Среда для роста Т-клеток

Однако культивирование одной или нескольких клеток связано с определенными трудностями, состоящими в том, что одиночная клетка живет, но не делится в тех условиях, которые разработаны для нормального роста и размножения клеток каллусной ткани. Поэтому при культивировании одиночных клеток потребовалась выработка специальных методов. Все они основаны на использовании так называемого кондиционирующего фактора — метаболитов, выделяемых в среду делящимися клетками. Когда на питательную среду высаживается одна клетка или небольшое их количество, они не делятся, так как вьщеляемого кондиционирующего фактора не хватает для индукции деления. Следовательно, необходимо повысить концентрацию фактора в питательной среде. Этой цели служат следующие методы [c.167]

В благоприятных условиях, т. е. в среде, где есть водный раствор питательных веществ, а также соответствующие физические и химические факторы (температура, pH, О2) в клетках микроорганизмов начинаются ферментативные процессы, обмен веществ с окружающей средой. Из веществ, проникших в клетку, образуются внутриклеточные вещества и структурные элементы. Одновременно идут процессы распада веществ — диссимиляции. Если анаболические процессы преобладают над катаболическими, наблюдается рост клетки, увеличение ее размеров. Достигнув определенных размеров в соответствующей фазе развития, клетка может начать размножаться. Скорость размножения зависит как от видовых свойств культуры, так и от условий окружающей среды. В благоприятных условиях каждое следующее поколение у дрожжевых клеток появляется через часовой интервал, а у некоторых бактерий даже через каждые 20—40 мин. Однако обычно размножение происходит гораздо медленнее, так как в среде роста всегда есть ограничивающие (лимитирующие) факторы нехватка какого-либо питательного вещества, изменение температуры, pH, образование токсических веществ, избыток клеточной массы на единицу объема и т. д. [c.61]

Указанные недостатки устраняются при непрерывном культивировании, методы которого разработали С. В. Лебедев, А. А. Андреев, Н. Д. Иерусалимский и другие ученые. Из непрерывных процессов лучше всего разработан метод глубинной ферментации. В этом случае в ферментатор с культурой продуцента непрерывным потоком подается стерильная среда, а из него непрерывно вытекает готовая культуральная жидкость. Процесс может быть гомо- и гетерогенно непрерывным. При гомогенно непрерывном процессе в аппарате, где идет интенсивное перемешивание, все параметры (концентрация питательных веществ, клеточный титр и др.) постоянны во времени. При гетерогенно непрерывном процессе несколько ферментаторов соединены вместе и образуют каскад. Питательная среда поступает в первый ферментатор и готовая культуральная жидкость вытекает из последнего ферментатора. Культивирование микроорганизмов в протоке через систему трубок также идет по принципу гетерогенно непрерывного процесса ферментации. В этом случае имеет место непрерывный поток питательной среды, но клетки не обеспечены постоянными условиями роста (сколько аппаратов, столько и условий культивирования). [c.69]

Еще более удивителен тот факт, что под влиянием факторов внешней среды в клетке может быть запущена иная программа развития, связанная с активацией дополнительных генов и существенной перестройкой всей клетки. Примером может служить образование спор у некоторых бактерий (гл. 1, разд. А, 8), происходящее при неблагоприятных для вегетативного роста условиях внешней среды. [c.353]

Нередко, однако, и в экспоненциальной фазе роста клетки периодической культуры претерпевают изменения, так как постепенно изменяется среда уменьшается концентрация субстрата, увеличивается плотность клеточной суспензии и накапливаются продукты обмена. В связи [c.196]

Для больщинства применяемых инициаторов /э находится в пределах 0,3-0,8, т. е. практически всегда /3 < 1,0. Такое снижение активности инициатора обусловлено "эффектом клетки" растворитель "захватывает" свободные радикалы и замедляет их диффузию в реакционную среду. В "клетке" свободнорадикальные частицы могут рекомбинировать между собой, взаимодействовать с молекулами растворителя и т. п., в результате чего уменьшается количество активных частиц, инициирующих рост полимерной цепи. Значение /д изменяется в зависимости от среды природы и количества инициатора, мономера, растворителя и т. д. [c.220]

Кондиционированная среда (КС) — среда, в которой выращивались миеломные клетки в логарифмической стадии роста. Клетки удаляют центрифугированием в течение 8 мин при 800 об/мин. [c.311]

Ранее многие исследователи считали, что скорость роста регулируется изменением клеточного осмотического давления. Действительно, как будет показано ниже (см. раздел VI), скорость растяжения клетки является линейной функцией ее осмотического давления. Однако у нас практически нет доказательств того, что именно колебания осмотического давления играют роль физиологического механизма, регулирующего скорость роста. Напротив, осмотическое давление клеток, как правило, остается относительно постоянным в процессе роста к.тетки. Осмотическое давление поддерживается во время роста на постоянном уровне отчасти благодаря взаимопревращениям крахмала и сахара внутри клетки, отчасти же за счет поглощения органических веществ (особенно сахаров) и неорганических ионов из окружающей среды. В клетках тканей, отделенных от растения, осмотическое давление во время роста падает по мере насасывания воды, если в инкубационную среду не добавлен сахар или ионы калия. [c.508]

Какова бы ни была функция клеточного старения, есть много данных о гом, что на этот процесс сильно влияют факторы внеклеточной среды. Папример, эпидермальные клетки из кожи ребенка стареют примерно после 50 циклов деления, если в среде отсутствует фактор роста эпидермиса, и после 150 циклов, если этот фактор имеется. Бессмертные клетки ЗТЗ проявляют признаки старения при недостатке факторов роста. Клетки от нормальных мышиных эмбрионов могут продолжать делиться бесконечно без малейших признаков старения, если их поместить в химическую среду определенного состава, содержащую вместо сыворотки набор очищенных факторов роста добавление же сыворотки приводит к остановке пролиферации. Это позволяет предположить, что старение частично обусловлено какими-то компонентами сыворотки, которые тормозят пролиферацию клеток, перевешивая действие факторов роста. [c.424]

Помимо энергетических затрат на биосинтетические процессы, связанные с ростом, определенная часть клеточной энергии всегда тратится на процессы, не связанные непосредственно с ростом. Последние получили название процессов поддержания жизнедеятельности. К специфическим функциям поддержания жизнедеятельности относятся обновление клеточного материала, осмотическая работа, обеспечивающая поддержание концентрационных градиентов между клеткой и внешней средой, подвижность клетки и др. Энергию, расходующуюся на осуществление перечисленных функций, обозначают как энергию поддержания жизнедеятельности. [c.107]

Культура-нянька — рост клетки или клеток на подлежащей культуре различного происхождения, которая в свою очередь находится в контакте с культуральной средой. Культивируемая клетка или ткань может быть отделена от питательного слоя пористым материалом — фильтрованной бумагой или мембранными фильтрами. [c.495]

Когда субстратом для роста клетки служит глюкоза, этот сахар используется для синтеза всех клеточных компонентов, содержащих глюкозу, рибозу, дезоксирибозу и другие производные сахаров. В этом случае анаплеротические реакции обеспечивают прежде всего бесперебойную работу цикла трикарбоновых кислот. При росте микроорганизмов на среде с лактатом, пируватом, ацетатом, глиоксилатом и другими углеродными соединениями дополнительные метаболические пути необходимы не только для поддержания цикла трикарбоновых кислот, но и для образования промежуточных продуктов, используемых при биосинтезе сахаров (глюконеогенезе). [c.248]

Ранее мы рассмотрели возможности, которыми располагает клетка для приспособления внутриклеточной концентрации ферментов к нуждам метаболизма. Путем синтеза новых ферментов или разбавления уже имеющихся (в результате роста) клетки могут лишь медленно адаптироваться к измененным условиям среды. Более быстрое приспособление клетки к резко меняющейся метаболической ситуации достигается путем изменения каталитической активности ферментов. [c.486]

П. ВЛИЯНИЕ НА РОСТ КЛЕТКИ НЕКОТОРЫХ ФАКТОРОВ ВНЕШНЕЙ СРЕДЫ [c.518]

VII. Влияние на рост клетки некоторых факторов внешней среды..........518 [c.623]

Методика идентификации с помощью ПГХ достаточно проста по сравнению с традиционными методами исследования микроорганизмов и требует значительно меньше затрат времени. При идентификации методом ПГХ используют экстракты культур или непосредственно сухие клетки или живые субстраты, которые помещают в пиролитическое устройство на поверхность термоэлемента или в стеклянный капилляр (ампуле) и подвергают пиролизу. Было показано, что микроорганизмы дают характерный набор продуктов пиролиза, по которым можно провести дифференциацию путем простого сравнения пирограмм исследуемых и известных микроорганизмов, при этом во многих случаях необходимо учитывать возраст культуры и среду роста микроорганизмов. Хорошая воспроизводимость пирограмм позволяет проводить идентификацию на уровне видов и даже штаммов, при этом благодаря чувствительности метода для идентификации достаточно одной колонии микроорганизмов. [c.214]

По достижении предельного роста клетка начинает размножаться. Большинство бактерий размножается делением в середине клетки появляется перегородка, которая разделяет клетку на две равные части. При благоприятных условиях клетка может делиться через каждые 20—30 мин. По мере истощения питательных веществ в среде размножение бактерий замедляется, а затем прекращается, так как на клетку вредно влияют продукты обмена самой клетки. [c.10]

Следствием такой ситуации является тенденция к уменьшению размеров микробных клеток (особенно к концу периода регулярного роста). В соответствии с закономерностями, описываемыми уравнением (1.5), это обусловлено тем, что при постоянстве параметра К, характеризующего устойчивость внутренних структур клетки, снижается величина V, определяющая скорость поглощения компонентов питательной среды через поверхность микробной клетки. Обращаясь к зависимостям (1.5) — (1.8), легко показать, что рост клетки будет прекращаться при меньших ее размерах (значениях М), чем это имеет место в начале фазы регулярного роста в условиях высоких концентраций компонентов питательной среды. Тем не менее снижение концентрации компонентов питательной среды хотя и влияет на скорость процессов внутриклеточного синтеза, но не так, как это можно было бы ожидать, исходя из закона действующих масс. Определенное сглаживающее или буферное воздействие оказывает автономность узкого места цепи метаболизма, а также общая система саморегуляции, контролирующая деятельность ферментов и управляющая процессами обмена. Важно отметить, что содержание органелл в микробной клетке и в первую очередь фракции рибосомальной РНК (в пересчете на сухой вес биомассы, но не на одну клетку ), возрастающее в начальный период роста популяции, остается постоянным в фазе экспоненциального роста. [c.38]

Приведенные экспериментальные материалы по проверке адекватности предложенной модели роста относятся к достаточно простому варианту культивирования как по поставленной задаче (накопление биомассы популяции), так и по самой исследуемой системе (полусинтетическая питательная среда — животные клетки). Тем не менее полученные в данном случае результаты, достаточно четко подтверждающие справедливость основных положений модели, дают все основания полагать, что она окажется справедливой и для других, пусть более сложных, систем. [c.331]

Требования к питательным веществам. Типы сред. Микробная клетка содержит в среднем, % по массе углерода — 50, азота — 14, фосфора — 3 и другие элементы. Для роста и развития микроорганизмов как в лабораторных условиях, так и в природе необходимо наличие питательных веществ для энергетических и конструктивных реакций. Требования разных групп микроорганизмов к источникам энергии и химическим элементам определяются их метаболическими возможностями. [c.71]

Влияние ауксинов на рост клетки достаточно хорошо изучено. Рост растяжением предполагает, что целлюлозный каркас клеточной стенки еще не приобрел окончательной жесткости. Увеличение размеров клетки осуществляется как за счет осмотического набухания (растягивания протопласта поступающей в него водой), так и за счет отложения нового материала стенки. Направление растяжения определяется, повидимому, ориентацией уже включенных в нее целлюлозных микрофибрилл. Мягкость стенки поддерживается кислотной средой и ауксинами. В 1973 г. четыре группы ученых независимо друг от друга продемонстрировали, что ауксины стимулируют секрецию протонов из цитоплазмы в клеточную стенку. Это приводит к снижению в ней pH (повышению кислотности) и, следовательно, к ее размягчению . Возможно, некий фермент с низким оптимумом pH разрывает связи в образующих стенку полисахаридах и тем самым обеспечивает растяжимость каркаса в целом. Кроме того, необходимо, чтобы в клетке поддерживался низкий осмотический потенциал и чтобы было достаточно воды, которая проникала бы в клетку и создавала высокое тургорное давление. Согласно более поздним данным, первичное действие ауксинов обусловлено, вероятно, не подкислением клеточной стенки не исключено, что они связываются с рецепторами в плазмалемме эпидермальных клеток, что приводит к изменениям генной активности. Эти изменения приводят к синтезу новых ферментов или других белков, имеющих непосредственное отношение к росту. [c.255]

Согласно Н. Г. Потапову (кафедра физиологии растений. <ЧГУ) поглощение ионов из внешней среды осуществляют клетки всех трех зон, имеющихся в точках роста корней меристемы, растяжения и дифференциации (зона корневых волосков, рис. 148). Дальнейшая судьба минеральных соединений, поглощенных клетками каждой из зон, неодинакова, что связано со свойственными им специфическими особенностями обмена веществ. [c.484]

Мутагенные факторы могут изменить нормальный биосинтез аминокислот в клетке, воздействуя на генетический аппарат. Если в результате облучения или воздействия химических факторов ДНК не дает информацию для синтеза фермента и в клетке не синтезируется, например фермент гомосериндегидроге-наза, катализирующий превращение полуальдегида аспарагиновой кислоты в гомосерин, то клетка может синтезировать необходимые для своего существования белки только в том случае, если в питательной среде уже содержится готовый гомосерин. Так как аспарагиновая кислота является исходным пунктом биосинтеза не только гомосерина, но и треонина, изолейцина, метионина, а также лизина, то отсутствие упомянутого фермента влияет на биосинтез всех этих аминокислот. Прекращение биосинтеза гомосерина одновременно прекращает биосинтез треонина, изолейцина и метионина, поэтому эти аминокислоты также должны содержаться в среде роста данной культуры. В данных условиях весь ход биосинтеза аминокислот в клетке идет в направлении от аспарагиновой кислоты к лизину. [c.158]

Удаление бора тормозило также отдельные фазы роста клетки. Ослабление клеточной активности на определенной фазе роста клетки, вызванное временным отсутствием бора, повышало устойчивость к излучению. Чем больше фаза клеточной активности зависит от бора, тем резче она реагирует на облучение и более устойчива к нему при удалении из среды бора. [c.52]

Обычно в средах, используемых в лаборатории, за увеличение ЕЬ в основном ответствен кислород при высоких положительных значениях ЕЬ, обусловленных присутствием растворенного кислорода, подавляется рост всех анаэробных бактерий. В то же время положительные значения ЕЬ, обусловленные присутствием в среде других веществ, могут не препятствовать росту даже строгих анаэробов [30, 36]. Устойчивость к ЕЬ разных анаэробных бактерий различна. Однако в стандартной среде рост большинства анаэробных бактерий подавляется при величинах ЕЬ выше —100 мВ. Некоторые из них не растут при потенциале выше —330 мВ теоретическая концентрация кислорода при этом значении ЕЬ составляет 1,48-10 молекул на 1 л [6]. Даже при потенциале —140 мВ концентрация кислорода составляет только 1,5-10 молекул на 1 л [Ю], т. е. менее 1 молекулы кислорода на клетку для многих бактериальных культур. Это показывает, что для выращивания строгих анаэробов важно создание более восстановительных условий, чем те, которые обеспечиваются простым удалением кислорода из культуральной среды. [c.182]

Технологическую основу БТС составляет процесс культивирования микроорганизмов — ферментация. При этом биофаза потребляет продукты питания — минеральную питательную среду и субстрат, перерабатывает их клеткой и выделяет в среду метаболиты. В результате обмена веществ происходит синтез внутриклеточных веществ, рост клетки (увеличение биомассы) и ее развитие (морфологические и физиологические изменения). Рост и развитие популяции микроорганизмов являются результатом сложнейшей совокупности физиологических, биохимических, генетических и других внутриклеточных процессов. Кроме того, важное место занимают процессы физической природы — перенос массы, энергии, количества движения из окружающей среды к клеткам и обратно. Таким образом, процесс ферментации можно рассматривать как определенным образом организованное развитие популяции микроорганизмов во взаимодействии с окружающей средой (ферментационной средой). Ферментационная среда, содержащая микробные клетки, компоненты минерального питания, субстрат, продукты клеточного метаболизма представляет собой многофазную систему, в которой протекают физиолого-биохимические и физико-химиче-ские процессы. К особенности данной среды относится сложный характер взаимодействий между ее составляющими. [c.51]

Дифференциация происходит в результате взаимодействия генетической программы и факторов окружающей среды. Вещества, которые эффективно стимулируют дифференциацию и рост клетки, называются трофическими факторами они могут продуцироваться органами-мишенями данного нейрона, окружающими его глиальными клетками или одним из иннервированных нейронов. Если мы вспомним ганглионарные клетки симпатических нервов, то увидим, что действие не нейрональных клеток осуществляется как в ортоградном (антероградном), так и ретроградном направлениях. Кроме такой межсинаптической регуляции, трофические факторы играют определенную роль в выживании клетки, миграции клетки, развитии нейритов (аксонов или дендритов) в направлении их мишеней, образовании и стабилизации специфических синапсов. Трофические факторы актив- [c.323]

Общей причиной автолиза для микроорганизмов любого таксона является исчерпание источников питания и энергии. Другая общая причина - накопление в среде роста продуктов метаболизма, токсичных для клетки. Но бывают ситуации, когда культура имеет достаток питания и клетки не выделяют токсичных веществ. Например, этот тип обмена характерен для автотрофно растущих водородокисляющих бактерий. Однако цикл развития их культур также завершается автолизом клеток. Побудительной причиной автолиза в этом случае является пороговое повышение уровня внеклеточных ауторегуляторов с функциями аутоиндукторов автолиза. К ним относятся факторы da бактерий и дрожжей и факторы AMI миксобактерий. Действующим началом тех и других являются свободные ненасыщенные жирные кислоты, которые дестабилизируют клеточные мембраны. [c.76]

В стационарной фазе клетки претерпевают существенные морфологические, биохимические и физиологические изменения. Характерные морфологические изменения - это укорочение и округление клеток, что контролируется морфогеном bol А. Клетки стационарной фазы приобретают ростовое преимущество , которое выражается в большей приспособленности к новой среде роста. Это адап- [c.90]

Метаболизм и метаболические пути. Как во время роста, так и в состоянии покоя вегетативные клетки нуждаются в постоянном притоке энергии. Живая клетка лредставля ет собой высокоорганизованную материю. Энергия необходима не только для создания такой организации, но и для ее поддержания. Эту энергию организм получает в процессе обмена веществ, или метаболизма, т.е. путем регулируемых превращений, которым различные вещества подвергаются внутри клеток. Источниками энергии служат питательные вещества, поступающие из внешней среды. В клетках эти вещества претерпевают ряд изменений в результате последовательных ферментативных реакций, образующих этапы определенных метаболических путей. Такие пути выполняют две главные функции они, во-первых, поставляют материалы-предшествен-ники для построения клеточных компонентов и, во-вторых, обеспечивают энергию для клеточных синтезов и других процессов, требующих затраты энергии. [c.214]

Регуляция испальзования субстратов. У некоторых водородных бактерий использование субстратов строго регулируется. Например, при автотрофном росте клетки Al aligenes eutrophus не содержат ферментов для расщепления фруктозы. Если такие клетки поместить в среду с фруктозой и инкубировать в аэробных условиях, то образуются ферменты пути Энтнера-Дудорова и клетки растут. Если, однако, инкубация происходит под газовой смесью, содержащей 80% Hj и 20% О2, то не наблюдается ни синтеза ферментов, ни роста клеток. Таким образом, молекулярный водород подавляет (репрессирует) образование ферментов, необходимых для катаболизма фруктозы. [c.360]

Мутанты, конститутивно образующие катаболические ферменты. Накопительные культуры такого рода мутантов можно получить путем частой смены субстратов. Если клетки конститутивно образуют ферменты, необходимые для использования субстрата А, то после переноса клеточной популяции с субстрата В на субстрат А они точас начинают расти с максимальной скоростью клеткам же индуцибельного дикого типа для достижения максимальной скорости роста необходима определенная лаг-фаза (чтобы синтезировать ферменты для роста на субстрате А). После ряда генераций клетки снова переносят на среду с субстратом В и дают им расти до тех пор, пока ферменты, участвующие в использовании субстрата А, не будут достаточно сильно разбавлены . После многократного повторения такой процедуры конститутивные мутанты сильно обгоняют в росте клетки дикого типа с индуцибельными ферментами. Таким путем были выделены, например, мутанты Е. соН, конститутивно образующие ферменты, необходимые для использования Лактозы. В других методах отбора пользуются таким приемом, как подавление индукции при помощи структурных аналогов субстрата. Метилтио алактозид может, например, подавить у Es heri hia oli индукцию й(а/ Оперона, вызываемую галактозой. [c.498]

Предпринимались различные попытки экспериментально определить тип репликации ДНК. Мы рассмотрим здесь эксперименты Мезельсона и Сталя, состоявшие в следующем 14 поколений Е. oli выращивались на среде, содержащей N , так что основная часть ДНК была помечена тяжелым азотом. Во время логарифмической фазы роста клетки быстро переносили [c.328]

В литературе приводятся многочисленные данные о связи синтеза рибосом, а также их функционирования с ростом мик-кробной клетки [26]. Исследования [27] свидетельствуют о связи температурного коэффициента скорости роста ряда микроорганизмов (грам-1юложительные и грам-отрицательные бактерии, кокки, актиномицеты) с нуклеотидным составом их суммарной клеточной РНК, состоящей на 80% из рибосомальной РНК- Прослежена также тесная связь между содержанием в клетках рибосом и скоростью роста микроорганизма, а также скорости синтеза рибосом со скоростью синтеза белка. При этом было четко показано, что изменение скорости синтеза общего белка клетки определяется не изменением скорости образования полипептид-ной цепочки, которая остается практически постоянной для каждого вида микроорганизма и условий культивирования, а определяется изменением числа рибосом в соответствии со скоростью роста клетки в различных фазах или с изменением состава питательной среды и режимов выращивания. Таким образом, наиболее вероятным компонентом клетки, поведение которого можно хотя бы отдаленно связать с поведением узкого места цепи метаболических процессов, является фракция рибосомальной РНК, контролирующая процесс роста микроорганизма [25, 28]. [c.25]

Как известно, в процессах микробиологического синтеза на образование единицы биомассы при определенных постоянных, условиях культивирования все необходимые компоненты питательной среды потребляются клетками в строго определенных соотношениях, взаимно дополняя друг друга в реакциях внутриклеточного метаболизма- Исчерпание какого-либо одного компонента сразу приостанавливает синтез внутриклеточных структур, что приводит либо к прекращению роста популяции, либс за счет изменения путей внутриклеточного синтеза к переходу на новый субстрат, который еще имеется в питательной среде. Однако второй путь хотя и приводит к дополнительному увеличению биомассы популяции, нельзя считать абсолютно приемлемым, так как в этом случае образующиеся целевые продукты биосинтеза могут отличаться по качеству. [c.69]

Как показано на рис. 5.1, предполагается, что в условиях нормального питания железом ([Fe] 10 М) транспортные лиганды пассивно направляются к поверхности клетки, где они могут захватывать железо из среды. Стенка клетки должна действовать как матрица, ограничивающая диффузию таких молекул неконтролируемое выделение в среду было бы расточительным для организмов, живущих в воде, но может быть полезно для питания организмов, обитающих в почве. Однако при низкой концентрации железа нарушение регуляторного контроля над биосинтезом деферрисидерохрома привело бы к его перепроизводству и, следовательно, акоплению в среде. Это могло бы обусловить образование очень небольшого количества железа в окружении, доступном для клетки возможно, это очень важно экологически для роста смешанных популяций в почве. [c.216]

Клетки вносят в колбу объемом 100 мл, содержащую 25 мл среды без радиоактивного фосфора, и инкубируют нри 37° в течение ночи при встряхивании. Радиоактивный фосфор вносят стерильной пастеровской пипеткой в колбу объемом 4 л, содержащую 1 л среды (см. выше). Затем в эту колбу вносят свежий посевной материал. Культуру выращивают, встряхивая ее при 37°. В конце логарифмической фазы роста клетки собирают центрифугированием, промывают и выделяют из них ДНК по методу Мармура [1, 2]. [c.173]

Этот метод применяют в том случае, если выделяемый микроорганизм не растет на твердой среде. При этом данный микроорганизм должен количественно преобладать в смешанной популяции. Готовят раствор смешанной культуры таким образом, чтобы при добавлении аликвот в большое число пробирок с питательной средой среднее число инокулированных бактерий было бы менее 0,05 на пробирку. Это достигается, например, при инокуляции 1-миллилитровых аликвот в 100 пробирок из 100 мл раствора, содержащего всего 5 бактерий. При инкубации в большинстве пробирок роста бактерий не происходит, но в те несколько пробирок, где наблюдается рост, вероятно, попала лишь одна бактерия (Р = 0,975). Чем меньше среднее число бактерий, инокулированных в пробирку, тем больше вероятность того, что культура выросла из единственной бактериальной клетки. Следовательно, в большинстве инокулированных пробирок роста быть не должно, тогда в тех нескольких пробирках, где рост наблюдается, вероятность инокулирования среды единственной клеткой очень высока. Обсуждение теоретических аспектов этого метода приводится в работе [51]. [c.323]

В комплексной среде бактериальные клетки часто используют имеющиеся субстраты последовательно. Присутствие определенных субстратов может привести к подавлению синтеза ферментов, участвующ%их в метаболизме других питательных веществ. В этом случае ферменты, катализирующие метаболизм некоторых веществ, начинают действовать лишь после того, как концентрация субстратов, репрессирующих их синтез, уменьшится в результате использования клетками. Регуляция физиологии бактерий приводит к изменениям кривой роста и появлению одной или нескольких переходных (т. е. временных) стационарных фаз. Такой ответ культуры на изменение состава среды называют диауксией. Классическим примером диауксии может служить рост Es heri hia oli в присутствии глюкозы и лактозы (рис. 10.2). Сначала происходит рост культуры за счет использова- [c.381]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология