Бумага буферными растворами

Смачивание полосок фильтровальной бумаги буферным раствором. Перед смачиванием на полоске фильтровальной бумаги карандашом отмечают место, соответствующее концу рамки и место нанесения образца. После этого бумажные полоски равномерным движением погружают и проводят через буферный раствор, заполняющий стеклянный сосуд. Для погружения концы полоски берут пинцетами, правый конец погружают в буферный раствор, а затем медленно вытягивают его наверх, постепенно погружая в раствор левый конец полоски. Полоску нужно продвигать со скоростью, с которой происходит ее смачивание буферным раствором. После смачивания полоску извлекают из буферного раствора в вертикальном положении и некоторое время ждут, пока стекут последние капли. Затем полоску с обеих сторон промокают несколькими слоями фильтровальной бумаги, лишь слегка прикасаясь к ней, чтобы не [c.47]

А. В стандартных условиях опыта (те же самые бумага, буферный раствор и аппарат) миграция белков в электрическом поле зависит от напряжения. [c.52]

Разработаны методы непрерывного электрофореза на бумаге. Схема установки для непрерывного электрофореза приведена на рис. 14.6в. В этой установке используется висящий вертикально большой лист фильтровальной бумаги, верхний край которого погружен в желоб с буферным раствором. Раствор разделяемой смеси непрерывно подается в одной точке недалеко от верхнего края бумаги. Буферный раствор, [c.467]

II 75. Пропитывание бумаги буферным раствором с pH 6,2 [c.774]

О н р е д е л е н и е содержания цинка Раствор, содержащий цинк, переносят из стакана в мерную колбу вместимостью 200—250 мл, объем раствора доводят дистиллированной водой до метки и тщательно перемешивают. Затем берут из колбы пипеткой две равные части раствора, вносят в стаканы и в каждый стакан добавляют 50 мл дистиллированной воды, нейтрализуют аммиаком из капельницы по универсальной индикаторной бумаге до pH 4—5 по п. 2.3, добавляют 15 мл ацетатного буферного раствора и 3—4 капли индикатора ксиленолового оранжевого. Раствор титруют 0,05 н раствором трилона Б из микробюретки до перехода красно-фиолетовой окраски раствора в желтую. [c.531]

Примечание. Иногда буферной емкости добавляемого буферного раствора с pH = 1.15 не хватает. В этих случаях устанавливают pH по индикаторной бумаге Рифан или рН-метру. [c.228]

Проверку и настройку рН-метра проводят по одному из стандартных буферных растворов (pH 1,68 3,56 4,06 6,86 9,22). Рекомендуется применять стандартный буферный раствор, величина pH которого находится в том же диапазоне, что и pH испытуемого раствора. Перед каждым погружением в стандартный или испытуемый раствор электроды тщательно промывают дистиллированной водой и осторожно удаляют избыток воды с их поверхности фильтровальной бумагой, В стакан наливают стандартный буферный раствор с соответствующим значением pH и опускают в него электроды. [c.118]

Хроматографическое разделение монофосфата, дифосфата и трицикло-фосфата. При охлаждении в смеси поваренной соли со льдом готовят растворы следующих веществ (по 40 мг) в 5 мл воды монофосфат, пирофосфат и триметафосфат. Часть этих растворов смешивают. Следует познакомиться с методикой работы методом хроматографии на бумаге (разд. 38.3.6). При помощи стеклянной палочки или микропипетки отбирают по капле каждого из четырех полученных таким образом растворов и наносят их на бумагу. Используют метод восходящей хроматографии. Для приготовления элюента смешивают 120 мл метанола, 10 мл разбавленной уксусной кислоты (2 мл ледяной уксусной кислоты и 8 мл воды) и 30 мл буферного раствора. Готовят в колбе на 1 л смеси из 133,3 г трихлоруксусной кислоты и 30 мл 25%-ного раствора NH3 и разбавляют дистиллированной водой до метки. [c.552]

Свойства буферных растворов. I. В стаканах приготовь те по 20 мл ацетатного и аммонийного буферных растворов. Для приготовления ацетатного буферного раствора налейте в стакан по 10 мл 0,1 Ai растворов уксусной кислоты и ацетата натрия и перемешайте их стеклянной палочкой. Аналогично из 0,1 Л1 растворов аммиака и хлорида аммония приготовьте аммонийный буферный раствор. С помощью универсальной индикаторной бумаги нли рН-метра определите pH приготовленных растворов. [c.93]

В одну пробирку налейте 1 мл воды, а в другую — 1 мл ацетатного буферного раствора и с помощью универсальной индикаторной бумаги определите их pH. В каждую пробирку добавьте по одной капле 0,1 н. раствора соляной кислоты и опять определите pH растворов. Изменилась ли величина pH воды и ацетатного буферного раствора после прибавления к ним соляной кислоты [c.93]

Выполнение работы. 1. Приготовление стандартных растворов (фторида натрия и построение градуировочного графика. Рассчитывают навеску, необходимую для приготовления 100 мл 0,1 М раствора ЫаР. Близкую к рассчитанной навеску ЫаР взвешивают на аналитических весах, переносят в мерную колбу вместимостью 100 мл, растворяют в воде, добавляют пипеткой 5 мл буферного раствора, доводят до метки дистиллированной водой и хорошо перемешивают. Из полученного раствора путем последовательных разбавлений готовят серию стандартных растворов с концентрацией фторид-ионов Ю 2-10 5 моль/л, добавляя в каждый по 5 мл буферного раствора. Поочередно наливают каждый из приготовленных стандартных растворов, начиная с самого разбавленного, в стакан вместимостью 50 мл, опускают в раствор электроды, выдерживают их 5-10 мин до достижения равновесия и измеряют ЭДС (Е, мВ), следуя инструкции, изложенной на с. 245. Перед каждым измерением электроды тщательно промывают из промывалки дистиллированной водой, а затем просушивают фильтровальной бумагой. [c.250]

Он выполняется следующим образом. На середину полоски плотной, гомогенной фильтровальной (хроматографической) бумаги, пропитанной буферным раствором с определенным значением pH, наносят каплю исследуемого коллоидного раствора. Затем на полоску бумаги накладывают разность потенциалов. Под влиянием образующегося электрического поля отдельные компоненты, содержащиеся в капле, обладающие разными электрофоретическими подвижностями, передвигаются по полоске с различными скоростями. Через некоторое время компоненты распределяются на бумаге в виде стольких зон, различно удаленных от исходной точки, сколько компонентов содержалось в растворе. Полоску высушивают и прогревают для денатурации и фиксации находящихся на ней белков и после этого окрашивают подходящими красителями. В результате проявляется распределение компонентов по длине полоски. Роль бумаги в этом методе сводится к устранению диффузионного и конвекционного перемешивания белков при электрофорезе. [c.210]

Б. Промойте электроды дистиллированной водой и просушите прикосновением фильтровальной бумагой. Если предстоит измерить pH не буферного раствора, желательно электроды и стаканчик для раствора промыть небольшим количеством изу чаемого раствора. [c.222]

Ниже дается описание эксперимента с 0,01 н. раствором трилона Б. Заполните бюретку 0,01 н. раствором трилона до уровня немного ииже нулевого деления и запишите его положение по нижнему краю мениска с точностью 0,025—0,03 мл. Пипеткой на 50—100 мл налейте в коническую колбу (на 250 мл) исследуемую воду и долейте дистиллированной воды до 100 мл, добавьте 5 мл буферного раствора (pH 9—10) и 4—5 капель индикатора эриохрома черного (раствор приобретет красный цвет). Колбу поставьте на лист белой бумаги и по каплям при непрерывном вращательном перемешивании приливайте в колбу из бюретки раствор трилона до перехода окраски от одной капли раствора в синий цвет. Запишите положение уровня раствора в бюретке. Титрование повторите еще 2 раза. Если расхождение в объеме раствора трилона в в одном из опытов будет превышать 0,05—0,07 мл, опыт повто- [c.415]

Белковые смеси анализируют электрофорезом на бумаге. Хроматографическую бумагу пропитывают буферным раствором, поддерживая тем самым необходимое значение pH. Наносят анализируемую смесь и создают электрическое напряжение. По истечении определенного времени (оно зависит от свойств разделяемых белков, носителя и приложенной разности потенциалов) проявляют электрофореграммы химическими и биохимическими методами. [c.216]

После включения и прогрева прибора электроды элемента ополаскивают дистиллированной водой, избыток влаги удаляют фильтровальной бумагой, а затем электрод с термометром погружают в первый буферный раствор (раствор с меньшим значением pH). Органы оперативного управления прибора должны находиться в следующих положениях [c.565]

Известно, что в молекулах аминокислот имеются ионогенные кислотные и основные группы. Поэтому в зависимости от pH среды аминокислоты обнаруживают катионную или анионную подвижность. Если каплю водного раствора аминокислоты поместить на смоченную буферным раствором полоску фильтровальной бумаги, через которую пропускается постоянный электрический ток, то ионы аминокислоты начнут перемещаться к соответствующим электродам. Скорость перемещения ионов при данном напряжении пропорциональна величине их заряда. [c.148]

Подготовка прибора. Прибор устанавливают строго горизонтально при помощи вмонтированных в дно установочных винтов. Электродные кюветы наполняют буферным раствором до одинакового уровня и оба отделения каждой кюветы соединяют друг с другом при помощи полоски фильтровальной бумаги. Пластинки с электродами укрепляют на камере. [c.150]

Для определения кобальта в щелочи три навески по 10 г растворяют каждую в 25 мл воды, растворы нейтрализуют до pH 7 по индикаторной бумаге, добавляют небольшой избыток азотной кислоты (2—3 мл) и растворы выпаривают. Сухой остаток растворяют в 20 мл воды, добавляют 5 мл буферного раствора и далее поступают, как описано при определении кобальта в азотной кислоте. [c.163]

Для определения цинка в металлическом бериллии берут три навески металла по 0,5 г, растворяют каждую в 50 мл соляной кислоты, охлаждают, добавляют аммиак по универсальной индикаторной бумаге до pH 5, прибавляют 1 мл раствора тиосульфата натрия, 5 мл ацетатного буферного раствора и переносят в делительную воронку. В дальнейшем определение цинка проводят в условиях, см. приготовление эталонных растворов. Результаты трех параллельных определений обрабатывают методом математической статистики. [c.223]

Различают свободный электрофорез и электрофорез в поддерживающих средах. При свободном электрофорезе изучаемую смесь белков помещают в буферный раствор, контактирующий с электродами. Установка для свободного электрофореза сложна она имеет фотооптическую систему для регистрации результатов разделения белковой смеси. Второй тип электрофореза предусматривает использование поддерживающих сред (специальной хроматографической бумаги, ацетатной целлюлозы, агарового или крахмального геля и т. п.), которые сначала пропитывают буферными растворами, а затем помещают на них исследуемую белковую смесь. Концы бумажных полос, агаровых или крахмальных блоков и т. п. контактируют обычно с буферным раствором, в который погружены электроды, соединенные с источником постоянного электрического тока (рис. 95 [c.218]

Разновидность метода — бумажный электрофорез, оформление которого значительно проще. В этом методе на полоску однородной непроклеенной бумаги, пропитанной буферным раствором, наносят каплю исследуемого раствора. Концы полоски погружают в сосуды с электродами, заполненные тем же буферным раствором. Под действием поля компоненты движутся с различными скоростями (пропорциональными ) и через некоторое время наступает пространственное их разделение и проявление в виде отдельных пятен после фиксации специальным проявителем. По интенсивности пятен и сдвигу их от начального уровня можно оценить состав и концентрации компонентов в исходном растворе. [c.199]

Прибор, изображенный на фиг. И, представляет собой прямо-угольньп или цилиндрический сосуд, содержащий на дне кашицу из целлюлозного порошка и буфера, и вверху маленький электродный резервуар, также содержащий кашицу с буфером. Электроды представляют собой платиновые проволоки, впаянные в стеклянные трубки, открытые снизу и снабженные клеммами вверху. Полосу бумаги смачивают буферным раствором и слегка просушивают между листами фильтровальной бумаги, пока отношение веса воздушно-сухой полосы к весу содержащегося в бумаге буферного раствора не станет близким к 1 1. Электрофоретическое разделение проводят на полоске бумаги, подвешенной между двумя электродными сосудами, и всю систему заполняют инертной органической жидкостью для отвода тепла от этой полоски. [c.40]

На рис. 168 показано, что pH образца влияет на величину й и качество разделения. Сплошной чертой обозначены нижняя и верхняя границы пятна, а пунктирной — центр тяжести пятна. Одно из благоприятных следствий пропитывания бумаги буферным раствором состоит в том, что ироисходит уменьшение скорости передвижения вещества по бумаге. Кроме того, подбирая pH, можно регулировать величину Л таким образом, чтобы пятна отделялись друг от друга как можно лучше. Согласно Мак-Фарреиу, на пропитанных буферным раст1 ором бумагах величина Я/ аминокислот воспроизводится со средним отклонением около 0,01, если обеспечено полное насыщение камеры и постояш1ая температура. Моляр-ность буферного раствора и химический характер соли не влияют на величину Я/. [c.423]

Для систем второго тина, не отличающихся по значению pH от нервых, pH устанавливают, пропитывая бумагу буферным раствором. Проще всего (по данным Мюнье и сотрудников [6]) пропитать бумагу кислой солью, например 0,5—1 М раствором кислого фосфата калия, и проводить разделение н-пронанолом или к-бутанолом с различным содержанием воды. В такой системе Мюнье [2] удалось, например, очень хорошо отделить алкалоиды от соответствующих им К-окисей. [c.532]

Определение значений pH пги помощи индикаторной бумаги позможно только в водных буферных растворах с не очень высокой концентрацией солей, а также при отсутствии сильных окисляющих веществ. Определение pH производят путем срапнения окраски полоски индикаторной бумаги, смоченной испытуемым раствором, с цветной (сравнительной) шкалой, смоченной тем же раствором. [c.386]

Фотометрическое определение содержания палладия(11) в зоне. Окрашенную зону соединения палладия (П) вырезают, отступив от пятна на 3—5 мм. Бумагу с вырезанным пятном помещают в стакан вместимостью 50 мл, добавляют 4 мл ацетатного буферного раствора, 1—2 мл дистиллированной воды и 0,5 мл 0,5%-ного раствора п-нитрозодиме-тиланилина. Стакан накрывают часовым стеклом и нагревают [c.214]

Для каждой аминокислот1з1 характерна своя величина рТ, которая определяется строением боковой цепи К (ср. табл. 20). Вследствие этого в буферном растворе с постоянным pH разные аминокислоты несут неодинаковые по величине (а иногда — и по знаку) заряды, что сказывается на скорости и направлении их движения в электрическом поле. Это явление используется для электрофоретического разделения аминокислот на бумаге или на крахмале (электрофорез на носителях). Различия в зарядах аминокислот оказывают также влияние на их способность обмениваться с другими ионами. В сочетании с эффектом [c.350]

И менее точен, но зато значительно проще, чем метод Тизелиуса. На полоску фильтровальной бумаги, увлажненной буферным раствором, наносят в форме поперечной черточки или пятна исследуемый биоколлоидный раствор. Полоску помещают в горизонтальном положении в закрытое пространство, а концы ее погружают в буферный раствор, где находятся электроды. После подключения источника электродвижущей силы электрическое поле вызывает движение компонентов, находящихся в черточке или пятне, вдоль полоски. Скорость перемещения компонентов зависит от их электрофоретической подвижности. Через некоторое время электрофорез прекращают, бумагу высушивают и погружают в раствор красителя, который на биоколлоиде адсорбируется сильнее, чем на бумаге. По полученному изображению видно положение компонентов в конце электрофореза, и можно судить об их числе и электрофоретической подвижности. Из сказанного выше видно, что бумага играет роль пористой среды, препятствующей растеканию компонентов и их конвективному перемешиванию со средой, в которой протекает электрофорез . В последнее время вместо бумаги используют гелеобразные среды (агар-агар, желатин), которые дают более резко очерченные зоны. Электрофорез на бумаге (и в других средах) сопровождается побочными явлениями, такими, например, как перенос вещества, вызываемый миграцией испаряющегося буфера (Машбёф, Ребейрот и др., 1953 г.). Кроме того, было установлено (Шелудко, Константинов, Цветанов, 1959 г.), что, например, в желатине не только сама электрофоретическая подвижность некоторых красителей меньше, чем в воде или водных растворах, но и соотношение между подвижностями компонентов в этом случае совсем иное. Эти особенности метода еще не до конца изучены. Поскольку рассматриваемый метод имеет важное практическое значение, различные проблемы создаваемой в настоящее время теории электрофореза в пористых и гелеобразных средах п разнообразные методы его использования являются предметом многих научных трудов. Некоторое представление о них читатель может получить из монографии [6 1. [c.158]

РЬ + 1 каплю анализируемого раствора помещают на фильтровальную бумагу и обрабатывают 1 каплей раствора с массовой долей родизо-ната натрия 0,2 % Появляется синее пятно или кольцо, которое при прибавлении буферного раствора с pH 2,8 окрашивается в красный цвет [c.165]

Составляют гальванический элемент (см. рис. 10.2). Для этого стеклянный электрод, предварительно вымоченный в воде и в растворе 0,1 М НС1 (электрод предварительно готовит к занятиям лаборант), опускают в стакан вместимостью 50 мл с раствором, для которого точно известно значение pH (стандартный буферный раствор). Опускают в буферный раствор хлорсеребряный электрод (заполненный насыщенным раствором КС1). Электроды присоединяют к соответствующим клеммам рН-мстря-милливольтметра, который предварительно прогревают 20—30 мин. Выдерживают электроды в растворе 10 мин для достижения равновесия. Устанавливают шкалу рН-метра на данное значение pH буферного раствора. Методика измерения ЭДС и pH на рН-метре-милливольт-метре рН-673 М описана в инструкции. Далее промывают электроды водой, осушают их фильтровальной бумагой, погружают в исследуемый раствор, выдерживают 10 мин для установления равновесия, а затем измеряют ЭДС. Повторяют 4—5 раз установку шкалы рН-метра на заданное значение pH буферного раствора и измерение ЭДС элемента с исследуемым раствором. [c.88]

Оборудование и реактивы сухая желатина проволока 5 коротких пробирок буферные растворы с различными значениями pH торзионные весы типа УТ рН-метр фильтровальная бумага стакан для определения pH растворов стандартный буферный раствор для растройки рН-метра вискозиметр Оствальда термостат секундомер раствор желатины концентрации 0,5 мае. долей, % буферные растворы с известными значениями pH 5 стаканов вместимостью 50 мл пипетка стеклянная палочка. [c.220]

Для антиконвекционной стабилизации зон разделяемых веществ применяют пористые носители (бумагу, пленки, гели, незакрепленные слои сорбентов). В качестве жидкостей, пропитывающих носитель, используют буферные растворы или растворы электролитов с малой ионной силой и низкой электрической проводимостью во избежание сильного разогрева установки за счет выделения теплоты. [c.231]

Выполнение работы. Приготовить смесь буферных растворов состава, как указано ниже. Объем каждого раствора 10 мл. Налить их в пробиркп. Внести в них приклеенные к тонкой нити кусочки желатина, взвешенные на торзионных весах (см. работу 102). Через час желатин осушить фильтровальной бумагой и снова взвесить таким же образом. Определить привес и вычислить степень набухания по уравнению (Х1Х.1). Результаты представить по форме [c.293]

Зонный электрофорез на бумаге. Различают бумажный электрофорез низковольтный (при градиенте напряжения 20—30 В/см) и высоковольтный (с градиентом напряжения до 200 В/см). Высоковольтный электрофорез применяют для разделения низкомолекулярных соединений. Приборы оборудуют устройствами для отвода джоулевой теплоты, для чего используют инертные жидкости (тетрахлорид углерода, толуол), в которые помещают пропитанные буферным раствором бумажные полоски (фореграммы). Сама жидкость охлаждается с помощью погруженного в нее холодильника. [c.363]

Методика определения. Для определения скандия в магниевых сплавах навеску 1 г (нри содержании 0,002—0,005% скандия) растворяют в 10—20 мл соляной кислоты (1 1) в стакане емкостью 100 мл. Раствор выпаривают до объема 10 мл, количественно переносят в мерную колбу е.мкостью 50 мл, споласкивая стенки стакана небольшими порциями воды, прибавляют 5 мл свежеприготовленного 2%-ного раствора аскорбиновой кислоты, 50%-ный раствор ацетата натрия (покане появится сиреневое окрашива1ше бумаги, смоченной конго красным), 5 мл буферного раствора с pH 1,5 5 мл 0,05%-ного раствора ксиленолового оранжевого и разбавляют водой до метки. Через 20 мин измеряют оптическую плотность раствора в тех же условиях, как при построении калибровочного графика. [c.373]

Электрофореграмму снимают на полоске хроматографической бумаги размером 40 х 270 мм. На ее середине обычным (графитным) карандангом отмечают полосу шириною 7 мм и с помощью капилляра смачивают эту полосу раствором гидролизата желатина. Затем полоску хроматографической бумаги помещают в прибор таким образом, чтобы ее концы были погружены в буферный раствор, находящийся во внутренних отделениях кювет, а середина полосы лежала на средней планке. Выжидают, пока полоска пропитается буферным раствором. [c.150]

Зависимость суммарного заряда на полипептиде или белке от изменения pH среды можно использовать для разделения этих молекул с помощью электрофореза. Если смесь полипептидов в водном буферном растворе с известным значением pH подвергнуть воздействии сильного электрического поля, то молекулы с общим положительным или отрицательным зарядом будут перемен аться в противоположных направлениях, в то время как молекулы с нулевым зарядом при выбранном pH останутся ненодвижными. Сложную смесь белков можно раз-де. шть на компоненты, осуществляя электрофорез па бумаге, пропитанной буфером, или в гель-нроводящей пленке. Подвижность состав[1ых частей смеси или паправлспие их перемещения П[)и э. ектрофорезе зависят от значения pH, при котором проводится процесс. [c.300]