Использование индикаторной бумаги

Они имеют большое значение при определении величины pH. Определение концентрации водородных ионов при анализе природных и сточных вод, технологических растворов, биологических жидкостей — одна из самых массовых аналитических операций. Несмотря на развитие потенциометрических методов определения pH, определение кислотности с помощью кислотноосновных индикаторных бумаг остается весьма распространенной процедурой. Этот способ имеет ряд достоинств простота анализа, экспрессность, отсутствие необходимости использовать аппаратуру и связанная с этим дешевизна определений, возможность проводить анализ практически в любом месте. Химия кислотноосновных индикаторов — обширная, хорошо изученная область. Однако использование таких индикаторов в тест-методах выдвигает свои требования и критерии. Если индикатор закрепляют на бумаге, существенное значение имеет способ закрештения. Широко распространенное простое адсорбционное закрепление не всегда обеспечивает несмываемость индикатора, поэтому контакт бумаги с анализируемым раствором должен быть очень коротким. Прямые (субстантивные) красители-индикаторы — конго красный или бриллиантовый желтый — закрепляются путем адсорбции лучше, поскольку линейные и некопланарные молекулы красителей крепче связываются с линейными же макромолекулами целлюлозы. Наиболее прочно индикаторы связываются с целлюлозой за счет закрепления на бумаге, существенное значение имеет способ закрепления. [c.212]

Описаны различны е способы оценки влажности жидких и газообразных веществ с использованием индикаторной бумаги. Простейший состоит в том, что бумагу, настроенную на определенный уровень влажности, помещают в анализируемый раствор. Изменение ее окраски свидетельствует о том, что содержание воды в этом растворе превышает установленный уровень. Более точное значение можно получить, сравнивая окраску бумаги в анализируемом растворе с окраской таких же полосок, помещенных в раствор того же состава, но с известным содержанием воды. Этот вариант можно приспособить также для определения влажности газов, если их предварительно пропустить через сухой растворитель с большим сродством к воде, например эфир [391]. [c.171]

Методы с использованием субстрат-индикаторной бумаги Эти методы, являющиеся модификацией колориметрического метода, основаны на использовании индикаторной бумаги и применяются для быстрого клинического определения АХЭ и ХЭ [c.168]

В последнее время при анализе мочи все большее применение находят методы экспресс-диагностики. Эти очень простые методы (в основном с использованием индикаторной бумаги) позволяют в любых условиях оперативно проводить исследование мочи, причем это могут делать не только специалисты-биохимики, но и тренеры и сами спортсмены. С помощью экспресс-методов можно быстро определить в порциях мочи концентрацию мочевины, наличие белка, глюкозы, кетоновых тел, измерить величину pH. Недостатком экспресс-контроля является низкая чувствительность используемых методик. [c.243]

Использование индикаторной бумаги [c.94]

Аналогично могут быть обнаружены хлоральалкоголят и уретан. Пробу можно провести с использованием индикаторной бумаги. Исследуемое вещество и смесь бихромата с серной кислотой помещают в пробирку и неплотно закрывают ватным тампоном. На него накладывают сложенную в несколько раз полоску фильтровальной бумаги, только что пропитанную 50% раствором пиперазина (пиперидина) или чистым пиперидином и I % раствором нитропруссида натрия. При длительном кипячении пробы бумага приобретает сине-фиолетовую окраску вследствие образования ацетальдегида. [c.55]

Широко используются два метода измерения pH 1) колориметрический с использованием полосок индикаторной бумаги и 2) электрометрический с использованием прибора со стеклянным электродом. [c.115]

Определение pH производили колориметрическим (с использованием полос индикаторной бумаги) и электрическим (с использованием прибора "рН-метр 673" со стеклянным электродом) методами. [c.103]

Магний с комплексоном 1TI образует комплекс, pii e T которого, по данным Шварценбаха [466, 1125], составляет 8,69, а по другим данным — 8,30 [274]. Таким образом, комплексонат магния не очень прочный, поэтому титрование магния комплексоном III возможно лишь в щелочной среде. Лучше всего титровать при pH 10. Такая среда создается при использовании буферного раствора, содержащего 54 г Nli l и 350 мл аммиака (уд. вес 0,9) в литре. Для более точного установления оптимального значения pH анализируемые растворы можно предварите.льно нейтрализовать до pH 9—10 перед добавлением буферного раствора, используя универсальную индикаторную бумагу или малахитовый зеленый ири 1)11 9—10 окраска малахитового зеленого обесцвечивается [320]. [c.70]

Общий принцип почти всех химических тест-методов — использование аналитических реакций и реагентов в условиях и в формах, которые обеспечивают по.лучение визуально наблюдаемого и легко измеряемого эффекта, например интенсивность окраски бумаги или длину окрашенной части трубки. Реагенты и различные добавки используют в виде заранее приготовленных растворов (в ампулах или капельницах) или иммобилизированными на твердом носителе — бумаге, силикагеле, пенополиуретане и т. д. В качестве средств для тест-методов химического анализа могут быть использованы индикаторные бумаги, индикаторные порошки и трубки, таблетки и др. [c.209]

Индикаторы pH. Значение pH раствора можно точно определить с помощью рН-метра. Это прибор, который выдает величину pH раствора сразу в цифрах на шкале измерителя. Более грубый способ представляет собой использование какого-либо цветного индикатора, например, полоски индикаторной бумаги, цвет которой изменяется согласно pH раствора. Это быстрый и дешевый способ определения pH, так как величина pH сразу видна по изменению окраски смоченной в исследуемом растворе бумаги при сравнении ее с имеющейся цветовой шкалой. [c.40]

Универсальный индикатор применяется или в виде раствора, каплю которого смешивают на капельной пластинке с 1—3 каплями исследуемого раствора, или же в виде индикаторной бумаги. К пачке индикаторной бумаги прилагается цветная шкала, показывающая,, какие краски принимает бумага при различных величинах pH. Практически pH определяется так на полоску индикаторной бумаги наносят каплю исследуемого раствора. Полученную окраску индикаторной бумаги сравнивают с окраской шкалы и по шкале определяют pH с точностью до единицы. Для более точного определения pH пользуются приборами Михаэлиса, Алямовского и потенциометрами, методика использования которых дается в учебниках количественного анализа и физической химии. [c.80]

Дальнейшее развитие пригодных для полевых лабораторий методов обнаружения должно идти в основном по пути использования стабильных индикаторных бумаг, пропитанных соответствующими реагентами. Для того, чтобы локализовать продукты реакции в местах их образования и тем самым облегчить их обнаружение, следует применять преимущественно реагенты, трудно или совсем нерастворимые в воде. Совершенно очевидно, что при наличии достаточно чувствительных реагентов и индикаторных бумаг в полевых лабораториях рекомендуется применять преимущественно капельные реакции вследствие простоты и быстроты их выполнения, [c.146]

Для анализа фосфорсодержащих ОВ в полевых условиях весьма удобны индикаторные бумаги, содержащие смесь субстрата и индикатора . Преимущества этих методов заключаются в их простоте, быстроте проведения, потреблении незначительных количеств испытуемых веществ и реагентов, возможности работы в широком интервале температур. Дальнейшее совершенствование методов состоит в том, что на бумагу, содержащую субстрат и индикатор, наносят также лиофилизированную сыворотку . При использовании очищенных ферментов и хранении в сухом месте такие индикаторные бумаги хорошо сохраняются. Отличным способом для проведения большого числа параллельных определений является модифицированный диффузионный метод с агаром [c.176]

Остаток смывают обратно в стакан 100 мл воды и растворяют, нагревая с 10 мл концентрированной соляной кислоты. Теплый раствор фильтруют через ранее использованный фильтр и тща-тельно промывают водой. Добавляют в фильтрат 10 мл раствора соли кальция (соосадителя) и 1,5 г щавелевой кислоты. Перемешивают и нагревают раствор почти до кипения. Затем приливают концентрированный раствор аммиака, доводя pH раствора до 5 (контроль по индикаторной бумаге). Выдерживают на горячей плите в течение 1 ч и затем оставляют на ночь. [c.361]

Индикаторная бумага. Фильтровальную бумагу пропитывают раствором, содержащим 3 г п-диметиламинобензальдегида и 0,5 г гидрохинона в 100 мл диэтилового эфира. Бумагу высушивают, разрезают на полоски и хранят в склянках из темного стекла. Непосредственно перед использованием полоски бумаги омачивают раствором 30 г трихлоруксусной кислоты в 100 мл изопропанола. [c.220]

Побочные реакции. В экстрактах растительных материалов или в жидкостях биологического происхождения обычно присутствуют белки. Некоторые индикаторы взаимодействуют с белками, что вносит серьезную ошибку в измерение или регулировку pH. Индикатор в комплексе с белком может несколько отличаться по цвету от свободного индикатора более того, образование такого рода комплексов может изменять равновесие, в котором принимает участие индикатор. Добавим, кстати, что присутствие белков или полисахаридов в исследуемом растворе вносит ошибки и при измерении pH с помощью стеклянных электродов (при использовании рН-метра). Тонкая стеклянная мембрана электрода покрывается при этом пленкой поверхностноактивного материала, которая меняет разность электрических потенциалов по обе стороны мембраны. Устанавливая pH растворов, содержащих крахмал, следует всегда проверять значение pH по индикаторной бумаге. Обычно эффект влияния белков на измерение pH с помощью индикаторов называют коллоидной ошибкой . [c.241]

Иногда во время титрования отбирают каплю титруемого раствора и помещают ее на индикаторную бумагу (фильтровальную бумагу, предварительно пропитанную раствором индикатора) или смешивают ее с каплей раствора индикатора на часовом стекле, фарфоровой пластинке или белой бумаге. Такого рода индикаторы называют внешними. Титрование с внешними индикаторами вызывает неизбежные потери анализируемого раствора. Поэтому в настоящее время индикаторные методы, основанные на использовании внешних индикаторов, вытесняются физико-химическими (инструментальными) методами фиксации точки эквивалентности. [c.138]

Определение сравнительной устойчивости ПВХ в композиции к термическому воздействию по скорости дегидрохлорирования полимера, либо по времени термостабильности композиции (время до начала изменения цвета индикаторной бумаги конго красной под влиянием выделяющегося при нагревании ПВХ НС1 — ГОСТ № 14041—68). Последний метод непригоден нри использовании [c.391]

Опыт 5 Значение pH = 3,8 раствора поддерживалось путем добавления по каплям конц. НС1 и кислотность раствора проверяли использованием универсальной индикаторной бумаги. Дальнейшая обработка была аналогична опыту 4. [c.464]

Во фракции последовательно добавляют 5 капель 1%-ного водного раствора (NH4)2Mo04 и по 3 капли 1%-ного раствора Sn b и 10%-ной НС1. После того, как pH выходящего элюента станет равным 7 (проверку осуществляют с использованием индикаторной бумаги), производят замену элюента на 1 М раствор аммиака для разрушения комплекса аминокислоты с ионообменной смолой и элюирования а-аланина. [c.564]

Требования к определению глюкозы в крови сходны с требованиями в случае электролитов. Так, уже прикроватный прибор, управляемый вручную и обрабатывающий пробы крови с интервалами от 15 мин до 4 ч, является серьезным достижением по сравнению со стационарными лабораторными системами анализа крови. До некоторой степени этот рынок удовлетворяется измерительными устройствами на основе индикаторной бумаги, но время отклика таких приборов неприемлемо велико (2 мин) и, кроме того, требуется специальная подготовка оператора. Возможность непрерывного определения глюкозы в крови пациентов в отделениях интенсивной терапии имела бы ценность не только для диабетиков, но и для тех, кто принимает высокие дозы инотропных агентов (которые могут быть диабетогенными) для поддержания сердечной деятельности, а также при использовании растворов глюкозы высокой молярности для внутривенного вливания. Хотя в этих условиях желательно переходить к контролируемому содержанием глюкозы введению инсулина, на практике пациенты дополнительно принимают глюкозные растворы как для буферирования диабетического контроля, так и для снабжения организма несвязанной водой. Поэтому в отделениях интенсивной терапии довольно сложные системы контроля уровня глюкозы должны быть объединены с устройствами для поддержания водно-солевого баланса крови. [c.570]

Воспроизводимость визуальных измерений в случае цветных реакций может иметь погрешность от 10 до 50 %. Поэтому в ряде случаев такие методы следует рассматривать как полуколичественные. Возьмем данные о воспроизводимости результатов при использовании индикаторных бумаг. Воспроизводимость оценивают величиной относительного стандартного отклонения Были использованы различные способы определения концентрации тестируемых компонентов. В области нижних границ опредетаемых содержаний наименьшее значение Sr получено для тест-титрования и при использовании тест-трубок ( 0,1). При определении концентрации по длине или площади окрашенной или обесцвеченной зон бумажных тест-полос получены значения Зг < 0,3, а при визуальной оценке интенсивности окраски жидкости 8г < 0,4. Р1аименее точно определяется концентрация по интенсивности окраски реактивных бумаг Зг < 0,5). Приведенные значения 5, получены на реальных объектах при минимально определяемой данным способом концентрации при надежности 0,95. При больших значениях определяемых концентраций величина имеет, как правило, меньшее значение. Создание более совершенных портативных приборов для измерения коэффициентов диффузного отражеши тест-форм позволяет значительно улучшить воспроизводимость определений (5 < 0,08). Здесь используется зависимость от концентрации функции Гуревича— Кубелки— Мунка = (1 где [c.211]

Чувствительность этой пробы можно повысить при использовании индикаторной бумаги, последовательно пропитанной водными растворами FeS04 и NaOH. Минимальная определяемая концентрация синильной кислоты около 0,001 мг в I л воздуха. [c.155]

Более быстрым и специфичным для определения ХЭ является метод с использованием индикаторной бумаги, описанной Матоушеком и Церманом при изготвлении которой в качестве субстрата применяется бутирилхолин. После инкубации этой бумаги с каплей сыворотки (0,05 жл) измеряют время выравнивания окраски испытуемого вещества с окраской эталона (pH 6,47). [c.168]

К солянокислому раствору р.з.э. постепенно при перемешивании приливают раствор селенита натрия. Осадок оставляют под раствором на сутки, затем фильтруют на воронке Бюхнера и отмывают от хлористого натрия и избытка селенистокислого натрия дистиллированной водой до отсутствия хлор-иона в промывных водах (качественная реакция фильтрата с азотнокислым серебром в присутствии азотной кислоты). Отмытый осадок промывают спиртом (1 1) и сушат в сушильном шкафу при 80—90° и остаточном давлении 10 мм рт. ст, (для церия) и 250° (для лантана, празеодима, неодика) до постоянного веса. В маточном растворе после осаждения селенитов р.з.э. и в первой промывной воде осаждают 20%-ным раствором хлористого бария селснит бария, который отфильтровывают и промывают от хлористого натрия дистиллированной водой. Полученный селенит бария с целью регенерации селенистой кислоты смешивают со смолой КУ-2 в Н-форме в соотношении 1 3 и заливают 5-кратным по отношению к смоле количеством дистиллированной воды. Полученную пульпу перемешивают в течение I часа (до полного растворения селенита бария). Смолу отфильтровывают от раствора и промывают дистиллированной водой до нейтральной реакции (pH 5 по универсальной индикаторной бумаге). Основной раствор и промывные воды с целью отделения следов иона бария пропускают через колонку со смолой КУ-2 в Н-форме со скоростью I—3 л/час, затем колонку Промывают дисгиллированной водой до нейтральной реакции (pH 5—6). Полученный фильтрат представляет собой разбавленный раствор селенистой кислоты, который может быть использован для приготовления 22%-ного раствора селенистой кислоты. [c.118]

А. С. Блинкин (1963) предложил модификацию реактива Эрлиха с ортофосфорной кислотой. Чувствительность реактивной бумаги, приготовленной по этому способу, весьма высока в положительных случаях участок, смоченный реактивом, окрашивается в интенсивно малиновый цвет. Появление других окрасок не учитывают. Пользуясь этими высокочувствительными индикаторными бумажками, А. С. Блинкин (1963) доказал возможность определения индола на углеводных средах Гисса. Мы имеем опыт определения на двууглеводной среде с солью Мора 4 тестов (ферментация глюкозы и лактозы, образование сероводорода и индола) при использовании индикаторных полосок с пара-диметиламинобензальде-гидом). [c.206]

Выполнение анализа. 25 мл полученного раствора помещают в коническую колбу, нейтрализуют аммиаком (по универсальной индикаторной бумаге), добавляют 10 мл буферного раствора с рН = 9—10, около 20 мл дистиллированной воды, приблизительно 0,1 г индикаторной смеси мурексида или 0,4 мл раствора сульфарсазена и титруют 0,025 М раствором Na-ЭДТА до перехода интенсивно-желтой окраски раствора в фиолетовую (при использовании мурексида) или розовато-фиолетовой окраски в зеленую (при использовании сульфарсазена). [c.86]

Способ получения кислотно-основных бумаг с ковалентным закреплением индикатора на бумагу описан еще в 1964 г. Аминосоединение с активной винилсуль-фоновой группой диазотировали и сочетали с различными азосоставляющими (1 -нафтолом, фенолом, диме-тиланилином). При этом образовывались активные индикаторы. Индикаторные бумаги с ковалентно закрепленным реагентом получали обработкой целлюлозы в щелочной среде. Описан аналогичный синтез и ковалентное закрепление азокрасителей на бумаге для определения pH. Технически легче выполним способ получения индикаторных бумаг с химически связанными реагентами, который основан на использовании в качестве носителя хроматографической бумаги, модифицированной глицидилметакрилатом и эпихлор-гидрином. [c.216]

Колориметрия с применением индикаторных бумаг. Для определения концентрации ионов аммония, анилина, фенола, pH атмосферных осадков, активного хлора, xpOMa(VI), никеля и нитритов используются специальные составы пропитки. Определение проводят по интенсивности или опенку анализируемой жидкости после внесения в нее полученных индикаторных бумаг или после пропускания анализируемой жидкости через индикаторную бумагу с использованием тест-устройства. Основное требоваш е к реагентам, иммобилизуемым на бумаге, — вымываемость их из матрицы при перемешивании раствора в течение 2-5 мин. [c.220]

Если сульфид таллия (I), легко растворяющийся в разбавленных минеральных кислотах, взаимодействует с элементарной серой, растворенной в органических растворителях или в сульфиде щелочного металла, то он превращается в полисульфид таллия (I). Последний довольно устойчив к разбавленным минеральным кислотам и разбавленной перекиси водорода. Если на бумагу, содержащую сульфид таллия (I), поместить каплю раствора свободной серы, то образуется полисульфид. После обработки бумаги кислотой в месте нанесения капли остается темное бурое кольцо или круг, в то время как остальная часть черной индикаторной бумаги почти моментально становится белой. При незначительном содержании серы на поверхности сульфида таллия (I) образуется слой полисульфида таллия, предохраняющий нижележащий Т123 от растворения в кислоте. (Об образовании защитного слоя и об использовании этого явления при обнаружении ацетилена см. стр. 431.) [c.641]

Индикаторная бумага на основе Hg b и метилового оранжевого Готовят раствор 1,25 г Hg lj в 250 мл воды и раствор 4 г метилового оранжевого в 250 мл воды. Непосредственно перед использованием смешивают 100 мл первого раствора с 50 мл второго раствора и 10 мл глицерина, пропитывают бумагу этой смесью и сушат в атмосфере, свободной от паров кислот. Присутствие в воздухе уже 0,01 мг/л синильной кислоты обнаруживают по окрашиванию бумаги в красный цвет. Пары кислот вызывают такую же цветную реакцию. Бумагу сохраняют в течение 2 суток в затемненном месте. [c.230]

Индикаторную бумагу, предназначенную для немедленного использования, можно приготовить пропитыванием бумаги смесью 10 мл 10%-ного раствора FeS04, 20 мл раствора 30 г сегнетовой соли и 10 г КОН в 100- мл воды. После помещения бумаги в атмосферу, содержащую ОВ, бумагу подвергают действию паров НС1 при наличии H N она окрашивается в сине-зеленый цвет. [c.230]

Фосфорорганические ОВ можно количественно определять биохимическим методом при помощи индикаторной бумаги, содержащей субстрат, причем время реакции можно определять по подготовленной контрольной пробе сравнения. Иприт и цианиды можно определять путем визуально-колориметрической оценки цветных реакций, с использованием соответствующих цветных стандартов мышьяк обнаруживают пробой Гутцейта, сравнивая полученные на бумаге окраски с таблицей цветовых эталонов. [c.247]

При использовании в качестве индикатора раствора нитрата серебра в крыщку прибора, предварительно промытую азотной кислотой, водой и высушенную фильтровальной бумагой, вкладывают бумагу, смоченную 0,02 мл 1%-ного раствора AgNOз. На трубку с крышкой для защиты от света надевают картонный колпачок, оклеенный внутри черной бумагой. После проведения электролиза индикаторную бумагу помещают в проявитель, приготовленный непосредственно перед проявлением. Для этого к 10 мл раствора I прибавляют 0,1 мл 10%-ного раствора нитрата серебра. [c.162]

Для полимеров, деструкция которых начинается и сопровождается выделением летучих, период термостабильности часто определяют как промежуток времени от начала нагрева материала до начала выделения летучего вещества. Такую методику согласно ГОСТ 14041—68 используют для измерения времени эффективного действия стабилизаторов (ВЭДС) хлорсодержащих полимеров, в частности ПВХ и композиций на его основе, фиксируя начало выделения НС1 по изменению цвета индикаторной бумаги. Однако в реальных условиях переработки значение ВЭДС может уменьшаться, поскольку материал подвергается не только термическому, но и механическому нагружению. Поэтому более надежные результаты по ВЭДС дает вязкостная методика с использованием, например, прибора ИИРТ и его модификаций (ИИРТ-М, ИИРТ-А). Оценка ПТР в зависимости от времени выдержки материала в вискозиметрическом [c.229]

М растворы Ы(С2Н40Н)з и НС1, которые перед применением смешивают. Следует принимать во внимание, что триэтаноламин является хелатообразующим веществом и, как таковой, образует весьма устойчивые комплексы со многими ионами металлов. Это в большинстве случаев нежелательно, так как происходит уменьшение скачка рМ в точке эквивалентности. Поэтому концентрация свободного триэтаноламина в растворе должна быть как можнО меньшей. Таким же недостатком в этом интервале pH обладают малеаты и веронал. Фосфатная буферная смесь совершенно не пригодна, так как образуются осадки фосфатов металлов. Идеальным веществом для буферного раствора в области pH = 6—8 является имидазол, ониевая соль которого имеет значение р/С, почти точно равное 7, и благодаря своему строению не образует хелатных комплексов с металлами. Но вследствие высокой стоимости имидазола вряд ли можно рассматривать его как вещество, пригодное для использования в буферных растворах. Для создания pH = 7 можно- успешно применять аммиачный буферный раствор, но его буферная емкость, естественно, мала. Поэтому при работе с ним необходимо тщательно контролировать pH, нанося капли исследуемого раствора на индикаторную бумагу. Таким образом создаются идеальные условия, при которых комплексообразование металлов оказывается крайне незначительным., [c.153]