откуда она выйдет сквозь тонотшаст. Протопласт, т. е. живое содержимое растительной клетки, окруженное клеточной стенкой, спадется и отойдет от этой стенки, как бы сжавшись внутри нее. Этот процесс называется плазмолизом, а клетка в таком состоянии — плазмолизироваппой. Момент, когда протопласт еще прилегает к клеточной стенке, но уже перестал оказывать на нее давление, называется начальным плазмолизом. В этот момент клетка теряет тургор, т. е. становится вялой. Вода будет покидать протопласт до тех пор, пока его содержимое по водному потенциалу не сравняется с окружающим раствором. Тогда установится равновесное состояние, и спадение протопласта прекратится. [c.101]

Рис. 13.2. Влияние растворов различной концентрации на растительные клетки. В растворе, водный потенциал которого выше, чем водный потенциал клетки (гипотоническая среда), вода за счет осмоса будет проникать в клетку и каетка набухает (становится тургесцентной). Если водный потенциал раствора ниже, чем водный потенциал клетки (гипертоническая среда), то вода покидает ее за счет осмоса, и живая часть клетки (протопласт) отстает от клеточной стенки и следует за сокращающейся вакуолью (плазмолиз). Если водные потенциалы клетки и раствора одинаковы (изотоническая среда), то никаких изменений не происходит.

Когда водный потенциал окружающего клетку раствора уравновесится ее возросшим гидростатическим потенциалом, внутрь будет проникать столько же водньк молекул, сколько выходить наружу за то же время. Несмотря на продолжающееся их движение через мембрану, изменения системы в целом прекратятся. Такое равновесие со средой назьшается динамическим. Осмотический потенциал клеточного содержимого останется скорее всего ниже, чем снаружи, поскольку для роста тургорного давления нужно не так много воды — меньше, чем для существенного разбавления внутреннего раствора. Однако эта разница компенсируется более высоким, чем снаружи, гидростатическим потенциалом клетки. Суммарные же водные потенциалы с обеих сторон клеточной стенки сравняются. [c.102]

При разгрузке ситовиднъхх трубок растворенные вещества, вероятно, уходят из них в передаточные клетки по плазмодесмам. В результате водный потенциал трубок повышается (становится менее отрицательным). Это тормозит потенциальный осмос извне и поддерживает гидростатический градиент между местами загрузки и разгрузки флоэмы. Полагают, что последний процесс может идти и через плазмалемму ситовидных трубок в их клеточные стенки и далее апопластным путем. [c.137]

Учитывая эти группы сил, можно записать уравнение для химического потенциала воды таким же способом, как для набухающих почв. Исключительно высокая неоднородность растительной ткани, в которой имеются три внутриклеточные фазы (клеточная стенка, цитоплазма и вакуоль) и внеклеточная фаза (сосудистая система), означает, однако, что свойствами, присущими целой клетке или совокупности клеток, нельзя объяснить специфические изменения в различных отдельных частях клетки. Следовательно, здесь положение не совсем сходно с тем, йакое мы наблюдали в набухающих почвах, которые по сравнению с растительной тканью вполне гомогенны. Любое описание растительной ткани, претендующее на то, чтобы быть количественным, фактически будет применимо лишь к одной ее фазе, так как отдельные составляющие водного потенциала в разных фазах могут иметь разную величину и под влиянием одних и тех же факторов изменяться в разной степени. [c.157]

В невакуолизированных клетках (типичным примером могут служить меристематические) или в клетках, где содержимое вакуоли имеет консистенцию геля, значительная часть воды удерживается матричными силами и количество свободного раствора относительно невелико. Поэтому в предельных случаях член, связанный с осмотическим давлением, вероятно, вообще отсутствует и водный потенциал внутри клетки зависит только от матричного потенциала и от давления, которое оказывает на содержимое клетки клеточная стенка. [c.160]

Такого рода силы возникают вследствие сцепления между отдельными молекулами воды, а также между молекулами воды и стенками сосудов и трахеид, о чем говорилось выше. Поскольку большинство проводящих элементов имеет достаточно крупные размеры (радиус >10 мк), вода из них должна была бы вытекать еще до того, как водный потенциал понизится до —1 бар, если бы водные мениски в крайних точках системы имели такой же радиус. Само собой разумеется, однако, что радиусы менисков как в наружных стенках сосудов и трахеид, так и на концах проводяших элементов в листьях и корнях значительно меньше. По всей вероятности, они близки к ширине межфибриллярных пространств в клеточных стенках. И [c.163]

Наилучшим методом определения составляющих потенциала во вневакуолярной области может быть детальное изучение изотерм поглощения, как и при измерении тех же показателей для целой ткани [353, 355, 683, 684, 826]. С этой целью непрерывно совершенствуются способы выделения различных клеточных фракций ]571]. Могут представлять ценность также определения свободного пространства и осмотического объема с использованием различных растворенных веществ. Гафф и Карр [235] недавно исследовали водоудерживающую способность извлеченного, высушенного и растертого в порошок материала клеточных стенок Eu alyptus globulis. Если применение таких методов окажется успешным, то это позволит собрать достаточное количество данных о составляющих водного потенциала в различных участках клеток и тканей. [c.175]

Влияние на транспирацию различных источников сопротивления движению на пути пара, а также влияние"фактических давлений пара на внешних и внутренних поверхностях рассматриваются детально в гл. VIII. Здесь необходимо только отметить, что в жидкой фазе перенос воды в мезофилле идет большей частью по клеточным стенкам, где вода движется в соответствии с градиентом водного потенциала, не встречая большого сопротивления. Однако в наружных стенках эпидермиса и в кутикуле гидравлическая проводимость очень низка, и эта зона оказывает наибольшее сопротивление движению воды. Гидравлическая проводимость открытых поверхностей клеточных стенок внутри листа также понижена там, где произошло опробковение, но в значительно меньшей степени. [c.236]

Свидетельства в пользу этой точки зрения основывались главным образом на наблюдениях, показывающих, что интенсивность транспирации может колебаться без видимых изменений в степени открытия устьиц. Позже [466, 491, 693] было высказано предположение, что наблюдаемые явления можно объяснить действием других факторов. В опытах с введением коллоидного золота в транспирационный поток ]237] было показано, что вода поступает непосредственно к границе клеточных стенок и воздуха. Размеры межфибриллярных пространств также свидетельствуют о малой вероятности отступания менисков в глубь клеточных стенок. Вследствие опробковения внешних слоев клеточных стенок мезофилла [663, 664] пустоты в них имеют размеры порядка 1 ммк, так что не следует ожидать их осушения (см. уравнение 1.9 и табл. 3) до тех пор, пока водный потенциал не понизится до величины, при которой растение должно погибнуть. Слейчер [693] 18 1391 [c.273]

Из предыдущего раздела ясно, однако, что даже измерение водного потенциала листа не всегда позволяет определить водный потенциал на испаряющих поверхностях 4 surf. В пределах кутикулярного проводящего пути существует, вероятно, значительный градиент водного потенциала в кутинизированных наружных клеточных стенках, и допущение, что Tsurf = приводит к объединению сопротивлений движению жидкости и пара в эквивалентное кутикулярное сопротивление движению пара. При этом вносится существенная ошибка в расчет действительной величины в тех случаях, когда компонент, связанный с паром, мал, так как, например, уменьшение относительной влажности воздуха е/е от 0,90 до 0,80 должно увеличить градиент концентрации пара только вдвое (если принять и 0), но оно может увеличить градиент водного потенциала в клеточных стенках на целый порядок. [c.274]

В отсутствие противодавления клеточной стенки поступление воды в клетку определяется водным потенциалом клетки (11зкл), в начальный момент времени равным осмотическому потенциа-лу (4 ) раствора, заполняющего вакуоль. Однако с проникновением воды в вакуоль ее объем увеличивается, вода разбавляет клеточный сок и клеточная стенка начинает испытывать давление. До каких пор будет вода поступать в вакуоль Если бы это поступление зависело только от осмотического потенциала, то теоретически оно могло бы продолжаться до бесконечности. Однако в действительности с увеличением объема вакуоли цитоплазма прижимается к клеточной стенке и возникает тургор-ное давление, а вместе с ним и равное ему по величине противодавление клеточной стенки на клеточное содержимое. > Под потенциалом давления (1)зд) понимают обычно именно противодавление клеточной стенки, но этот термин может обозначать и тургорное давление (равное первому по величине, но противоположное ему по знаку). Когда 1зд достигнет достаточно большой величины, дальнейший приток воды в вакуоль прекращается. Устанавливается динамическое равновесие, при котором суммарный поток воды равен нулю, т. е. количество воды в вакуоли не изменяется, хотя молекулы воды и продолжают быстро перемещаться через мембрану в обоих направлениях. При этом положительный потенциал давления полностью уравновешивает отрицательный осмотический потенциал и клетка перестает поглощать воду в таком состоянии ее водный потенциал равен нулю. [c.173]

В любой данный момент времени водный потенциал клетки определяется разностью между потенциалом давления и осмотическим потенциалом. Если дать клетке возможность в дистиллированной воде достичь максимального тургора, то она будет поглощать воду до тех пор, пока ilJfl не сравняется с г1зя, т. е. 1])кл не станет равным нулю. После этого она более уже не сможет поглотить воду ни из какого раствора. Не сможет она и отнять ее от другой клетки. Если рядом окажутся две клетки с разными г1зкл, то вода через клеточную стенку будет переходить из клетки с более высоким (менее отрицательным) г1з кл В клетку с более низким (более отрицательным) 1)3кл. [c.173]

Вода движется в растении по градиенту водного потенциала. Вода, поглощенная корневыми волосками и другими клетками эпидермиса, из клеток внешней части корня перемещается к ксилеме, занимающей центральную часть корня (рис. 6.8). Главным путем диффузии воды во внешней части корня служит апо-пласт —. непрерывная совокупность клеточных стенок. Однако в эндодерме (цилиндрическом слое клеток, окружающем проводящую ткань) свободная диффузия по клеточным стенкам наталкивается на преграду — водонепроницаемый пробковый слой пояска Каспари. Вода должна изменить здесь свой путь и пройти сквозь мембрану и протопласт клеток эндодермы, играющей, таким образом, роль осмотического барьера между корой корня и его центральным цилиндром. У однодольных пробковеют также и внутренние тангенциальные стенки клеток, но эти стенки пронизаны порами, по которым, как по каналам, может проходить вода. [c.180]

В клетке вакуоль осмотически -насасывает воду, увеличивается в объеме и прижимает клеточное содержимое к клеточной стенке тургорное давление, или грд). Когда противодавление клеточной стенки на клеточ1ное содержимое достаточно велико для того, чтобы уравновесить осмотический потенциал клеточного сока, вода в клетку не поступает, потому что в этих условиях водный потенциал клетки и водный потенциал вне клетки равны. [c.202]

Рис. 7.8. А. Устройство, используемое для измерения трансмембранного потенциала растительных клеток. Обратите внимание, что микроэлектрод с суженным концом проникает в вакуоль, тогда как более крупный электрод сравнения находится в растворе, омывающем ткань. Ионы могут свободно диффундировать между омывающим раствором и клеточными стенками. (С любезного разрешения R. Ra usen, University of Maryland.)

Следовательно, поступление воды из почвы в растение контролируется двумя группами факторов во-первых, теми, которые определяют разность водного потенциала в системе почва — растение, и, во-вторых, теми, которые определяют сопротивление почвы (строение почвенного профиля, состав твердой фазы и т. д.) и сопротивление корней (кутинизация, суберинизация клеточных стенок, проницаемость плазматических мембран) водному току из почвенной среды в корневую систему, т. е. поступление воды из почвы в растение определяется разностью водного потенциала между почвой и растением и барьерными факторами, возникающими на пути транспорта [242]. Иными словами, здесь применимы те же самые формулы, которые приведены в главе III [c.112]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология