Агар BMS, состав

Полиэлектролиты, содержащие кислотные группы, например —СООН, —ОЗОзН. К таким полиэлектролитам относятся агар, окисленный крахмал, пектин. В состав макромолекул агара входят группы —ОЗОзН, в молекулах окисленного крахмала и пектина есть группы —СООН. В некоторых полимерах нон водорода в этих группах заменен катионом металла. [c.260]

Печатание тканей (печать, набивка), узорчатое или одностороннее крашение. Принципиальной разницы между крашением печатанием (П.) с точки зрения механизма взаимод, красителя с субстратом нет. Существуют различия в требованиях, предъявляемых к красителям для П. и крашения. Водорастворимые красители должны иметь высокую р-римость, а нерастворимые - высокую дисперсность, т. к. концентрация красителя для П. должна быть значительней выше, чем в красильной ванне. В состав краски для П. входят краситель, загуститель (крах.мал, декстрин, агар-агар, акриловая эмульсия и др,) и разл, вспомогат, в-ва (катализатор, мягчитель и т,д,). От загустителя зависит степень фиксации красителя, четкость контура рисунка, устойчивость окраски и гриф текстильного материала. Фиксация красителей на волокне при П. происходит, как правило, при более высоких т-рах и в более жестких условиях, чем при крашении. Для П. можно использовать те же классы красителей, что и для крашения, однако практически используются только красители, имеющие высокую устойчивость к мокрым обработкам, т.к. после фиксации красителя требуется тщательная промывка. [c.503]

Агар-агар — растительный коллоид, получаемый из некоторых морских водорослей. В его состав входят главным образом полисахариды с ничтожным содержанием азотистых веществ. Желатина — кислый азотсодержащий продукт, добываемый путем выварки костей и хрящей. [c.58]

Учет количества грибов на агаровых средах. Колонии грибов на сусло-агаре или среде Чапека подсчитывают через двое суток инкубации. После семи дней определяют их родовой состав. [c.154]

Агар-агар — это эмульсоид, получаемый из морской водоросли, в состав сложной молекулы которого входят сульфогруппы и углеводные радикалы. Во многих отношениях он сходен с желатиной, но при данной концентрации его студни отличаются большей крепостью, а температура застудневания выше (рис. 7) кроме того, он менее чувствителен к изменениям pH. Он отличается большим гистерезисом застудневания температура плавления геля гораздо выше, чем температура застудневания. [c.245]

Содержание и выращивание культуры. Для пересева культуры в другой сосуд необходимо приготовить подходящую питательную среду. Известен ряд питательных смесей, причем они могут быть или жидкими, или отвержденными (гелеобразными), включая такую гелеобразную среду, ка с агар-агар. На языке микробиологов термин среда означает жидкую питательную среду, а агар — твердую (но совершенно не обязательно имеется в виду сам агар-агар). Многие культуральные среды имеются в продаже, включая как твердые среды [в культуральных пробирках или на культуральных пластинках (чашках Петри)], так и сухие смеси. Последние при растворении в воде превращаются в жидкие среды, которые надо стерилизовать. В каталоге АТСС приведены примеры типичных сред и их состав, а также указано, какую среду предпочтительно использовать для каждой культуры. [c.216]

Порядок выполнения работы. Для анализа готовят раствор, состав которого задается преподавателем. С целью подавления полярографических максимумов в раствор добавляют 1—2 мл 0,1%-ного раствора агар-агара или 2%-ного раствора желатина. Для удаления растворенного в воде кислорода. к нейтральным и щелочным растворам добавляют несколько миллилитров свежеприготовленного насыщенного раствора сульфита натрия. Через кислые растворы в течение 20 мин пропускают ток водорода от аппарата Киппа или специального электролизера. [c.365]

Состав среды мясо-пептонный агар — 500 мл. [c.82]

Естественные питательные среды. Их химический состав известен только приближенно. Это — продукты растительного и животного происхождения. Например, солод, фруктовые соки, мясные отвары, экстракты. Добавляя 10—15% желатины или 1,5—2% агар-агара, получают из жидких составных частей плотные питательные среды. К плотным естественным питательным средам относятся хлеб, картофель, морковь, рис и т. д. [c.26]

Второй этап в определении коли-титра состоит в том, что из тех посевов, где имеются явные признаки брожения (помутнение среды, образование кислоты и газа) делают высев на плотную питательную среду. Чаще всего используется фуксин-сульфитный агар (среда Эндо), в состав которой входит лактоза, основной фуксин и сернистокислый натрий. Готовая, застывшая в чашках среда имеет серовато-розоватый цвет, так как фуксин обесцвечивается и находится в лейкоформе. При выращивании кишечной палочки содержащаяся в среде Эндо лактоза сбраживается с образованием альдегида, который, взаимодействуя с обесцвеченным фуксином, переводит его в окрашенную и придает выросшим колониям ярко-красный цвет с металлическим оттенком. Таким образом, назначение бродильной пробы, являющейся первым этапом определения коли-титра, состоит в том, чтобы выявить присутствие кишечной палочки в определенных объемах воды, засеваемых на жидкие среды. Второй этап— высев на плотную диагностическую среду (среда Эндо) — [c.167]

Эта реакция известна очень давно, с начала XIX в,, однако до самого последнего времени ей не было дано удовлетворительного объяснения. Было установлено, что не только амилоза и амилопектин, входящие в состав крахмала, но и многие другие различные химические соединения дают подобную реакцию с иодом. Ясность в этот вопрос внесло только открытие нового класса веществ, названных соединениями включения и занимающих промежуточное положение между твердыми растворами внедрения и химическими соединениями. Соединения включения получаются при вхождении молекул одного индивидуального химического вещества в свободные полости внутри молекул (или кристаллических решеток) другого индивидуального химического вещества. Полисахариды, составляющие крахмал (СвН,505) , разделяют на две основные фракции амилозу и амилопектин, отличающиеся строением входящих в их состав полисахаридов. В 1952 г. изменение окраски иода с амилозой было подробно изучено Б. Н. Степаненко и Е. М. Афанасьевой. В настоящее время известно около двадцати химических соединений, дающих синее окрашивание с иодом (амилоза, амилопектин, агар, алкалоиды хинной коры и спорыньи, инулин, набухшая целлюлоза, холевая кислота и др.). [c.528]

Инфицированные фагом бактерии вносят в пробирки с заранее подогретым мягким агаром (состав см. в приложении) и выливают его в чашки Петри с питательным агаром Херши (состав см. в приложении). [c.499]

Для создания более жестких условий испытания в некоторых лабораториях в качестве дополнительного питания применяют стандартную солодовую микологическую среду, состав которой включает неохмеленное пивное сусло (содержание сахара 5 ° по Балингу) — 100 мл и агар-агар — 2 г. Среду разливают по чашкам Петри и после застывания непосредственно на ее поверхности или на специальных стеклянных подкладках размешают испытуемые образцы. В ряде случаев для оценки микробиологической стойкости кабелей, работающих в земле, грубого текстиля, резин и частично пластмасс, применяется закапывание их в почву. Так как почва не стерильна, материал может разрушаться комплексом микроорганизмов (грибов, бактерий и актиномицетов), которые содержатся в ней. [c.125]

ЗУБНОЙ ПОРОШОК — гигиеническ(к средство для чистки зубов и полости рта состоит оно в основном из карбоната кальция (мела), иногда с примесью до 10% карбоната магния. Для вкуса и запаха добавляют мятное масло, иногда вместе с анисовым, гвоздичным, коричным и другими, а также с ментолом. Кроме этих составных частей, в состав зубной пасты входят водно-гли-цериновые растворы агар-агара, крахмала, мыла и других веществ, придаюгцих пластичность. 3. п. полирует зубную эмаль и нейтрализует кислоты, отравляющие ее. [c.101]

Галактаны входят в состав пективновых веществ и широко распространены в растительном мире. В некоторых водорослях встречаются галактаны, частично этерифицированные серной кислотой. К ним относятся, например, агар, каррагинины. [c.345]

Полисахариды, составляющие крахмал (СеНщО.,), , разделяют на две основные части — амилозу и амилопектин, отличающиеся строением входящих в их состав полисахаридов. В 1952 г. изменение окраски иода с амилозой подробно изучили Б. Н. Степаненко и Е. М. Афанасьева. В настоящее время известно около двадцати хими ческих соединений, дающих синее окрашивание с иодом (амилоза амилопектин, агар, алкалоиды хинной коры и спорыньи, инулин набухшая целлюлоза, холевая кислота и др.). [c.407]

Галактоза — простой углевод, принадлежащий к группе гексоз СеНхгОб. Хорошо растворима в воде. В растениях входит в состав углеводов, агар-агара, гемицеллюлозы и других полисахаридов. Содержится в молоке. По свойствам Г. сходна с глюкозой. [c.35]

Принципиальная схема установки для амперометрического титрования та же, что и для полярографического анализа. В состав установки входят источник постоянного тока, вольтметр, реохорд, гальванометр с шуптом, электролизер, индикаторный электрод и электрод сравнения, со-единеный с электролизером солевым мостиком (агар-агар с КС1 или KN0 j). Для титрования применяют микробюрет-ку. Раствор перемешивают вращающимся твердым электродом (платиновым, серебряным, вольфрамовым, танталовым, серебряным-амальгамированным). [c.266]

Полисахариды составляют основную массу органического вещества на Земле. Большая часть сухого веса высших наземных растений и водорослей приходится на полисахариды несколько меньшее, хотя и очень значительное количество полисахаридов выполняет скелетные функции, обеспечивая жесткость клеток или их агрегатов. К таким полисахаридам относятся целлюлоза и хитин — два наиболее распространенных в природе органических вещества. Целлюлоза является основным структурным материалом растений, хотя синтезировать ее способны также некоторые бактерии и беспозвоночные. Хитин служит главным компонентом скелета членистоногих, а также входит в состав клеточных стенок грибов. В построении растительных клеточных стенок принимает участие и ряд других полисахаридов маннаны грибов , гемицеллюлозы и пектиновые вещества высших растений. Морские водоросли значительно отличаются от наземных растений полисахаридным составом клеточных стенок, что, несомненно, связано со специфическими условиями их обитания. Характерными компонентами морских водорослей являются полисахариды, этерифицированные серной кислотой,— агар, каррагинин, фукан, галактаны и ряд более сложных сульфатов гетер о полис ах ар и дов . В организме позвоночных опорные функции выполняют хондроитинсульфаты и родственные мукополисахариды соединительной ткани . Клеточные стенки бактерий построены из сложных гликопротеинов -. [c.479]

Диско-диффузионный метод. При определении чувствительности методом диффузии в агар чистую культуру возбудителя засевают газоном на питательный агар в чашке, например, тампоном, смоченном в стандартизованной (10 КОЕ/мл) суспензии микроорганизма. Затем на поверхность агара укладывают стандартные бумажные диски, пропитанные антибиотиками, которые диффундируют в агар, создавая градиент концентрации. На чашку диаметром 90 мм равномерно укладывают не более шести дисков с определенным количеством антибиотика. После инкубирования в термостате измеряют диаметры зон задержки роста вокруг дисков и по специальным таблицам определяют степень чувствительности к тому или иному антибиотику (см. цв. вклейку, рис. 13). Поскольку опыт диффузии ставят в стандартных условиях (состав V) количество среды, количество засеваемых микробов, температура и сроки инкубирования, стандартные диски и др.), каждому значению диаметра зоны вокруг диска с ан1Ибиотиком соответствует определенное значение МИК. Исходя из этих значений, для каждого антибиотика рассчитаны величины терапевтического индекса, что позволяет по диаметру зоны определить степень чувствительности к тому или иному антибиотику чувствительные (S), умеренно устойчивые (/) и устойчивые (/ ). К категории S (от англ. sensitive, чувствительный) относят те, для которых использование средних терапевтических доз будет достаточным для трехкратного превышения МИК. В категорию / (от англ. intermediate, промежугочный) относят те микробы, для подавления которых потребуются максимальные терапевтические дозы. Категорию R [c.44]

Желчно-эскулиновый тест проводят для оценки способности микроорганизмов гидролизовать эскулин в присутствии 40 % желчи. Культуру засевают на желчно-эскулиновый агар в чашке или пробирке (на скошенную часть) и инкубируют 18 — 24 ч при 37 °С. Энтерококки гидролизуют эскулин до глюкозы и эскулетина, который реагирует с цитратом железа, входящим в состав среды, в результате чего образуется коричнево-черный преципитат. При отрицательной реакции цвет среды не меняется. [c.116]

Бактериологическое исследование. Биопсийный и другой материал засевают на специальные среды (например, угольно-дрожжевой агар с -цистеином и пирофосфатом железа, селективные среды с антибиотиками, шоколадный агар и др.). Питательной основой этих сред, как правило, является дрожжевой экстракт и а-кетоглютарат. Активированный уголь необходим для связывания токсических продуктов, образующихся в процессе роста культур, и оптимизации показателя поверхностного натяжения. Для придания селективных свойств в состав сред для легионелл обычно вводят 3 антибиотика (полимиксин В, анизомицин и ванко-мицин или цефомандол), которые задерживают рост грамположительных бактерий, грибов и грамотрицательных бактерий соответственно. Посев желательно делать одновременно на селективную и неселективную среду, так как встречаются чувствительные к антибиотикам штаммы возбудителя. [c.137]

Среда Кэри — Блэра. Состав (г/л) натрия гидрофосфата — 1,1 натрия тиогликолята — 1,5 кальция хлорида — 0,09 натрия хлорида и агар-агара — по 5,0. Хлорид кальция асептически добавляют в прокипяченную и остуженную среду (конечное значение pH 8,4 0,2). После приготовления среду помещают в герметично закрывающиеся пробирки или флакончики. В этой среде минимум питательных веществ, чтобы сохранить максимальное количество живых бактерий без размножения. Тио-гликолят натрия введен в состав среды для создания низкого окислительно-восстановительного потенциала. Среда имеет слабощелочное значение pH, что минимизирует гибель бактериальных клеток вследствие закисления среды. Вместе с тем жизнеспособность на этой среде прихотливых микроорганизмов сохраняется лишь непродолжительное время. Для получения наилучших результатов рекомендуется наряду с посевом на транспортную среду делать прямой посев на среду обогащения. [c.219]

Бактериологическое исследование. Для выделения чистых культур материал засевают на селективные плотные среды с кровью и антибиотиками (как и при диагностике кампилобактериоза). Для инактивации образуюш ихся в процессе роста ингибиторов в среды иногда добавляют активированный уголь, крахмал, сыворотки. Обычно посев ведут одновременно на селективную и неселективную среду, чтобы не пропустить антибиотикочувствительные штаммы. Наиболее подходящими неселективными средами являются агары для бруцелл с 5 — 7 % лошадиной крови. Для придания селективности в состав сред обычно вводят три антибиотика ванкомицин, амфотерицин В (по 10 мкг/мл) и цефсулодин или триметоприм (5 мкг/мл). Посевы инкубируют до 7 сут при 37 °С в атмосфере, содержащей 5 % кислорода и 10 % углекислого газа. Для этого используют анаэробные контейнеры с газогенераторными пакетами (метод зажженной свечи не рекомендуется, так как концентрация кислорода при этом остается выше 15 %). [c.223]

Эти тангенциальные движения поверхности ртутной капли усиливают перемешивание электролита, что сопровождается ускорением поступления к электроду веществ, участвующих в электрохимической реакции, и повышением плотности тока. На полярограммах образуются максимумы, причем в первом случае (рис. 151, кривая 2) они имеют форму пика (максимум первого рода) и появляются на фоне слабоконцентрированных электролитов, а во втором (рис. 151, кривая 3)—более сглаженную форму (максимумы второго рода) и возникают в концентрированных растворах при работе с быстрокапающими капиллярами. Максимумы на полярограммах затрудняют их расшифровку и проведение анализа. Для подавления маскимумов в состав раствора вводят добавки поверхностно-активных веществ, тормозящих движение поверхности ртути (желатин, агар-агар и др.). [c.363]

Бактериальный состав активного ила при очистке стоков целлюлозного производства довольно разнообразен. Богаче всего представлены бактерии, которые могут быть отнесены к метатрофам и хорошо растут на мясо-пептонном агаре, сахарном агаре, сульфитщелоковом и сульфатщелоковом агаре. Эти бактерии являются основными окислителями растворенных органических веществ сточных вод, они располагают большим набором ферментов, позволяющим им осуществлять минерализацию разнообразных органических соединений. [c.211]

Двуслойная комплексная среда для определения подвижности бактерий, лизиндекарбоксилазы, продукции индола [Ссл слл, 51сс1, 1065 цит, по Г. П. Калннс, 1373). 0,2% питательный агар разливают в пробирки столбиком высотой 4—5 см. Состав среды для верхнего слоя питательного бульона 100 мл, тиосульфата натрия 0,05 г, лизина 0,5 г, фосфата калия двуосновного 0,1 г, фосфата калия одноосновного 0,04 г, 1,6% щелочного раствора бромтимолового синего 0,3 мл. После стерилизации и охлаждения агара в пробирки стерильно наслоить 2 мл среды для верхнего слоя. [c.234]

Устойчивость геля к бактериальному действию намного выше, чем у исходного агара, но все же в состав элюентов желательно вводить антисептики 0,02% азида натрия, 0,5% бутанола, насыщенный раствор хлороформа. Для стерилизации гелей можно использовать 0,01%-ный раствор диэтилпирокарбоната. [c.57]

При выращивании бактерий на рыбном агаре, пептонной воде и мясо-пептонном бульоне, содержащих белки и пептиды, существенных изменений в характере роста микроорганизмов под действием цианида калия в интервале концентраций от 1 мг/л до 100 мг/л не наблюдалось. Отсутствие ингибир ующего эффекта KGN на среде, богатой органическими веществами, объясняется, вероятно, тем, что протеиновые вещества блокируют (нейтрализуют) таксичеокое действие цианида калия на хмикроорганизмы. Таким образом, зкстериментальные наблюдения показали, что состав среды оказывает существенное влияние на антимикробную активность KGN и чувствительность к нему бактерий, что необходимо учитывать при разработке микробиологического метода анализа воды. [c.33]

Количественное определение. Для количественной оценки действия нтибиотика пользуются методом диффузии в агар (рис. 10.7), методом последовательных разведений и некоторыми другими методами. Для проведения теста с диффузией чашки заполняют до определенной высоты агаризованной средой, содержащей суспензию тест-организма. Затем в чашки вносят испытуемые растворы антибиотика. Их помещают в лунки, либо в стеклянный или металлический цилиндр, или же накладывают на агар пропитанные антибиотиком диски из фильтровальной бумаги. При положительной реакции во всех случаях после инкубации становится заметной зона подавления роста тест-организма. Диаметр этой зоны при соблюдении постоянных условий опыта (состав питательной среды, толщина слоя агара, плотность посева, время инкубации, температура и т.д.) пропорционален логарифму концентрации антибиотика (рис. 10.7). [c.339]

В ЧССР запатентован [67] способ, обеспечивающий стабильность пассивной пленки на анодах для предупреждения растворения олова в виде двухвалентных ионов. С этой целью в электролит вводят добавки, увеличивающие вязкость раствора, например желатин, агар-агар, гуммиарабик, крахмал или гликоген, а также фенол, крезол, нафтол, пирокатехин и другие соединения, имеющие поверхностно-активные свойства. Рекомендуется состав электролита (г/л) 5п (в виде КгЗпОз] 30, Ъп [в виде К2гп(СК)4] 3, ЫаСМобщ 25, КаОН 10, р-нафтол 1, желатин 0,1. Температура электролита 65°. Катодная плотность тока 1—3 тдм . Аноды — из сплава 2п—5п (2п 20—25%). 0 >, Ъ а/дм [c.214]

Влияние брускового мыла на бактерицидную активность. Херст, Стэтторд и Вудреф [38] изучали бактериологическими методами возможности включения в состав брускового мыла некоторых бисфенолов и других соединений. Для удобства опыты проводились таким образом, что для каждого испытуемого соединения определялась минимальная ингибирующая концентрация (МИК), при которой начиналось угнетение (в присутствии сыворотки или без нее). Исследовалось также влияние мыла на эффективность бактерицидных веществ. Для сравнительной оценки полученных значений, характеризующих влияние мыла на активность бактерицидных средств, был введен коэффициент инактивации мылом (КИМ). Если коэффициент получался равным единице, это означало, что мыло не изменяет активности вещества. Влияние мыла на дезинфекционные вещества изучалось диффузионным методом на агаре. Испытуемые вещества приготавливались в виде растворов, с мылом и без него. Зоны угнетения на агаре сравнивались между собой. Растворы считались идентичными по бактерицидной активности, если зоны угнетения оказывались одинаковыми по величине. [c.285]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология