Целлюлоза цветные реакции

Присутствие лигнина в одревесневших клеточных стенках, целлюлозных волокнах и бумаге качественно определяют с помощью цветных реакций. Цветные реакции используют также для проверки полноты делигнификации при определении в древесине холоцеллюлозы и целлюлозы. Лигнины природный и выделенные дают множество цветных реакций (известно уже более 150) с фенолами, нафтолами, ароматическими аминами, фуранами, пиранами и некоторыми неорганическими реагентами. [c.373]

Многочисленные анатомические исследования различных видов древесины в процессе ее развития показали, что молодые клетки вблизи камбия не содержат лигнина [1]. В дальнейшем, по мере утолщения клеточных стенок, относительное количество лигнина в них постепенно возрастает. Однако наибольшее количество лигнина откладывается в последней стадии развития клеток, перед их отмиранием. В этот период содержание лигнина в древесине достигает предельной величины, характерной для созревшей, мертвой ткани. Содержание полисахаридов, состоящих из пектиновых веществ, гемицеллюлоз и целлюлозы, в противоположность лигнину по мере старения клеток постепенно уменьшается (рис. 31). Необходимо, однако, учитывать, что на рис. 31 содержание отдельных компонентов в клеточных стенках трахеид приведено в относительных процентах. В действительности по мере увеличения толщины клеточных стенок в них откладываются слои неодинакового состава. Кроме того, отсутствовавший в межклетном, веществе и первичной оболочке лигнин к концу развития клетки откладывается там в наибольших количествах. Это наблюдение, сделанное с помощью цветных реакций на лигнин и углеводы, было подтверждено прямым определением содержания лигнина в срединной пластинке древесины дугласовой пихты, выделенной с помощью микроманипулятора [2]. В последней было найдено около 71% лигнина при среднем содержании его в древесине 28%. Предсуществование части гемицеллюлоз в клетках молодой древесины до их лигнификации, а также возникновение из камбия лубяной ткани, содержащей пектиновые вещества, целлюлозу и гемицеллюлозы, которые в живой ткани не лигнифицируются, дает основание предполагать, что основная масса лигнина и гемицеллюлоз откладывается в клеточных стенках на разных стадиях их развития. [c.289]

Ацетат целлюлозы дает цветную реакцию с нитратом лантана. [c.201]

Следовые количества серебра и некоторых других металлов можно концентрировать, используя в качестве коллектора окси-целлюлозу. Анализируемый раствор взбалтывают с этим коллектором, причем поглощается до 10 мкг серебра. Серебро затем можно обнаружить обычными цветными реакциями [1441]. Если добавить раствор, содержащий серебро, к щелочной суспензии Се(ОН)з, то она становится коричневой или черной. На этой основе предложен следующий метод обнаружения серебра [650]. [c.57]

Препаративное выделение и накопительная хроматография. Обычно после обнаружения природных ростовых веществ с помощью хроматографии на бумаге, цветных реакций и биотестов возникает необходимость выделить некоторые наиболее активные ростовые вещества в больщих количествах — порядка нескольких десятков миллиграмм (для фенольных ингибиторов) или нескольких долей миллиграмма (для ИУК и абсцизовой кислоты), очистить их от примесей других веществ и дать им более полные физико-химическую и биологическую характеристики. Для этой цели обычно используют хроматографическое разделение на колонках с адсорбентом типа капрона, силикагеля, целлюлозы или на бумаге Ватман 3 ММ. [c.34]

По сравнению с целлюлозой лигнин гораздо более устойчив при гидролизе, но легче разрушается прн окислении. Со многими фенолами и аминами лигнин дает в кислой среде характерные цветные реакции. [c.234]

При нагревании целлюлозы она разлагается и получившийся при этом перегретый пар вступает в реакцию с неизмененной целлюлозой, образуя гексозу, которая в свою очередь гидролизуется с образованием со-оксиметилфурфурола. Последний летуч с паром и может быть обнаружен в газовой фазе так же, как и фурфурол, с помощью чувствительной цветной реакции с раствором анилина в уксусной кислоте (стр. 591). [c.694]

Разработан хороший метод обнаружения целлюлозы и ее метил-, этил- и ацетилпроизводных, а также углеводов, основанный на образовании ацетальдегида (вариант III) при пиролизе этих веществ . Альдегид обнаруживают в паровой фазе по цветной реакции с нитропруссидом натрия, содержащим морфолин (стр. 444). [c.695]

Азотно-спиртовой метод основан на обработке древесины смесью концентрированной азотной кислоты и этилового спирта (1 4) при кипячении. Лигнин при этом нитруется (см. с. 137), окисляется и переходит в раствор спирта. Гемицеллюлозы в большей своей части гидролизуются (примерно на две трети). Предварительная экстракция древесины не требуется, так как экстрактивные вещества удаляются спиртом в ходе анализа. Спиртовая среда ослабляет при этом окисляющее и гидролизующее действие азотной кислоты на целлюлозу. Конец делигнификации определяют с помощью качественных цветных реакций на лигнин. [c.118]

Ацетат целлюлозы можно также открыть цветной реакцией с нитратом лантана . [c.242]

Этилцеллюлоза, как все производные целлюлозы, дает цветную реакцию с уксуснокислым анилином. [c.248]

Для анализа прессизделий из целлюлозных пластических масс, содержащих наполнители, предложен простой и быстрый метод, основанный на применении цветных реакций, характерных для группы целлюлозы. По этому методу можно определить нитрат целлюлозы, ацетат целлюлозы, ацетобутират целлюлозы, метил-и этилцеллюлозу . [c.258]

Двумерное разделение аминокислот на слоях целлюлозы. Величины / /ХЮО и цветные реакции [54] [c.486]

В настоящее время отдают предпочтение колориметрическим и спектрофотометрическим методам определения содержания фурфурола в дистиллятах, основанных либо на избирательных цветных реакциях фурфурола, либо на его способности поглощать ультрафиолетовые лучи. Эти методы особенно удобны для анализа образцов с низким содержанием пентозанов, когда обычные методы не дают достаточной точности. Поэтому эти методы находят широкое применение главным образом при анализе целлюлозы. [c.103]

Лигнин определяют при помощи характерных для него цветных реакций с фенолами или с ароматическими аминами в присутствии соляной кислоты. Количество лигнина обычно определяют, удалив целлюлозу и гемицеллюлозу с помощью концентрированных H2SO4 или НС1. Другие методы определения лигнина построены на учете количества метоксильных групп, содержащихся в исследуемом материале. [c.176]

Полисахариды в коллоидных дисперсиях дают положительную реакцию Молиша. С раствором иода крахмал дает синюю окраску, высшие декстрины — красноватую, гликоген — от темно-коричневой до винно-красной. Целлюлоза и низкомолекулярные декстрины не дают цветной реакции с иодом. [c.257]

С другой стороны, Адлер с сотрудниками [3] показали, что чистый конифериловый альдегид и его метиловый эфир также дают характерную цветную реакцию (желтую, переходящую в зеленую) с концентрированной соляной кислотой. Поэтому они при-щли к выводу о присутствии группы кониферилового альдегида в молекуле лигнина. Однако покраснение сульфитных целлюлоз было приписано образованию ортохинонных групп, вероятно, — в остаточном лигнине (см. выше). [c.74]

Энзиматически выделенные лигнины во всех случаях были идентичны растворимому природному лигнину из тех же пород древесины в отношении их элементарного состава, производных, растворимости, цветных реакций и спектров ультрафиолетового и инфракрасного поглощения. На основании этого Норд сделал вывод, что растворимый природный лигнин, по крайней мере хвойных пород древесины, может считаться представительным для общего содержания лигнина в древесине. По-видимому, лигнин каждого вида является единообразным химическим веществом или группой веществ, большая часть которых ( экстра-природный лигнин), ассоциировано с целлюлозой так, что возможно его экстрагирование из здоровой древесины посредством инертных растворителей, таких, как этиловый спирт [129]. [c.97]

О том, что полисахариды могут играть определенную роль в образовании лигнина, свидетельствует работа Зигеля [60]. Изучалась реакция окисления эвгенола пероксидазой и Н2О2 в присутствии фильтровальной бумаги или метилцеллюлозы. В отсутствие целлюлозы образовался продукт, полностью растворимый в хлороформе, но не дающий цветной реакции на лигнин. В присутствии полисахаридов образуется продукт, нерастворимый в хлороформе, осаждаемый или на фильтровальную бумагу, или вместе с ме-тилцеллюлозой. Продукт, включенный в целлюлозу в количестве 12—15 мг на 1 г бумаги, нерастворим в спирте и дает цветные реакции на лигнин. Зигель предполагает, что полисахариды в клеточных стенках растений воздействуют каталитически на увгенол и только в этом случае образуется полимерный лигнин. [c.183]

Метод основан на визуальном определении содержания тяжелых металлов в хроматографической зоне по цветной реакции, возникающей на слое модифицированного сорбента, нанесенного на пластинку, после разделения металлов методом тонкослойной хроматографии (ТСХ). В качестве сорбента используют микрокристаллическую целлюлозу, содержащую группы азопирокатехина, которые взаимодействуют с рядом металлов с образованием окрашенных зон при различных pH [c.95]

Для количественного определения алкалоидов спорыньи с хроматограмм удобен способ, при котором флуоресцирующие пятна вырезают из хроматограмм и обрабатывают в пробирке раствором п-диметиламинобензальдегида в серной кислоте, разбавленной таким количеством воды, чтобы бумага распадалась на волокна, но не обугливалась. Одновременно происходят цветная реакция и элюирование алкалоидов из волокон целлюлозы. Раствор, окрашенный в синий цвет, фильтруют и фотометрируют. Расчет делают по калибровочному графику, построенному по известной концентрации алкалоидог5. Точность определения этим методом равна точности фотометрического метода ( 4%). [c.130]

В общих чертах метод представляет собой следующее незначительное количество раствора исследуемого вещества наносят пятнами на определенное место (линию стйрта) нижнего конца полосы специальной фильтровальной бумаги, затем эти полосы подвешивают в камерах так, чтобы их нижние концы, у которых нанесены капли веществ, были погружены в насыщенный водой, но не смешивающийся с ней растворитель. Подвижная фаза (растворитель) поглощается бумагой и передвигается кверху, проходя через пятна вещества. Вещества, в зависимости от их распределения между подвижной и неподвижной фазами, в данном случае влажной целлюлозой, передвигаются с различной скоростью вместе с растворителем. Через какое-то время, как только фронт растворителя почти достигнет верхнего среза бумаги, бумажную полосу вы-нимают из камеры, отмечают положение фронта растворителя и при помощи цветной реакции проявляют (делают видимыми) пятна вещества. Мерой скорости передвижения веществ является показатель Rf, определяющийся по следующей формуле [c.204]

Методика. Готовят 2 пластинки размером 20X20 см (см. работу 34). Для приготовления суспензии носителя берут 15 г порошка целлюлозы и 70 мл дистиллированной воды. Смесь гомогенизируют в колбе на 100 мл с помощью электромешалки. После приготовления пластинок их высушивают, и на стартовую линию слоя сорбента наносят каплю 0,1 мл анализируемого раствора, содержащего смесь катионов (см. работу 34). После подсушивания пятен пластинку помещают в разделительную камеру, содержащую растворитель — смесь 58 мл диоксана, 12 мл концентрированной соляной кислоты (пл. 1,19), 30 мл дистиллированной воды. Оставляют пластинку в камере на 60 мин. Затем ее вынимают, высушивают, насыщают парами аммиака, опрыскивают этанольным раствором 8-оксихинолина и рассматривают под УФ-излучением. Таким же способом получают хроматограммы стандартных растворов и сравнивают полученные значения 7 / двух хроматограмм. Цветные реакции ионов и значения Rf для них приведены в табл. 19. [c.182]

Естественно, что смеси кубовых красителей труднее идентифицировать и методы таких исследований еще мало изучены. Обычно для определения гетерогенности красителей порошкообразный краситель распыливают на поверхности концентрированной серной кислоты, налитой в фарфоровую чашку появление нескольких цветов в кислоте свидетельствует о наличии разных красителей. Однако ясно, что результаты этой пробы зависят от того, насколько тщательно смешаны красители если при совместном диспергировании красителей применялся эффективный метод получения специализированной формы, то такая проба дает отрицательный результат. Цветные реакции. в сочетании с выкрасками искусственными смесями предполагаемых компонентов позволяют ориентировочно судить о составе смеси, но для точной идентификации индивидуальных красителей их необходимо предварительно разделить. Иногда разделение можно осуществить фракционным осаждением при разбавлении сернокислых растворов, основанном на различии в основности красителей. Общим приемлемым способом разделения кубовых красителей является хроматографирование на фильтровальной бумаге или на колонке порошкообразной целлюлозы с применением для растворения красителей и проявления хроматограммы водно1о тетраметиленпентамина, содержащего гидросульфит натрия (см. также гл. XLII). [c.996]

Необходимость определения платиновых металлов в присутствии больших количеств сопутствующих элементов довольно часто возникает при анализе природных и промышленных объектов. В работе [22] предложен новый быстрый, чувствительный и селективный метод обнаружения микрограммовых количеств палладия в растворах сложного состава — сульфатных растворах N1, Ре, Со. Метод основан на применении в ТСХ модифицированной целлюлозы, содержащей функционально-аналитические группы реагентов — бисазоза-мещенных хромотроповой кислоты. Селективность метода обусловлена специфичностью взаимодействия элементов с введенными в целлюлозу хелатообразующими группами. На тонком слое целлюлозы на пластинке одновременно происходит отделение палладия от неблагородных металлов и развитие цветной реакции с ним, что позволяет обнаружить зону палладия на хроматограмме без опрыскивания и определить его количество по величине и интенсивности пятна визуально или денситометрически. [c.69]

В работах [47—53] описано разделение аминокислот на тонких слоях целлюлозы. Обычно в этом случае вполне приемлемы растворители и реактивы для опрыскивания, применяемые в хроматографии на бумаге. Фон Арке и Негер [54] разработали методику разделения и идентификации 52 амйнокислот (табл. 17.3) на слоях целлюлозы с четырьмя смесями растворителей с применением пяти цветных реакций. С этой целью были приготовлены шесть пластинок раз.мером 20x20 см, покрытых целлюлозой (всего авторы использовали четыре цветные реакции при двумерной комбинации / и //), Пластинки сушили 12 ч при комнатной температуре в горизонтальном положении и наносили водный раствор пробы в угол пластинки на расстоянии 25 мм от края. Объем пробы не должен превышать 1 мкл, а общее количество данной аминокислоты не должно превышать 10 мкг. [c.484]

Значения / /ХЮО и gX100 водорастворимых антибиотиков, полученные на целлюлозе со смесью пропанол—пиридин—уксусная кислота—вода (15 10 3 12) и их цветные реакции [2] [c.530]

Ван Сумере и др. [33] опубликовали значения Rf 93 фенолов и кумаринов, полученные на слоях силикагеля и смеси силикагель—целлюлоза (1 1) при элюировании смесями толуол— этилформиат—муравьиная кислота (5 4 1) и хлороформ— уксусная кислота—вода (4 1 1). Предварительная обработка слоев адсорбента водяным паром улучшает разделение некоторых соединений. В работе указан также цвет пятен, наблюдаемый при обработке хроматограмм диазотированным л-нитро-анилнном (реактив Т-180) па слоях со смешанным адсорбентом цветная реакция шла лучше. Грант и Уэттер [34] хроматографировали содержащиеся в Lotus вторичные фенольные соединения на слоях силикагеля, полиамида и целлюлозы с 30 различными растворителями. На целлюлозе и полиамиде разделение оказалось неудовлетворительным лучшие результаты получены на силикагеле при сочетании многократного и двустадийного элюирования пробу элюировали сначала дважды смесью циклогексан—этилацетат (1 1) на расстояние 15 см, затем смесью метанол—хлороформ (3 7) на расстояние 7,50 см. [c.244]

Дасс и Уивер [71] также хроматографировали 55 фенольных соединений растительного происхождения на целлюлозе ММ 300 и микрокристаллической целлюлозе, используя следующие три системы растворителей вода—муравьиная кислота (98 2), н-амиловый спирт—уксусная кислота—вода (10 6 5), а также бензол—пропионовая кислота—вода (4 9 3). Авторы приводят цветные реакции с шестью обнаруживающими реактивами. Халук и др. [72] использовали для разделения фенолокислот смеси н-бутанол—пиридин—вода (14 3 3), метилэтилкетон—вода—диэтиламин (921 77 2) и 30 %-ную уксусную кислоту. Они применяли также двумерное разделение, причем сначала элюировали пробу 30 %-ной уксусной кислотой, а затем проводили уже в другом направлении электрофорез при напряжении 1500 В и токе 30 мА, используя буферный раствор (pH 5,3), представлявший собой смесь пиридин—уксусная кислота—вода (5 2 493). Йошек и Мюллер [73] хроматографировали 44 фенола на целлюлозе 300 Ор254 со смесью бензол— метанол—уксусная кислота (35 4 2) (двукратное элюирова ние) и нижней фазой смеси бензол—н-бутанол—вода (9 1 10) [c.250]

Цетльмейсль и Хейуорт [102] составили таблицу результатов разделения на целлюлозе различных комбинаций из 21 катиона, а Каушик и Джохри [103] обобщили результаты разделения на силикагеле О 27 ионов, указав в том числе значения / /, цветные реакции и пределы обнаружения при употреблении обнаруживающего реактива Т-215. [c.498]