Молекулярный вес, определение мочевины

Б. Определение молекулярного веса вещества. Для определения молекулярного веса мочевины или глюкозы растворяют 0,6 г мочевины или 1,8 г глюкозы в 100 м.л воды. Пробирку /, нижнюю часть термометра и мешалку ополаскивают два-три раза приготовленным раствором, затем вливают испытуемый раствор в пустую пробирку и определяют температуру замерзания раствора. Определяют А/ раствора и по уравнению (4) вычисляют молекулярный вес вещества ( аоды = 1>86). Полученные результаты заносят в таблицу по образцу. [c.215]

Определение молекулярного веса мочевины. Сущность метода сводится к определению опытным путем температуры замерзания чистого растворителя и раствора и к расчету молекулярной массы по понижению точки замерзания. [c.111]

Опыт определения молекулярного веса мочевины [c.39]

Определив точно в градусах шкалы термометра Бекмана точку замерзания чистой воды, приступают к определению молекулярного веса мочевины. [c.40]

Это первый фермент, полученный в кристаллическом виде (1926.) Кристаллическая уреаза представляет глобулин с молекулярным весом 483 000. Этот фермент работает настолько отчетливо и энергично, что его применяют для количественного определения мочевины. [c.343]

Большинство авторов определило молекулярные массы а-глиадинов (табл. 6Б.4) в пределах от 27 000 до 38 000 Да [72, 73]. Этот диапазон может отражать определенную изменчивость молекулярной массы поскольку при использовании этого же метода в отношении нескольких а-глиадинов установлены [116, 114] разные молекулярные массы для каждого из них. Завышенные величины молекулярных масс для аг и аг-глиадинов, полученные гель-фильтрацией [147], объясняются тем, что исследования проводились в 0,1 М уксусной кислоте без предварительного восстановления дисульфидных связей и в отсутствие денатурирующего агента (мочевины или гуанидинхлорида), а также тем, что в этих условиях а-глиадины находятся не в форме статистического клубка. Ввиду этого результаты оказываются искаженными за счет конформации, которую принимают в этой среде а-глиадины и стандарты белков. Все а-глиадины образованы одной полипептидной цепью. [c.188]

Гемоглобин лошади, не содержащий цистина, представляет особый интерес, так как методом измерения поверхностного натяжения удалось показать [129], что его молекулярный вес равен 12 000. Гидродинамические методы определения дают молекулярный вес около 68 ООО, который при работе с растворами мочевины снижается примерно вдвое [345]. Если [c.176]

Молекулы белков очень большие, поэтому и молекулярная масса ферментов обычно превышает миллион. Однако есть ферменты, молекулярная масса которых составляет 1000. Часть молекулы белка фермента, определяющая его специфичность, термолабильна. Под специфичностью надо понимать способность фермента воздействовать только на определенный субстрат, например сахараза гидролизует только сахарозу, уреаза — только мочевину, не воздействуя даже на ее производные. Фермент- [c.28]

В настоящее время алканы можно получать практически в неограниченном количестве из природного газа и нефти. Наряду с перегонкой в нефтехимической промышленности разработаны и применяются со-временные методы (прежде всего для отделения я-алканов), такие как экстракционная кристаллизация с мочевиной или использование молекулярных сит. Однако выделение индивидуальных соединений с увеличением в них числа атомов углерода становится все более трудной задачей, поскольку при этом резко возрастает число изомерных соединений и одновременно уменьшаются различия в их физических свойствах. Поэтому для получения определенных алканов во многих случаях приходится привлекать синтетические методы. [c.196]

Известные методы разделения, такие, как перегонка, акционная кристаллизация с мочевиной (образование тов с н-алканами), молекулярные сита (пропускают ны), становятся неэффективными для тяжелых алка-По этой причине для получения определенных алка-используются синтетические методы Препаративные ме А)ды получения алканов можно раз-на две большие группы с сохранением углеродного а исходного соединения, с изменением углеродного а [c.251]

Если хроматографировать в водном растворе такие соединения, молекулы которых не имеют форму компактных глобул, то зависимость / av, или Ve, ОТ молекулярной массы носит аномальный характер. Это явление полностью или частично исчезает, когда хроматографию ведут в концентрированных растворах мочевины или солянокислого гуанидина. В этих условиях полипептидные цепи принимают конфигурацию статистического клубка, а следовательно, исчезают вариации Ve, связанные с формой нативной молекулы. Часто 8—9 М мочевина не дает должного эффекта, напротив, 4—6 М раствор солянокислого гуанидина вызывает полную диссоциацию полипептидных цепей. ГПХ на сефарозе 6В в 6 М растворе солянокислого гуанидина является обычным методом определения молекулярного веса белков в диапазоне 80 10 —1,4 10 дальтон [7] (см. табл. 35.1). На основании эмпирического уравнения [c.428]

Результаты анализа соответствующих фракций, выделенных после обработки мочевиной, показаны в табл. 2. Приводимые в таблице данные получены при сочетании методов ионизации электронами низкой энергии (для определения молекулярных весов соединений) и ионизации электронами обычной энергии (для типового анализа). Пики молекулярных ионов, различающиеся на 14 ат. ед. массы, можно сгруппировать в серии. Как указывают результаты типового анализа, эти ники удается приписать различным возможным тинам соединений. Хотя значения относительной интенсивности ников, приведенные на рис. 3, не могут быть непосредственно связаны с действительной долей соответствующих соединен .й. [c.197]

Более точные молекулярные веса белков получены при определениях осмотического давления их растворов. Высокомолекулярные вещества при растворении могут давать довольно высокое осмотическое давление, величину которого можно измерить. Если 1 г белка с молекулярным весом 10 000 растворить в 100 г воды при 25°, то осмотическое давление такого раствора будет равно 25,2 см водяного столба. Однако при этих измерениях чистота белка должна быть очень высокой. Для измерения осмотического давления белков обычно используют растворы мочевины. [c.206]

Но, как видно из табл. 24, твердые и жидкие кислоты, резко различающиеся по физическому состоянию, мало различаются по химическим свойствам. Судя по кислотному числу, твердые кислоты в среднем состоят из кислот ie, а жидкие—из кислот С14. Увеличение времени вызревания способствует лучшему разделению кислот, но не приводит к заметной разнице ни в среднем молекулярном весе фракций, ни в содержании непредельных и кетокислот. Твердые кислоты значительно светлее исходных, а жидкие—очень темные и обладают неприятным запахом. Содержание нормальных кислот, определенное по реакции с мочевиной, составляет в жидких кислотах всего 11,2%, а в твердых 72%. Разгонка под вакуумом показала, что в твердых кислотах нет кислот ниже g, а в жидких присутствуют практически все кислоты от Сб до С23—С24 примерно в одинаковых количествах 3]. [c.80]

Прямое определение нафтеновых кислот через медные соли в кислотах, не образующих комплекса с мочевиной, показывает, что их содержится 44,1%, или 11% в пересчете на исходные товарные фракции кислот. Нафтеновые кислоты представляют собой вязкую жидкость светло-коричневого цвета среднего молекулярного веса 210. Даже при очень низком йодном числе они обладают резким неприятным запахом. Только ли они придают неприятный запах жирным кислотам, с уверенностью сказать нельзя. [c.127]

В табл. 16 приведен гомологический ряд олигомеров, полученных из диметилолмочевины, в котором рассчитаны молекулярная масса, общее содержание формальдегида, процент метилольных и метиленовых групп, количество азота и отщепляемой воды в зависимости от количества молекул диметилолмочевины, вступивших в реакцию, т. е. от степени конденсации диметилолмочевины п. Молекулярную массу испытуемой мочевино-формальдегидной смолы можно определить после соответствующего определения содержания метилольных или метиленовых групп Х , Xi с последующим пересчетом на сухой мочевино-формальдегидный остаток. По чис- [c.36]

Для определения молекулярного веса неэлектролитов можно использовать в качестве растворителей воду, бензол или нитробензол, а в качестве растворяемых веществ мочевину, сахар, глюкозу (в воде) и м-нитротолуол, нафталин, дифенилаланин, п-толуидин, дибромбензол (в органических растворителях). [c.51]

Мочевппа образует комплексы только с соединениями нормального или весьма слабо разветвленного строения [88]. Эти соединения включают парафиновые углеводороды, органические кислоты, сложные эфиры, кетоны и ненасыщенные углеводороды. В зависимости от типа или физического состояния соединений для образования комплексов требуется определенная минимальная длина цепи. Для образования комплексов с углеводородами (по крайней мере при атмосферном давлении) последние должны содержать не менее шести углеродных атомов в молекуле. Из карбоновых кислот способны образовать комплексы только кислоты среднего и высокого молекулярного веса, начиная с масляной. В то же время даже низший кетон (ацетон) легко образует комплекс с мочевиной. По мере увеличения длины цени связываемого соединения образование комплексов облегчается, а стабильность их возрастает. Так, если количество раствора мочевины недостаточно для реакции со всем цетаном и гептаном, содержащимися в смеси, то мочевина избирательно взаимодействует с цетаном, в результате чего содержание цетана в комплексе выше, чем н-гептана. Это позволяет фракционировать соединения нормального строения при помощи мочевины [84]. [c.63]

Простой кристаллизации и экстрактивной кристаллизации следует противопоставить процесс, называемый в данной статье аддуктивно11 кристаллизацией. Под этим термином подразумеваются все методы разделения, при которых кристаллизация компонента из раствора достигается добавкой дополнительного материала, образующего непрочное молекулярное соединение (или продукт присоединения — аддукт) С одним или несколькими компонентами разделяемой смеси. Если исходить из этого определения, то к аддуктивной кристаллизации следует отнести все те процессы, в которых твердую фазу искусственно создают при таком сочетании условий (температуры, давления и концентрации), при котором эта твердая фаза обычно не существует или по крайней мере не может быть полностью выделена из жидкой фазы. Следовательно, она принципиально противоположна ранее рассмотренному процессу экстрактивной кристаллизации, к которому согласно определению относятся случаи, когда добавляемый дополнительный материал приводит к образованию жидкой фазы в аномальных для ее существования условиях. Потенциально возможно разработать многочисленные процессы аддуктивной кристаллизации, существенно различающиеся по типу дополнительного вещества, используемого для образования молекулярного соединения или аддукта, или по методам введения, удаления и рециркуляции этого дополнительного вещества. В литературе опубликованы сведения о двух предложенных для этой цели процессах, основанных на применении а) четыреххлористого углерода для выделения параксилола и б) мочевины для выделенпя м-нарафиновых углеводородов. [c.77]

В 1806 г. великий шведский химик Ионе Якоб Берцелиус в своей книге Лекции по животной химии дал определение органической химии как раздела физиологии, который описывает состав живых тел (организмов) и протекающие в них химические процессы. Тогда считалось, что органические соединения образуются в результате действия жизненных сил и не могут быть искусственно получены из неорганических веществ. Однако после того как Вёлер в 1828 г. синтезировал из неорганических веществ мочевину (МН2)2СО, эти взгляды были оставлены, и органическую химию стали определять как химию соединений углерода. Со временем вошли в употребление термины биохимия и физиологическая химия для описания учения о веществах, обнаруживаемых в живых организмах, особенно в организме человека, как здорового, так и страдающего от того или иного заболевания, а также для описания химических реакций, протекающих в живых организмах. После 1940 г. достигнуты огромные успехи в определении тонкой молекулярной структуры многих веществ, присутствующих в живых организмах, и в изучении на молекулярном уровне процессов, обусловливающих жизнедеятельность. Эта новая область науки стала настолько важной, что получила собственное название — молекулярная биология. Как биохимия, так и молекулярная биология стали очень обширными направлениями науки. [c.381]

В конденсате и во всех фракциях, за исключением фракции н. к. — 160° С, не были обнаружены н-парафиновые углеводороды. Их присутствие ожидается во фракции н. к. —160° С в количестве до 8%. Для обнаружения н-парафинов был использован метод газожидкостной хроматографии, основанный на определении разности высот пик исходного и депарафипизированно-го с помощью молекулярных сит продукта, и метод комплексообразования с мочевиной и тиомочевиной. [c.26]

Установление первичной структуры начинается с определения аминокислотного состава и молекулярной массы выделенного и очищенного белка. Белки, состоящие из нескольких полнпептидных цепей, разделяются с помощью денатурирующих реагентов (концентрированный раствор мочевины или ДСН) на мономеры. Дисульфидные мостики расщепляют восстановлением меркаптоэтанолом. Для предотвращения дисульфидного обмена и окисления образующихся свободных меркаптогрупп их блокируют каким-либо методом, например алкилированием иодуксусной кислотой с образованием 8-карбоксиметильного производного или цианэтилированием акрилонитрилом. После определения Ы- и С-концевых аминокислот полипептидная цепь расщепляется химически или ферментативно (в нескольких вариантах) на меньшие перекрывающиеся фрагменты. Для каждого фрагмента устанавливается аминокислотная последовательность. И наконец, комбинируя отдельные последователькости, приходят к полной последовательности исходной полипептидной цепи. [c.364]

Монослой полипептидов взаимодействуют также с мочевиной, находящейся в подложке. В присутствии мочевины, как это видно из рис. 127, их монослой сильно расширяются и тем в большей степени, чем выше концентрация мочевины. Однако некоторое число молекул не участвует во взаимодействии с мочевиной, как это иногда имеет место при денатурации белков. В соответствии с этим молекулярный вес полипептида, определенный по измерениям хюверхностного давления на подложках, содержащих мочевину, не зависит от ее концентрации, хотя площадь, приходящаяся на молекулу, с увеличением концентрации мочевины увеличивается. Мочевина может соединяться с пептидными группами основной цепи с помощью водородных связей. Хотя, как указывалось выше, введение соли в подложку оказывает большое влияние на кривые зависимости п — А для пленок полиэлектролитов, в случае полимеров-неэлектролитов такого влияния практически не наблюдается [62]. [c.311]

Терентьев, Туркельтауб, Бондаревская и Домочкина ([10] предложили метод хроматографического определения азота с использованием восстановительного способа разложения. Навеску органического вещества (5—10 мг) в платиновой или кварцевой лодочке разлагали в замкнутом объеме кварцевой трубки, содержащей слой никелированной сажи, в атмосфере гелия при давлении 20 мм рт. ст. Температура разложения 900° С. При анализе веществ состава С, Н, О, N на хроматограмме отмечаются два пика СО и N2. Авторы указывают, что в некоторых случаях в продуктах разложения в незначительных количествах появляется метан (например при анализе аце-танилида). Разделение проводили на колонке, заполненной молекулярными ситами 5А. Расчет азота проводили по площадям пиков хроматограмм, сравнивая их с калибровочными кривыми, которые строили по площадям пиков, полученным при разложении, различных навесок мочевины. Точность определения азота 0,4%. [c.108]

Образование аддуктов таких углеводородов с мочевиной возможно, если линейный отрезок молекулярной цепи содержит определенное, зависящее от положения метильной группы число углеродных атомов. Так, если метильная группа находится в положении 2, 3, 4 или 5, то для возможности образования аддукта в линейном участке цепи должно содержаться соответственно 11, 11, 15 или 16 углеродных атомов. Циклические углеводороды также способны к образованию адд,уктов, если они имеют [c.270]

Понятия комплексы и аддукты стали широко употребляться в процессе становления синтетической органической химии для обозначения веществ, образование которых, по-видимому, обусловлено не классическими связями. К этой группе стали относить многие вещества, связи в которых были недостаточно хорошо изучены до возникновения новых представлений об пх структуре. К таким соединениям принадлежат издавна известные в органической химии пикраты многоядерпых углеводородов. Вещества, которые иногда считали молекулярными соединениями, или аддуктами, по-видимому, являются бинарными без дискретных связей между двумя компонентами. Они имеют определенные температуры плавления, а мольное отношение составляющих в них всегда выражено целыми числами. Устойчивость их кристаллической структуры обусловлена довольно сильными взаимодействиями между противоположно ориентированными перманентными диноляки, дипольными индукционными эффектами и дисперсионными силами, что и обусловливает соединение компонентов в целочисленных мольных отношениях. Другие подобные комплексы с целочисленными отношениями устойчивы благодаря возникновению прочных водородных связей между компонентами (например, мочевина — ацетон, мочевина — перекись водорода и мочевина или тиомочевина — холестерин). Во многих подобных соединениях (например, в ферроцене и координационных соединениях вернеровского типа) связи довольно прочны и разнообразны по своей природе, в том числе л -связи. Все эти соединения в растворе, из которого они кристаллизуются, находятся в ассоциированной форме, с тем же целочисленным соотношением компонентов, что и в кристаллической форме. [c.452]

Хроматография гаироко применяется для разделения и очистки полинуклеотидов. Методы, разработанные для определения РНК и ДНК, будут рассмотрены в следующих главах подробное описание этих методов можно найти в соответствующих обзорах [32, 33]. При разработке методов хроматографирования были испытаны колонки из фосфата кальция [34—36], метилированного альбумина [37, 38], полиметакрилата магния (амберлит ШС-50) [39, 53] и като-2 (катионный крахмал) [54] наилучшие результаты были получены при использовании замещенных производных целлюлозы, например эктеола-целлюлозы (целлюлоза, обработанная апихлоргидрином и триэтаноламином) [19, 23, 31, 40—42] или ДЭАЭ-целлюлозы (диэтиламиноэтилцеллюлоза) [43, 44]. При использовании таких колонок наиболее эффективное разделение олигонуклеотидов, содержащих от двух до семи нуклеотидов, достигается путем градиентной элюции мочевиной. С успехом применяются также колонки с сефадексом, обладающим свойством молекулярного сита [45]. Для очистки информационной РНК употребляют колонки из ДНК [46, 47, 48, 49] (стр. 234). [c.34]

Определение содержания общего формальдегида (СН2О) в карбамидных смолах лежит в основе рецептурного молярного отношения формальдегида и мочевины, а следовательно, и молекулярной массы. Так, изготовление смолы при молярном отношении формальдегида к мочевине равном 1,5 обеспечивает содержание общего формальдегида в 46—487о (в пересчете на сухое вещество), в то время как в смолах, изготовленных при молярном отношении формальдегида к мочевине равном 2, содержание общего формальдегида составляет 50—52%. В связи с тем, что это определение приобретает особое значение, ниже приводится разбор методики анализа в деталях, обеспечивающих максимальную точность и воспроизводимость результатов. [c.23]

Сделано несколько попыток решить, в какой мере увеличение молекулярного веса вызвано ковалентными сшивками, а в какой — агрегацией частей белка посредством водородных связей. Однако успешное диспергирование белкового геля тиогликолевой кислотой является наиболее показательным опытом (см. стр. 255). В случае агрегатов, образованных из серумальбумина, введение мочевины приводит к частичному диспергированию. Это указывает на то, что по крайней мере часть увеличения молекулярного веса вызвана связыванием молекул водородными связями [А18]. В опытах с ультрацентрифугированием фибриногена найдены некоторые компоненты низкого молекулярного веса это доказывает, что происходит некоторая деструкция, и определенно указывает на то, что водородные связи обусловливают по крайней мере часть наблюдаемого возрастания молекулярного веса. [c.258]