Справочник химика 21

Химия и химическая технология

Статьи Рисунки Таблицы О сайте English

Плазматическая перенос ионов

    Другим важным примером активного транспорта может служить перенос ионов Na и К через плазматическую мембрану во всех животных клетках. Лучше всего изучен этот процесс в эритроцитах. Установлено, что концентрация К в цитозоле эритроцитов достигает примерно 110 мМ, тогда как в плазме крови она составляет всего [c.428]

    Наиболее интенсивно изучается активный перенос ионов N3+ и К+ через плазматическую мембрану [302]. Сущность этого явления состоит в том, что внутриклеточная жидкость имеет высокое содержание ионов К+ и низкое содержание ионов 1Ыа+, во внеклеточной среде, наоборот, выше содержание ионов Ма+. Для поддержания указанных градиентов концентраций моновалентных катионов и, особенно, для их восстановления после деполяризации мембраны обязательно должно происходить удаление из клетки ионов Ыа+ и активное всасывание в клетку ионов К" ". Эта система транспорта, сосредоточенная в плазматической мембране, называется натриевым насосом . Энергия, необходимая для активного транспорта ионов Ыа+ против градиента концентрации, обеспечивается расщеплением АТФ (до АДФ и неорганического фосфата). Подобный распад АТФ катализируется ферментом—(Ка+-1-К )-активированной АТФ-азой. [c.380]


    Например, концентрация ионов К " внутри эритроцитов приблизительно в 35 раз выше, чем в плазме крови. Для натрия, наоборот, внеклеточная концентрация ионов Ма+ примерно в 15 раз выше, чем внутри клетки. Для поддержания градиентов концентрации ионов К и Ма" " на плазматической мембране ионы К должны постоянно переноситься (транспортироваться) из внешней среды, где их концентрация ниже, внутрь клеток, где их концентрация выше (рис. 2.12). Ионы Ыа , наоборот, транспортируются из внутренней среды клеток от низкой концентрации во внешнюю среду с более высокой концентрацией. [c.65]

    Этот процесс приводит к повышению энергии Гиббса AG, а следовательно, в соответствии со 2-м законом термодинамики, самопроизвольно протекать не может. Нормальное распределение ионов обеспечивается работой натрий-калиевых насосов. Эти насосы, обеспечивающие перенос ионов через плазматическую мембрану против градиента концентрации и поддерживающие этот градиент, требуют большой затраты энергии. Поэтому. [c.236]

    Активный транспорт может служить для переноса одного вещества в одном направлении либо для переноса двух веществ в одном или в противоположных направлениях. В последнем случае он называется сопряженным активным транспортом. Примером типичного сопряженного активного транспорта является работа натрий-калиевого насоса, который локализован в плазматической мембране практически всех клеток организма и переносит ионы натрия и калия против градиента концентраций с использованием энергии гидролиза АТФ. [c.446]

    В качестве примера первично-активного транспорта можно привести транспорт, осуществляемый На /К -АТФ-азой, как одной из наиболее важных и широко распространенных активных транспортных систем в плазматической мембране животных клеток. Эта система, получившая название Na -К -насоса, отвечает за поддержание в клетке высокой концентрации и низкой Na путем переноса внутрь клетки, а Na из клетки наружу против градиента их концентрации и поэтому требующей затраты АТФ. Оказывается, в животной клетке внутриклеточная концентрация ионов калия примерно в 30 раз выше, а ионов натрия в 10 раз ниже, чем в окружающей среде. Такая асимметрия ионного состава определяет содержание воды и ионный состав в клетке, электрическую возбудимость нервных и мышечных волокон, служит движущей силой для транспорта в клетку сахаров и аминокислот, является важным фактором в процессе биосинтеза белка. [c.311]


    Для аэробных бактерий также характерен процесс переноса электронов от NAD-зависимых субстратов на кислород и сопряженное с этим процессом фосфорилирование цитозольного ADP до АТР. Дегидрогеназы находятся в цитозоле бактериальной клетки, а переносчики электронов дыхательной цепи-в ее плазматической мембране, где локализуются также и механизмы сопряжения, генерирующие АТР. При переносе электронов бактериальные клетки тоже выкачивают ионы Н наружу. Это сходство в организации цепей переноса электронов (рис. 17-23) у бактерий и митохондрий служит дополнительным доводом в пользу той точки зрения, согласно которой [c.535]

    Глюкоза, аминокислоты и ионы диффундируют из фильтрата в клетки проксимального извитого канальца, откуда активно переносятся транспортными системами плазматической мембраны в межклеточные пространства и щели лабиринта с помощью встроенных в мембрану белков-переносчиков. [c.27]

    Было показано, что в принципе (в модельных условиях) во вторичном активном переносе может участвовать как пассивная, так и активная компонента мембранного потенциала. Так, в опытах нашей лаборатории [101] вторичный активный транспорт сахарозы в везикулах плазматических мембран клеток флоэмы борщевика, оцениваемый по изменению светопропускания суспензии везикул, наблюдался в отсутствие АТФ под влиянием диффузионного калиевого потенциала, создаваемого на мембране градиентом ионов К+ в присутствии валиномицина (рис. 19). Эти эксперименты прямо свидетельствуют об участии Е во вторичном активном транспорте. Результаты в пользу такого заключения получены недавно и в других лабораториях [484]. [c.77]

    Стадия 2. Одновременно с накоплением несбраживаемых органических кислот, которое привело к выработке протонного насоса, использующего энергию АТР, истощались запасы сбраживаемых веществ, за счет окисления которых можно было осуществлять транспорт метаболитов и другие важные жизненные процессы. В этих условиях наиболее успешно развивались те бактерии, которые были способны выводить ионы Н без сопряжения с гидролизом молекул АТР, так что последние сохранялись для других надобностей. Давление отбора, вероятно, привело к появлению первых белков, связанных с мембраной, которые могли использовать перенос электронов между молекулами с различным окислительно-восстановительным потенциалом в качестве источника энергии для откачивания протонов через плазматическую мембрану. Для некоторых из этих белков могли найтись подходящие доноры и акцепторы электронов среди накапливающихся несбраживаемых органических кислот. Подобные электрон-транспортные белки встречаются и у ньше живущих бактерий например, на рис. 9-55 показано, как некоторые бактерии откачивают протоны за счет относительно небольшого количества энергии, извлекаемого при переносе электронов с муравьиной кислоты на фумаровую. [c.49]

    Транспорт ионов Na" и играет особо важную роль в почках, поскольку именно почки поддерживают требуемые концентрации этих жизненно необходимых катионов в организме путем сохранения ионов Na и вьщеления ионов К . Практически все клетки млекопитающих содержат ионы К в относительно высокой концентрации, а ионы Na" " в относительно низкой. В то же время в плазме крови и в большинстве других внеклеточных жидкостей концентрация ионов Na" значительно превышает концентрацию ионов К (рис. 24-19). В плазматической мембране большинства клеток содержится Na , К -АТРаза (разд. 14.16), которая переносит ионы К внутрь клетки и одновременно выводит ионы Na наружу. Этот энергозависимый процесс сопряжен с гидролизом находящейся в цитозоле АТР на ADP и фосфат. Na, К -АТРаза клеток почечных канальцев обеспечивает по- [c.764]

    Строение N3+, К -АТФазы. Это тетрамер а2Р2 ММ 270 кДа. а-Субъединица (95 кДа) пронизывает мембрану насквозь и содержит на внутренней стороне участки для связывания АТФ и Ыа , а на внешней стороне — К+ и сердечных гликозидов. р-Субъединицы (40 кДа) содержат углеводные группы, расположенные на наружной стороне плазматической мембраны. Она способствует правильной Ориентации фермента в липидном бислое. Перенос ионов происходит за счет изменения конформации фермента при его фрсфорили-ровании дефосфорилировании за счет АТФ. В присутствии Ка" активируется гидролиз АТФ и происходит фосфорилирование фермента, дефосфорилирование наблюдается в присутствии К ". [c.103]

Рис. 20-66. Схема, показывающая, каким образом оплодотвореппая яйцеклетка бурой морской водоросли Еисих может стать поляризоваппой (1) В ответ па одно из указанных асимметричных воздействий внешней среды в плазматической мембране возникают (или активизируются) каналы для переноса ионов Са и насосы в плазматической мембране, что определяет поток ионов Са через клетку (2). Такая, вначале лабильная ось, фиксируется с участием актина и на будущем базальном конце откладываются отрицательно заряженные полисахариды клеточной стенки (3). Начальная структурная асимметрия закрепляется при первом делении клетки, в результате которого образуются большая апикальная и маленькая базальная клетки. Полярность клеток высших растений может определяться аналогичным асимметричным распределением ионных каналов и Рис. 20-66. Схема, показывающая, каким образом оплодотвореппая яйцеклетка <a href="/info/1879230">бурой морской</a> водоросли Еисих может стать поляризоваппой (1) В ответ па одно из указанных асимметричных <a href="/info/1712648">воздействий внешней среды</a> в плазматической <a href="/info/1902898">мембране возникают</a> (или активизируются) каналы для <a href="/info/4026">переноса ионов</a> Са и насосы в плазматической мембране, что определяет <a href="/info/135876">поток ионов</a> Са <a href="/info/200488">через клетку</a> (2). Такая, вначале лабильная ось, фиксируется с участием актина и на будущем базальном конце откладываются отрицательно заряженные <a href="/info/217643">полисахариды клеточной стенки</a> (3). Начальная <a href="/info/1379020">структурная асимметрия</a> закрепляется при <a href="/info/700590">первом делении</a> клетки, в результате <a href="/info/1493562">которого образуются</a> большая апикальная и маленькая <a href="/info/509007">базальная клетки</a>. Полярность клеток высших растений может определяться аналогичным <a href="/info/1304688">асимметричным распределением</a> ионных каналов и

    В многоклеточном организме существует множество межклеточных контактов. Образование таких контактов возможно лишь при непосредственном взаимодействии плазматических мембран отдельных клеток. Для межклеточных коммуникаций в клеточных мембранах формируются специализированные области. С помощью щелевых контактов регулируется перенос ионов и малых молекул через узкие гидрофильные поры, соединяющие цитоплазму соседних клеток. Эти поры формируются из субъединиц, и соответствующие структуры называются кон-нексонами их структура была исследована с помощью рентгеновской кристаллографии.. Согласно схеме, представленной на рис. 42.22, коннексоны состоят из щести белковых субъединиц, которые пронизывают мембрану и связаны с аналогичными структурами соседней клетки. Каждая субъединица, по-видимому, является достаточно жесткой структурой, но в ответ на специфические химические сигналы субъединицы меняют относительную ориентацию (ср. с поведением гемоглобина при окислении рис. 6.12) таким образом, что образуется центральная пора диаметром около 2 нм. По-видимому, через это центральное отверстие ионы и малые молекулы и переходят из одной клетки в другую, и этот процесс регулируем. [c.146]

    Вакуоль шрает важную роль в гомеостазе растительных клеток, которые подвержены самым разнообразным воздействиям внешней среды. Если, например, pH среды падает, приток ионов Н " в цитоплазму компен спру ется, по крайней мере, частично, за счет усиления переноса ионов Н" в вакуоль. Сходным образом многие клетки растений поддерживают тургорное давленпе на удивительно постоянном уровне несмотря на значительные изменения в окружающей их среде. Это осуществляется благодаря изменению осмотического давления в цитоплазме и в вакуоли в результате контролируемого распада и повторного синтеза в вакуоли таких полимеров, как полифосфаты. Тургорное давление может поддерживаться постояршым и за счет изменения скорости переноса через плазматическую мембрану и тонопласт. Проницаемость этих двух мембран зависит от определенного набора транспортных белков, переносяпщх спецпфическпе сахара, аминокислоты и другие метаболиты через каждый липидный бислой (см. гл. 6). [c.415]

    Впервые существование иои-проводящих мембранных каналов было постулировано еще в 40—50-х годах нашего столетия при изучении проблемы проведения нервного импульса (А. Ходжкин, Э. Ф, Хаксли). Позднее получила распространение концепция биологических насосов , обеспечивающих активный транспорт ионов череэ плазматическую мембрану клетки. Принцип переноса веществ и ионов через селективные каналы биологических мембран хорошо согласовывался с данными теории и кинетическими экспериментами. Все более очевидным становился факт, что роль каналов в мембранах выполняют сложиые белковые комплексы, однако их выделение и структурное изучение представило значительную проблему. [c.598]

    Разность потенциалов между внутренней и наружной сторонами плазматической мембраны-так называемый мембранный потенциал-зависит от распределения электрического заряда (рис. 18-6). Заряд переносят через мембрану нервной клетки небольшие неорганические иошл, главным образом N8, К , С1 и Са , причем проходят 0Ю1 через липидный бислой только по специальным каналам (см. тл. 6). При открывании или закрывании ионных каналов распределение зарядов изменяется и происходит сдвиг мембранного потенциала. Таким образом, передача сигнала нервными клетками зависит от каналов с регулируемой проницаемостью-так называемых каналов с воротами . Наиболее важны два типа каналов  [c.76]

    Как работают такие регуляторные системы Эксперименты, проведенные с целью изучить быстрые реакции растительных клеток на изменения тургорного давления, показали, что тензодатчики , возможно, находятся в плазматической мембране. Так, напрнмер, внезапное понижение тургорного давления индуцирует активный перенос определенных молекул нли ионов, чаще всего ионов К , внутрь клетки, тогда как повыщение тургорного давления вызывает обратный эффект. Этн процессы протекают очень быстро и, по-видимому, связаны с какими-то изменениями в спещ1фнческих транспортных белках плазматической мембраны. В отличие от этого образование осмотически активных молекул из запасных полимеров происходит более медленно. [c.167]

    М (pH 1,0), тогда как концентрация ионов Н в клетках составляет приблизительно 10 М (pH 7,0). Это означает, что обкладочные клетки обладают способностью секретировать ионы водорода даже против градиента порядка 10 1. По-видимому, эти клетки имеют какие-то очень активные мембранные насосы для секреции ионов водорода, так как для поддержания столь высокого градиента концентрации требуется значительное количество энергии. Перенос веществ через мембраны против градиента концентрации называют активным транспортом. Образование желудочной НС стимулируется особым, связанным с мембраной ферментом-TaK называемой" Н-транспортирующей АТРазой. При образовании желудочного сока на каждую молекулу цитозольного АТР, гидролизованного до ADP и фосфата, из цитозоля наружу через плазматическую мембрану выводятся два иона Н . [c.428]

    Внешняя граница клетки образована клеточной (или плазматической) мембраной (или оболочкой). Типичная двох1ная мембрана (называемая элементарной мембраной) толщиной около 80 А, очевидно, представляет собой относительно жесткую и упорядоченную структуру, состоящую И.З бимолекулярного слоя полярных липидов, покрытого с обеих сторон белковыми пленками. Эту мембрану ни в коем случае нельзя считать гомогенной на всем ее протяжении. Наоборот, она представляет собой мозаику из различных функциональных единиц, слегка различающихся по своей структуре, высокоизбирательных и специализированных в клетках разных типов. Мембрана определяет такие весьма разнообразные и вместе с тем чрезвычайно ванлные характеристики клетки, как избирательная проницаемость, активный перенос питательных веществ и ионов (т. е. их поступление в клетку), контрактильные свойства, способность клеток вступать в ассоциацию друг с другом и распознавать друг друга (например, при формировании органов). Плазматические мембраны могут слунгить также местом протекания некоторых сложных ферментативных процессов, таких, как гликолиз или даже синтез белка (у микроорганизмов). [c.248]

    Первые успехи в исследовании Ма , К+-АТФазы принадлежат Дж. С.Скоу (1957). Он изучал расщепление АТФ в препаратах мембран из нервов краба и показал, что гидролиз значительной части АТФ зависит от совместного действия ионов Ма и К. Стимулируемая ионами Ма и К+-АТФазная активность подавляется уабаином. Повышение концентрации уабаина оказывало одинаковое подавляющее действие как на транспорт Ма , так и на активность АТФазы. Результаты количественных измерений показали, что при гидролизе одной молекулы АТФ происходит транспорт двух ионов К внутрь клетки и выведение трех (иногда двух) ионов Ма из клетки. Таким образом, сложилось представление, что Ма -насос представляет собой локализованную в плазматической мембране клетки ферментную систему, осуществляющую перенос Ма из клетки во внеклеточную среду, а К — в обратном направлении. Насос транспортирует ионы Ма против градиентов электрохимических потенциалов за счет сопряжения ионообменных процессов с гидролитическим расщеплением АТФ Mg2+-зависимой Ма , К+-стимулируемой АТФазой. [c.151]

    Клеточные мембраны, так же как и искусственные липидные бислои, способны пропускать воду и неполярные молекулы за счет простой физической диффузии. Олнако клеточные мембраны пропинаемы и для различных полярных молекул, таких, как сахара, аминокислоты, нуклеотиды и многие другие метаболиты, которые проходят через синтетические бислои чрезвычайно медленно. За перенос подобных растворенных веществ через клеточные мембраны ответственны специфические белки, называемые мембранными транспортными белками. Они обнаруживаются во всех типах биологических мембран и могут сильно отличаться друг от друга. Каждый конкретный белок предназначен для определенного класса молекул (например, неорганических ионов, Сахаров или аминокислот), а нередко лищь какой-то разновидности молекул из этих классов. Специфичность транспортных белков была впервые показана, когда обнаружилось, что мутации в олном-единственном гене приводят к исчезновению у бактерий способности гранспортировать определенные сахара через плазматическую мембрану. Аналогичные мутации теперь известны и у людей, страдающих различными наследственными болезнями, при которых нарушается транспорт тех или иных веществ в почках или кишечнике. Например, у индивидуумов с наследственной болезнью цистинурией отсутствует способность транспортировать определенные аминокислоты (включая цистин - связанный дисульфидной связью димер цистеина) из мочи или кишечника в кровь. В результате происходит накопление цистина в моче, что приводит к образованию цистиновых камней в почках. [c.381]

    Эти эксперименты неопровержимо доказали, что АТР поставляет энергию для перекачивания ионов натрия и калия через плазматическую мембрану тем не менее оставалось непонятным, как именно гидролиз АТР связан с транспортом ионов. Дальнейшие исследования показали, что концевая фосфатная группа АТР в присутствии Na" переносится на остаток аспарагиновой кислоты в молекуле АТРазы. Связанная с АТРазой фосфатная группа затем гидролизуется в присутствии К", и именно этот последний этап ингибируется уабаином. Na"-3aBH nMoe фосфорилирование сопряжено с изменением конформации АТРазы, что приводит к выведению натрия из клетки. Наоборот, К"-зависимое дефосфорилирование, осуществляемое вслед за этим, обусловливает транспорт ионов калия внутрь клетки и возвращение АТРазы в первоначальное состояние (рис. 6-49). [c.385]

    У бактерий и растений большинство систем активного транспорта, приводяшихся в действие ионными градиентами, используют в качестве котранспортируемого иона Н", а не Na". В частности, активный транспорт большей части Сахаров и аминокислот в бактериальные клетки обусловлен градиентом Н" через плазматическую мембрану. Наиболее хорошо изученный пример гакого рода - переносчик лактозы (пермеаза). Этот трансмембранный белок, состоящий из одной полипептидной цепи (длиной около 400 аминокислотных остатков), но-видимому, пересекает липидный бислой по крайней мере девять раз. Он осуществляет Н"-зависимый симнорт с каждой транспортируемой в клетку молекулой лактозы переносится один протон. [c.391]

    В отличие от белков-переносчиков белковые каналы (или каналообразующпе белкп) формируют в мембранах поры, заполненные водой. При этом каналообразующие белки внешних мембран бактерий (а также митохондрий и хлоропластов) образуют большие, относительно неспецифичпые поры, а в плазматических мембранах животных и растительных клеток эти поры малы по размеру и высоко специфичны Почти все белковые каналы служат для специфического транспорта ионов и обсуждаются здесь под названием ионных каналов. Ионные каналы обеспечивают перенос приблизительно 10 ионов в секунду, что более чем в 100 раз больше скорости транспорта, осуществляемого любым из известных белков-переносчиков. Ионные каналы никогда не работают совместно [c.394]

    С-киназа, активированная диацилглицеролом и Са , переносит концевую фосфатную группу с АТР на специфические сериновые или треониновые остатки белков-мишеней, которые в разных клетках различны. Например, во многих животных клетках С-киназа, по-видимому, фосфорилирует и тем самым активирует На Н -обменник плазматической мембраны, контролирующий внутриклеточный pH (разд. 6.4.10) повышение pH в клетке может способствовать пролиферации. Концентрации С-киназы выше всего в головном мозгу, где помимо прочего она фосфорилирует ионные каналы нейронов, изменяя таким образом их свойства и возбудимость клеток (разд. 19.5). В некоторых клетках активация С-киназы усиливает транскрипцию определенных генов. В промоторах по меньшей мере некоторых из этих генов есть общая энхансерная последовательность, узнаваемая регуляторним белком, активность которого растет при активации С-киназы (см. табл. 10-1). Нока, однако, остается невыясненггьгм, как С-киназа активирует этот белок - фосфорилируя (и соответствегшо активируя) его прямо или же действуя косвенно, через каскад протеинкиназ. [c.366]

    Астроциты (рис. 19-8) - самые многочисленные и разнообразные глиальные клетки, но и самые загадочные их функпия все еще в значительной части не выяснена, хотя кажется несомненным, что они играют важную роль в процессе построения нервной системы (разд. 19.7.2) и регулируют химический и ионный состав среды, окружающей нейроны. Например, одна из разновидностей астроцитов имеет отростки с расширенными концами, которые, будучи связаны соединительными комплексами вроде встречающихся в эпителиях (разд. 14.1), образуют изолирующий барьер на внешней поверхности центральной нервной системы. Другие отростки этих же астроцитов образуют сходные концевые ножки на кровеносных сосудах, эндотелиальные клетки которых случае капилляров и венул) соединяются здесь необычайно развитыми плотными контактами, так что создается гематоэнцефалический барьер. Этот барьер предотвращает проникновение из крови в ткань мозга водорастворимых молекул, если их не переносят специальные транс портные белки, находящиеся в плазматической мембране эндотелиальных клеток. Таким образом, нейроны оказываются в контролируемой и защищенной среде, что имеет решающее значение для молекулярного механизма передачи электрических сигналов. [c.294]

    Как уже говорилось в гл. 6, разность потенциалов между внутренней и наружной сторонами плазматической мембраны - мембранный потенциал - зависит от распределения электрического заряда (разд. 6.4.15). Заряд переносят через мембрану нервной клетки малые неорганические ионы, главным образом Ка ", К С1 и Са , которые проходят через липидный бислой по специфическим ионоселективным каналам, образуемым специальными трансмембранными белками (разд. 6.4.14). При открытии и закрытии ионных каналов распределение заряда изменяется и происходит сдвиг мембранного потенциала. Таким образом, передача сигналов нервными клетками зависит от каналов с регулируемой пропицаемостью. [c.295]

Рис. 19-11. Метод фиксации напряжения, с помощью которого изучают поведение ионных каналов, измеряя ток, протекающий через плазматическую мембран , когда мембранный потенциал поддерживается на каком-либо постоянном уровне. Используются два внутриклеточных электрода - один для контроля мембранного потенциала, а другой для введения в клетку гока определенной величины. Ток, входящий в клетку через электрод, вытекает наружу через ионные каналы в плазматической мембране на рисунке эта цепь выделена цветом. До тех пор пока мембранный потенциал имеет постоянную величину, ток 1, входящий в аксон через электрод, полностью уравновешивается суммарным током, вытекающим из клетки через всю поверхность аксона (в противном случае общий заряд внутри клетки изменился бы, что привело бы к сдвигу мембранного потенциала). Мембранный потенциал можно изменять, уменьшая или увеличивая ток. вытекающий наружу. Электронное устройство, фиксирующее напряжение, следит за мембранным потенциалом V и регулирует величину тока ] гаким образом, чтобы поддерживать V на постоянном уровне любое небольшое отклонение от заданного значения Ус автоматически приводит к изменению величины тока, благодаря чему мембранный потенциал не отклоняется от фиксированного значения У= Ус. Для того чтобы выяснить, как изменяется поведение мембранных каналов с течением времени, нужно резко переключить потенциал с одного фиксированного уровня на другой и проследить за соответствующими токами с помощью осциллоскопа. Измеряя величину тока при разных концентрациях Ма и в среде, можно вычислить, какая часть трансмембранного тока переносится теми и другими ионами, и определить вклад в этот ток N -селективных и К - селективных каналов. Метод фиксации напряжения может быть приспособлен для анализа поведения отдельных молекул, образующих ионные каналы, которые находятся в маленьких участках мембраны, закрывающих отверстие микроэлектрода в этом случае методику называют методом пэтч-клампа . Рис. 19-11. <a href="/info/1408373">Метод фиксации напряжения</a>, с помощью которого изучают <a href="/info/263258">поведение ионных</a> каналов, измеряя ток, <a href="/info/1117739">протекающий</a> <a href="/info/510621">через плазматическую</a> мембран , когда <a href="/info/4005">мембранный потенциал</a> поддерживается на каком-либо постоянном уровне. Используются два <a href="/info/511085">внутриклеточных электрода</a> - один для <a href="/info/1890338">контроля мембранного</a> потенциала, а другой для введения в клетку гока <a href="/info/39290">определенной величины</a>. Ток, входящий в <a href="/info/200488">клетку через</a> электрод, вытекает наружу <a href="/info/104398">через ионные</a> каналы в плазматической мембране на рисунке эта <a href="/info/1708918">цепь выделена</a> цветом. До тех пор <a href="/info/1339391">пока мембранный потенциал</a> имеет <a href="/info/500043">постоянную величину</a>, ток 1, входящий в аксон <a href="/info/1500069">через электрод</a>, полностью уравновешивается <a href="/info/1043804">суммарным током</a>, вытекающим из <a href="/info/200488">клетки через</a> всю поверхность аксона (в противном случае <a href="/info/1735774">общий заряд</a> <a href="/info/1409039">внутри клетки</a> изменился бы, что привело бы к сдвигу <a href="/info/4005">мембранного потенциала</a>). <a href="/info/4005">Мембранный потенциал</a> <a href="/info/1643194">можно изменять</a>, уменьшая или увеличивая ток. вытекающий наружу. <a href="/info/39401">Электронное устройство</a>, фиксирующее напряжение, следит за мембранным потенциалом V и <a href="/info/130915">регулирует величину</a> тока ] гаким образом, чтобы поддерживать V на постоянном уровне любое небольшое отклонение от заданного значения Ус <a href="/info/1815560">автоматически приводит</a> к <a href="/info/1712151">изменению величины тока</a>, благодаря чему <a href="/info/4005">мембранный потенциал</a> не отклоняется от фиксированного значения У= Ус. Для того чтобы выяснить, как изменяется <a href="/info/1488993">поведение мембранных</a> каналов с течением времени, нужно резко переключить потенциал с одного фиксированного уровня на другой и проследить за соответствующими токами с помощью осциллоскопа. <a href="/info/1545274">Измеряя величину</a> тока при <a href="/info/30656">разных концентрациях</a> Ма и в среде, можно вычислить, какая часть трансмембранного <a href="/info/350615">тока переносится</a> теми и <a href="/info/366848">другими ионами</a>, и определить вклад в этот ток N -селективных и К - селективных каналов. <a href="/info/1408373">Метод фиксации напряжения</a> может быть приспособлен для <a href="/info/442698">анализа поведения</a> <a href="/info/362978">отдельных молекул</a>, <a href="/info/488539">образующих ионные</a> каналы, <a href="/info/1597898">которые находятся</a> в маленьких участках мембраны, закрывающих отверстие микроэлектрода в этом случае методику называют методом <a href="/info/1339534">пэтч</a>-клампа .
Рис. 20-27. Специализированные передаточные клетки в небольшой жилке листа. Элемент ситовидной трубки флоэмы (СТ) окружен тремя передаточными клетками (ПК). Внячивания клеточной стенки, выстланные плазматической мембраной, увеличивают поверхность этих клеток в двадцать раз. Передаточные клетки обнаруживаются в тех областях растения, в которых скорость переноса растворенных веществ через плазматическую мембрану особенно высока, например, там, где неорганические ионы перекачиваются из ксилемы в ткани или, как в данном Рис. 20-27. Специализированные <a href="/info/510309">передаточные клетки</a> в небольшой жилке листа. Элемент <a href="/info/103653">ситовидной трубки</a> флоэмы (СТ) окружен тремя <a href="/info/510309">передаточными клетками</a> (ПК). Внячивания <a href="/info/98958">клеточной стенки</a>, выстланные плазматической мембраной, увеличивают поверхность этих клеток в двадцать раз. <a href="/info/510309">Передаточные клетки</a> обнаруживаются в тех <a href="/info/653242">областях растения</a>, в <a href="/info/685547">которых скорость</a> <a href="/info/594423">переноса растворенных</a> <a href="/info/140354">веществ через</a> плазматическую <a href="/info/1786176">мембрану особенно</a> высока, например, там, где <a href="/info/101671">неорганические ионы</a> перекачиваются из ксилемы в ткани или, как в данном
    В эукариотических одноклеточных организмах (дрожлсах, грибах, простейших) также возможно восстановление ионов тяжелых металлов внутри и на поверхности клетки. Внутриклеточные доноры электронов поставляются системами переноса электронов, локализованными в митохондриях. Восстановление на поверхности осуществляется редокс-системами плазматической мембраны эукариот. [c.458]

    Транспорт через плазматическую мембрану-это не единственный механизм удаления Са из цитозоля. В самом деле, площадь плазматической мембраны в 10-100 раз меньше общей площади мембран различных клеточных органелл, накапливающих Са . Мембранная Са -АТРаза позволяет эндоплазматическому ретикулуму (и в особенности саркоплазматическо-му ретикулуму мьппечных клеток) поглощать из цитозоля большие количества ионов Са " против крутого концентрационного градиента, а митохондрии используют для той же цели электрохимический градиент на своей внутренней мембране, создаваемый за счет переноса электронов при окислительном фосфорилировании (разд. 9.1.8). [c.269]


Смотреть страницы где упоминается термин Плазматическая перенос ионов: [c.429]    [c.151]    [c.415]    [c.151]    [c.151]    [c.434]    [c.435]    [c.94]    [c.474]    [c.76]    [c.379]    [c.408]    [c.417]    [c.459]    [c.148]    [c.124]   
Основы биохимии Т 1,2,3 (1985) -- [ c.425 , c.428 , c.764 ]




ПОИСК





Смотрите так же термины и статьи:

Ионное без переноса



© 2025 chem21.info Реклама на сайте