Справочник химика 21

Химия и химическая технология

Статьи Рисунки Таблицы О сайте English

Аминокислоты медью

    Аминокислоты проявляют характерные свойства и при взаимодействии с ионами металлов. Как мы увидим в дальнейшем, комплексы аминокислот с металлами имеют также биохимическое значение. Особого упоминания заслуживают комплексы с двухвалентной медью они окрашены в темно-синий цвет, часто хорошо кристаллизуются и поэтому мог ут служить для характеристики некоторых аминокислот  [c.354]


    Для разделения энантиомеров (оптических изомеров) применяют лигандообменную хроматографию. Так, рацемические а-амино-кислоты были успешно разделены на оптически активные антиподы хроматографией на хиральном адсорбенте с химически привитыми группировками -пролина в присутствии ионов меди. Структура комплекса, образуемого иммобилизованным лигандом ( -проли-ном), комплексообразующим ионом металла и подвижным лигандом L- и О-аминокислоты с различными Р) в данной системе может быть представлена следующим образом  [c.107]

    Реакция с солями меди. В слабокислых средах аминокислоты дают с солями меди ярко-синие хелаты  [c.119]

    Предлагаемый метод количественного определения аминокислот после их разделения методом электрофореза основан на их реакции с нингидрином в слабокислой среде. Получаемое в результате этой реакции производное синего цвета затем превращают путем обработки спиртовым раствором сульфата меди в стабильное медное производное оранжево-красного цвета, имеющее максимум поглощения при длине световой волны 530 нм. Это производное хорошо экстрагируется с бумажной полоски этиловым спиртом. [c.148]

    Вырезанные участки бумаги измельчают ножницами и помещают в колбы. В кал<дую колбу добавляют по 10 мл 0,005%-ного этанолового раствора сульфата меди. Объем доводят до 100 мл 96%-ным этиловым спиртом. Синяя окраска аминокислот сменяется оранжево-красной при образовании производного меди, которое растворимо в этиловом спирте. При данной операции совмещается образование комплексного соединения с медью и его экстракция из бумаги. [c.303]

    При действии едких щелочей на медные соли аминокислот не происходит выпадения гидроокиси меди. Однако при действии сероводорода происходит разрушение внутрикомплексного соединения и выпадает труднорастворимая в воде сернистая медь. [c.375]

    Для аминокислот особенно характерно образование медных солей, обладающих специфической синей окраской. Эти вещества являются внутренними комплексными солями в них атом меди связан не только с атомами кислорода, но и с атомами азота аминогрупп  [c.375]

    Характерной особенностью аминокислот является способность к образованию внутрикомплексных солей с тяжелыми металлами. Например, а-аминокислоты образуют с медью соли синего цвета [c.282]


    Координация кислорода. Этот процесс мало характерен для ионов Си, Ag и Аи, причем тенденция к координации кислорода уменьшается от меди к золоту. Известны многочисленные кристаллогидраты солей Си (И). Описаны довольно стойкие кислородсодержащие комплексы меди, устойчивость которых увеличивается вследствие образования циклов. Таковы многочисленные производные меди (II) и аминокислот. Аналогичные комплексы золота и серебра или нестойки или не существуют вовсе. [c.192]

    Стимуляторами роста микроорганизмов служат специальные ростовые вещества, к числу которых относят несколько десятков аминокислот, необходимых для синтеза белков и ферментов внутри клетки. Для регулирования биохимических процессов микроорганизмам нужны также витамины. Большое значение в жизни микроорганизмов имеют такие элементы, как бор, иод, бром, молибден, марганец, кобальт, медь, которые активизируют синтез ферментов или включаются в их состав. [c.16]

Рис. 5.12. Структура сорбционного комплекса, образуемого стационарныдг лигандом М-Ст-Ь-гидроксипро-пином, катионом меди Си + и О- или -аминокислотой. V фиксируемой на хнраль-чом сорбенте аминокислоты R обозначает боковой радикал, например Н для глицина, СНз для аланина, --СН,— Рис. 5.12. <a href="/info/1593411">Структура сорбционного</a> комплекса, образуемого стационарныдг лигандом М-Ст-Ь-гидроксипро-пином, <a href="/info/337308">катионом меди</a> Си + и О- или -аминокислотой. V фиксируемой на хнраль-чом сорбенте аминокислоты R обозначает <a href="/info/272144">боковой радикал</a>, например Н для глицина, СНз для аланина, --СН,—
    Определение соотношения количеств аминокислот основано на измерении оптической плотности растворов медного производного, полученных при обработке отдельных участков электрофореграмм спиртовым раствором сульфата меди. Измерения следует проводить в достаточно разбавленных растворах, чтобы соблюдалась линейная зависимость между содержанием аминокислоты и оптической плотностью раствора. Оптимальные для колориметрических определений концентрации аминокислоты находятся в пределах 0,05— [c.149]

    По величине р/ аминокислоты разделяют па нейтральные, кислые п основные, боковые цепи которых соответственно имеют нейтральные, карбоксильные и основные группы (табл. 40). Аминокислоты проявляют характерные свойства нри взаимодействии с металлами, что имеет очень важное значение для накопления металлов в нефтях. Аминокислоты активно образуют комплексы с медью, кобальтом, цинком, никелем, ванадием и другими металлами. Например, [c.62]

    Окрашенные комплексные соединения с медью образуют и построенные из а-аминокислот белковые вещества (стр. 296). [c.283]

    В качестве примера рассмотрим спектр КД медьсодержащего белка (рис. 13-8). КД в области d—d-полос спектра поглощения меди отчасти обусловлен асимметрией окружения иона меди в структуре белка. Такова же причина и нередко наблюдаемого кругового дихроизма ароматических аминокислот белков. Для тирозина знак КД может быть как Положительным, так и отрицательным, но при этом он остается постоянным для всей полосы поглощения. Вследствие этого полосы КД по форме сходны с полосами поглощения [19, 46]. Фенилаланин ведет себя сложнее. Колебательные полосы, следующие за О—0-полосой с [c.25]

    На фоне этих частичных успехов особенно интересен метод адсорбционного расщепления, разработанный С. В. Рогожи-ным, В. А. Даванковым и сотрудниками [72]. В полимерный носитель вводят остатки оптически активной аминокислоты. Через колонку, заполненную таким адсорбентом, пропускается раствор солей меди или другого металла-комплексообразова-теля при этом металл образует комплекс с закрепленной на носителе аминокислотой. Через подготовленную таким образом колонку пропускают раствор рацемической аминокислоты Ь 0. За счет комплексообразования с участием иона меди и закрепленной на носителе оптически активной аминокислоты 2 могут образоваться два диастереомерных комплекса  [c.110]

    Карбоксильная группа а-аминокислот проявляет некоторые обычные реакции, образуя серию солей, например КСН(НН2)СОг К+. С некоторыми ионами металлов а-аминокислоты образуют хелатные комплексы, комплекс меди используется для выделения аминокислот. [c.294]

    Количественное определение аминокислот методом элюции и последующим фотоколориметрированием [105, 106]. С помощью этого метода можно определять в растворе или гидролизате белка 0,05—0,15 мкг аминокислоты. Метод основан на реакции аминокислот с нингидрином в слабокислой среде с последующим превращением полученного в результате реакции синего производного — дикетогидринделидендикетогидриндиамина (ДИДА) в стабильное производное меди оранжево-красного цвета, имеющее максимум поглощения при 530 ммк. [c.117]

    Все известные ферменты представляют собой длинные цепи из а-амино-кислот (относительная молекулярная масса порядка 0,5 млн), свернутые в компактную форму, в которых имеется несколько реакционноспособных участков. Изучение природы ферментов показало, что, помимо белка, многие из них содержат и другие соединения. Так, например, в составе окислительных ферментов были обнаружены органические соединения железа. Эти соединения у различных окислительных ферментов оказались одинаковыми по составу. Кроме того, было выяснено, что такие же соединения железа входят и в гемоглобин крови, переносящий кислород в организме человека и животных. Комплексное соединение железа (гем) можно отделить от белка. Однако после этого ни белок, ни гем не проявляют ферментативных свойств. Отсюда следует, что высокая активность и специфичность свойственны только сложной системе, состоящей из белка и гема. В состав различных ферментов входят и комплексные соединения других металлов. В некоторых ферментах обнаружены медь, цинк, марганец, хром и другие элементы. Для некоторых ферментов уже известна первичная структура, т. е. последовательность аминокислот в длинной цепи. Вторичная структура — общий характер спирали, образуемый цепью, приближенно установлена для нескольких ферментов. О третичной структуре, т. е. природе реакционноспособных поверхностных участков молекулы, известно очень мало. [c.149]


    Растения кроме главных питательных веществ — азота, фосфора и калия — нуждаются в небольших количествах многих других элементов, так называемых микроэлементов. К микроэлементам относятся бор, медь, молибден, марганец, цинк, кобальт, иод и некоторые другие. Установлено, например, что применение небольшого количества соединений бора (0,5 кг на 1 га) дает прибавку урожая свыше 15%, а применение солей молибдена увеличивает примерно на 70% связывание азота из воздуха, повышает скорость синтеза аминокислот, белков и витаминов. Использование микроудобрений способствует увеличению количества и улучшению качества сельскохозяйственной продукции. [c.7]

    Бумагу из каждого вырезанного пятна измельчают ножницами отдельно над кусками чистой бумаги на части размером не более 3 мм каждая. Измельченную бумагу от каждого пятна количественно переносят в отдельную пробирку. В каждую добавляют точно пипеткой по 10 мл насыщенного раствора сульфата меди в 75%-ном этаноле. Пробирки ставят в штативе в темное место на 1 ч, время от времени перемешивая их содержимое. Образуется красное внутрикомплексное соединение, которое экстрагируется этанолом из волокон бумаги. Интенсивность окраски раствора пропорциональна содержанию аминокислоты в пятне. [c.529]

    Гидрирование эфиров аминокислот на хромите меди в спирте сопровождается Ы-алкилированием  [c.74]

    Коррозионная стойкость металлов и покрытий может быть повышена применением металлов и покрытий, устойчивых против атмосферной коррозии металлических покрытий, которые являются ядами для микроорганизмов (цинк, свинец) или продукты окисления которых являются биоцидами (окислы меди и др.) снижением шероховатости и очисткой поверхности металлов от загрязнений всех видов использованием в растворах, предназначенных для нанесения металлических и конверсионных покрытий, биоцидных веществ (борная кислота и ее соли, полиамины и поли-имины, оксихинолин и его производные и т. п.) и удаление из растворов веществ, которые могут адсорбироваться на поверхности и в порах покрытия и служить питательной средой для микроорганизмов (декстрин, крахмал, столярный клей, сахара, аминокислоты, цианиды и т. п.). [c.89]

    По реакции с люминолом определяют неметаллы и органические вещества с пределом обнаружения 10 —10 г/л неорганические и органические сульфиды, 8-гидроксихинолин, аминокислоты, аминофе-нолы и др. Люминол применяют как индикатор в ти-триметрии, например в комплексонометрии к раствору соли цинка или кадмия добавляют избыток титрованного раствора динатриевой соли этилендиаминтетрауксусной кислоты, который затем оттитро-вывается раствором соли меди известной концентрации в присутствии люминола и Н2О2 сначала медь связывается в прочный комплекс, а в точке эквивалентности свободные ионы меди катализируют хеми- [c.366]

    В настоящее время создано и испытано около десятка асимметрических силикагелевых сорбентов. Хотя в большинстве сорбентов использованы оптические изомеры пролина и оксипролина, они различаются сродством к различным аминокислотам и порядком их элюирования это связано с тем, что подвижный лиганд фиксируется в комплексе не только координацией карбоксильной и аминогруппой с ионом меди, но и взаимодействием бокового радикала аминокислоты с ближайшим окружением координационного центра, что определяет в конечном итоге порядок удерживания антиподов аминокислот сорбенте. [c.83]

    Поскольку сорбенты для лигандообменной хроматографии выпускаются, предложены некоторые модификации метода, позволяющие использовать традиционные сорбенты. Так, М-алкилированные оптически активные аминокислоты сорбируются на обращенно-фазном силикагеле. В алкильном радикале должно быть больше 5—6 углеродных атомов. В этом случае модификатор прочно удерживается на сорбенте и не смывается водным элюентом, в который добавляют следовые количества меди. [c.84]

    Качественным эмиссионным анализом установлено содержание в соке следующих микроэлементов кальций, натрий, медь, магний, алюминий, кремний и титан. В наибольшем количестве содержатся магний, а затем кальций. Хроматографией на бумаге исследован аминокислотный состав сока [17]. Состав свободных аминокислот сока (мг%) цистеин — 5S0, а-аланин — 80, фенилаланин — 72, лейцин — 96. Из них фенилаланин и лейцин являются незаменимыми аминокислотами [16]. [c.374]

    Проявление нингидрином. Раствор нингидрина наливают в ванночку и равномерно пропитывают им хроматограмму. Хроматограмму высушивают под тягой и выдерживают в темноте при комнатной температуре около 12 ч. В этих условиях с нингидрином реагируют все а-аминокислоты (другие аминокислоты дают реакцию при более высокой температуре — около 100°С). Проявление хроматограмм при качественной хроматографии можно ускорить, помещая последние на 5—10 мин в термостат при 60° С. Окраска, получаемая при проявлении аминокислот нингидрином, неустойчива. Ее можно закрепить, опрыскивая проявленную хроматограмму из пульверизатора раствором ацетона, содержащим азотнокислую медь. Стойкую окраску можно получить при внесении в нингидриновый реактив кадмия (с. 135) или стронция. Окраска сохраняется в течение нескольких недель при проявлении аминокислот смесью 1%-ного раствора нингид-рнна в ацетоне и 1%-ного раствора хлористого стронция в 20%-ном растворе СН3СООН (1 6). [c.129]

    Для поглощения и концентрирования аминокислот из морской воды был применен [64] метод хроматографии, основанный на обмене лигандов. Для этого пропускали большие объемы морской воды через небольшую колонку, заполненную иминодиацетатной комплексообразующей полистирольной смолой дауэкс А-1 в ее Си (И)-форме. При этом аминокислоты образовывали комплексы с м.едью, которые удерживались смолой. Затем аминокислоты вытесняли из медных комплексов пропусканием через ту же колонку 5 М раствора аммиака. При такой методике наряду с аминокислотами медь, как это свойственно небольшим по размеру ионам, также вытесняется с поверхности смолы и попадает в элюат. Медь можно поглотить или отфильтровать , пропуская раствор через небольшую колонку диаметром около 1 см и высотой 2 см, заполненную Ыа-формой карбоксильной полиметакриловой смолы амберлит ШС-50. Очищенный от меди раствор аминокислот можно сконцентрировать выпариванием и затем анализировать любым из методов аминокислотного анализа. [c.515]

    В маленькую пробирку наливают 10 капель 3%-ного раствора Си504 и 1 мл 5% -ного раствора едкого натра. К смеси быстро добавляют три капли исследуемого раствора. Если в нем присутствует полн-атомный спирт, голубой осадок свежевыпавшей гидроокиси меди (II) растворяется и раствор принимает интенсивную синюю окраску. Таким же образом ведут себя а-аминокислоты и ос-амино-спирты. [c.113]

    Для получения хирального адсорбента можно воспользоваться не только описанной выше химической, но и сорбционной иммобилизацией соответствующего лиганда. Для усиления сорбции в этом случае надо, с одной стороны, ввести в лиганд достаточно длинную н-алкильную цепь (например, использовать М-алкилзамещенную -аминокислоту), а с другой стороны, использовать силикагель с химически привитыми к его поверхности также длинными н-ал-кильными цепями, например по рассмотренной схеме (5.10) реакции силанольных -групп поверхности кремнезема с монохлордиме-тил-н-октадецилсиланом. В результате конформационной подвижности н-алкильные цепи лиганда проникают в слой н-алкильных же подвижных цепей, привитых к поверхности кремнезема, и достаточно прочно удерживают лиганд. Комплексообразующие ионы меди в этом случае должны находиться в элюенте и образовывать комплексы с одной стороны с иммобилизованными лигандами и, с другой стороны, с лигандами, содержащимися во вводимой смеси. Так, например, силикагель с химически привитыми н-алкильными цепями сорбирует У-гептил-1-гидроксипролин (С7-1.-Нур). На рис. 5.12 приведена схема полученного так хирального лигандообмен- [c.107]

    Можно титровать сульфаниламидные препараты, аминокислоты ароматического ряда, ароматические диамины, фенацетин, осарсол, бигумаль, фолиевую кислоту, синтомицин, левомицнн, препараты, содержащие сульфат-ион, медь, применяя различные реакции с нитритом натрия. [c.421]

    Метод основан на реакции аминокислот с кингидрином в слабокислой среде с последующим превращением полученного а результате реакции синего производного дикетогидринделидендикетогидриндиамина (ДИДА) в стабильное производное меди оранжево-красного цвета, имеющее максимум поглощения при 530 нм. Количественное определе- [c.302]

    Количественное определение аминокислот основано на измерении оптической плотности производного меди ДИДА после вымывания его из бумаги. [c.117]

    Экстрагирование и фотометрирование. По электрофореграмме измеряют расстояния, пройденные за время опыта компонентами смеси, и устанавливают число компонентов и знак заряда каждого компонента. Вырезают участки электрофореграммы с синими полосами аминокислот, а также два контрольных участка без аминокислот. Площадь контрольных участков долл<на быть равна площади синей полосы, соответствующей нейтральным компонентам смеси, пе перемещающимся при электрофорезе. Вырезанные участки разрезают ножницами на мелкие кусочки и помещают в отдельные пробирки. В каждую пробирку добавляют по 10мл 0,005%-ного спиртового раствора сульфата меди, нри этом синяя окраска переходит в оранжево-красную. Пробирки оставляют на 1 ч при комнатной температуре в темноте (в шкафу), время от времени взбалтывая. Затем опытные пробы фотометрируют, сравнивая их с контрольными, и приборе ФЭКН-57 с зеленым фильтром в кюветах толщиной 1 см. Определение оптической плотности осуществляется, как это описано п работе 4. По найденному значению оптической плотности каждого компонента определяют их соотношение в смеси аминокислот. Так, если />1, Оз — оптическая плотность соответственно первого, второго и третьего компонента, то содержание первого компонента (в %) находят но формуле  [c.151]

    Наиболее интенсивной коррозии подвергается сталь 12Х13Г18Д,, легированная марганцем и медью, наименьшей — аустенитная сталь 12Х18Н10Т. Селективное растворение происходит за счет комплексообразования хрома и никеля с органическими кислотами,, аминокислотами, сульфолипидами и др. (это выявлено при атомноабсорбционных исследованиях культуральной жидкости после коррозионных испытаний [8, с. 92]). [c.29]

    Применяется для частичного разделения аминокислот иа полистироле, содержащем химически связанный комплексный иои (N-карбоксиме-тил-Ь-оалин)медь(П) [c.259]

    Лигандообменную хроматографию применяют для разделения в водной среде соединений, представляющих большой интерес для органической химии и биохимии аминов, аминокислот, белков, нуклеотидов, пептидов, углеводов. При этом в вчестве комплексообразующих используют ионы меди, цинка, кадмия, никеля, серебра и железа. Ионы ртути и серебра в неполярной среде алифатических углеводородов образуют лабильные комплексы с ненасыщенными и ароматическими углеводородами. Большими достоинствами лигандообменной хроматографии является ее селективность и отсутствие жестких требований к сорбенту, который может быть прочно связан ионами металла или только пропитан солями металла. [c.82]

    Лигандообменная хроматография оптически активных соединений основана на образовании лабильных координационных соединений, в которых с центральным ионом металла-комлексообразователя одновременно координирована молекула расщепляющего асимметрического реагента и один из подлежащих разделению энантиомеров. Для осуществления лигандообменной хроматографии необходимо наличие в расщепляющих реагентах и в разделяемых лигандах донорных гетероатомов серы, кислорода, азота, способных координироваться с ионом металла. Наблюдается хорошая координация а-аминокислот и ионов меди, цинка и никеля. Донорные атомы образуют плотно упакованную координационную сферу вокруг центрального иона металла, при этом разделяемые лиганды вступают в тесный контакт с расщепляющим реагентом. Этим и объясняется высокая эффективность распознавания реагента, т.е. энантиоселективность. [c.82]

    Такой принцип расщепления рацематов—лигандообменная хроматография— впервые был применен с использованием полистирольного сорбента, ковалентно связанного с остатками оптически активной природной аминокислоты Ь-пролина. Сорбент прочно координировал двухвалентную медь, оставляя в ее основной координационной плоскости две вакантные позиции для связывания подвижного лиганда молекулы L- или -аминокислоты. Оказалось, что остаток Ьпролина проявляет настолько высокое сродство к О-изомерам аминокислот, что последние пришлось даже вымывать из колонки раствором аммиака, который, координируясь с ионами меди, вытеснял подвижный лиганд из сорбционного комплекса, в то время как Ьизомеры десорбировались водой. [c.82]

Рис. 3.4. Хроматограмма рацематов аминокислот, полученная на колонке размером 100X1 мм (стекло) с асимметрическим полистирольным анионитом (7,5 мкм), подвижная фаза — 0,25 М ацетат натрия и 1,5X10- М ацетат меди, рН=5,2, детектор—УФ (260 нм) Рис. 3.4. Хроматограмма <a href="/info/143857">рацематов аминокислот</a>, полученная на <a href="/info/140462">колонке размером</a> 100X1 мм (стекло) с асимметрическим полистирольным анионитом (7,5 мкм), <a href="/info/5672">подвижная фаза</a> — 0,25 М <a href="/info/8169">ацетат натрия</a> и 1,5X10- М <a href="/info/225454">ацетат меди</a>, рН=5,2, детектор—УФ (260 нм)

Смотреть страницы где упоминается термин Аминокислоты медью: [c.334]    [c.84]    [c.331]    [c.303]    [c.118]    [c.679]    [c.327]    [c.496]   
Новые окс-методы в аналитической химии (1968) -- [ c.26 ]




ПОИСК







© 2024 chem21.info Реклама на сайте