Этиловый спирт определение определение ацетона

Орчин [1400] описал метод определения этилового спирта, пропанола-1 и ацетона при их одновременном присутствии. [c.309]

Определение кобальта. Кобальт определяют роданид-ным методом в ацетоне или этиловом спирте. [c.121]

Полученная соль муравьиной кислоты дальше не окисляется иодом последний также не реагирует с имеющимся (в виде примеси) метиловым спиртом. В присутствии этилового спирта, уксусного альдегида, ацетона определение дает неверные результаты, так как эти [c.50]

Выделение и очистка. — Выделение гомогенных белков в нативном состоянии — весьма трудная задача, так как большинство белков весьма чувствительно к действию различных агентов и находится в виде смеси близких по свойствам веществ. Растворимость белка минимальна в изоэлектрической точке, а так как изоэлектрические точки разных белков лежат в разных интервалах pH, то создание определенного значения pH ведет к отделению одного компонента смеси от других, особенно при добавлении определенного количества соли или смешивающегося с водой органического растворителя — этилового спирта или ацетона. [c.689]

Линейно-колористическое определение. При протягивании воздуха, содержащего пары этилового эфира, через индикаторную трубку с силикагелем, пропитанным 2,5% -ным раствором хромового ангидрида в 6 н. серной кислоте, образуется зеленая окраска длина окращенного слоя пропорциональна концентрации эфира. Чувствительность метода 0,5 мг л. Определению мещают ацетон, спирты, альдегиды, сероводород, давая с индикатором аналогичную окраску. Для поглощения их применяют фильтрующий патрон. [c.139]

Кроме того, они могут быть использованы для определения числа углеродных атомов в органической молекуле и чистоты меченого соединения. В этом случае проводится измерение активностей органического вещества сначала в виде паров, затем в виде двуокиси углерода, получаемой сжиганием этого соединения. Счетчики, наполненные чистой двуокисью углерода, непригодны к работе из-за отсутствия плато. Поэтому для нормальной работы счетчика во внутрь счетного пространства вводят вещества, обладающие способностью гашения разряда в счетной трубке. К таким веществам относятся многие органические соединения пары этилового спирта, бутана, гексана, ацетона, гептана, бромистого этила и др. Определение активности органических соединений, меченных углеродом-14, можно производить как в виде двуокиси углерода, так и непосредственно в виде паров соединений, обладающих достаточной летучестью. При определении активности органических веществ в виде двуокиси углерода препарат предварительно сжигают по общепринятой в органической химии методике. [c.23]

Полная растворимость с особой точкой максимума упругости паров Этиловый спирт-вола Этиловый спирт-бензол Метиловый спирт-ацетон Меняется в зависимости от состава жидкости, достигая в определенной точке максимальной величины, превышающей упругости паров отдельных жидкостей Меняется в зависимости от состава жидкости, падая в определенной точке до минимальной величины, меньшей, чем точки кипения отдельных жидкостей По мере испарения меняется, причем в точке с максимальной упругостью состав пара одинаков с составом жидкости [c.51]

Не мещают определению метан, кислород, этиловый спирт, диметилбензиламин, эпихлоргидрин, ацетон, фенол. [c.206]

В отличие от определения не растворимых в н. бензине веществ асфальтены перед растворением в техническом ацетоне приходилось подсушивать при температуре, не превышающей 60 , для удаления следов этилового спирта. Результаты определения показателя преломления даны в табл. 9. [c.193]

Реакция образования азокрасителя специфична не только для этилового спирта, ее дают и другие спирты, например метиловый спирт. Однако во взаимодействие с диазосоединением совершенно не вступают примеси, сопутствующие этиловому спирту (этил-ацетат, ацетон, формальдегид, ацетальдегид и др.)> и поэтому они не мешают определению содержания спирта. [c.151]

Анализ спиртов, образующихся при окислении метана и этана, сводился к окислению метилового спирта марганцевокислым калием до формальдегида, а этилового спирта — хромовой смесью до уксусной кислоты. В случае окисления пропана водный раствор, содержащий, кроме метилового и этилового, еще и пропиловые спирты, насыщался твердым СаС1а и встряхивался с ксилолом. При этом пропиловые спирты переходили в ксилольный слой, а в водном оставались метиловый и этиловый. Из кси-лольного слоя пропиловые спирты извлекались водой и сумма их определялась окислением хромовой смесью. Параллельно с определением общего количества пропиловых спиртов определялись количества изопропилового спирта и ацетона. Для этого порция конденсата из опыта, в которой альдегиды связывались солянокислым гидроксиламином, окислялась на холоду хромовой смесью. При этом изопропиловый спирт превращался в ацетон. Из полученного раствора ацетон перегонялся с водяным паром и общее его количество в перегонке определялось гидроксиламинным способом. Количество ацетона в исходном конденсате находилось при помощи [c.20]

Полное содержание порфиринов в нефти скв. 2546, определенное многократными последовательными экстракциями этиловым спиртом и ацетоном, составляет 54 мг/100 г нефти. [c.30]

Определение основано на том, что при действии окислителя этиловый спирт превращается в уксусную кислоту, а изопропиловый спирт в ацетон. В отгоне, полученном после окисления, ацетон определяют иодометрическим способом, основанным на реакциях [c.156]

На основании анализа полученных данных эти авторы приш ли к заключению, что аппарат пригоден только в малотоннажных производствах. На основании своих опытов, произведенных на четырех бинарных смесях (изопропиловый спирт—вода, ацетон— вода, метиловый спирт—вода, этиловый спирт—вода) при флегмовом числе, равном бесконечности, авторы предложили формулу для определения коэффициента массопередачи для аппаратов рассматриваемого типа [c.306]

В связи с приготовлением абсолютных растворителей необходимо остановиться на способах определения количества воды в органических растворителях. Некоторые из этих способов очень просты. Так, например, в этиловом спирте содержание воды устанавливают довольно точно путем определения плотности. В случае большинства органических растворителей пригоден фотометрический метод определения воды [78]. Для определения воды в ацетоне был рекомендован спектрографический метод [43]. [c.592]

Ход определения. Образец полимера предварительно дробят и пропускают через сито с 20 отв/см . Навеску полимера (50—100 мг) помещают в мерную колбу на 25 мл. Ацетилцеллюлозу растворяют в ацетоне, этилцеллюлозу — в теплом 95%-м этиловом спирте. После охлаждения раствора до комнатной температуры доводят до метки соответствующим растворителем. Аликвотную часть раствора полимера помещают в электролизер с фоном (общий объем — 20 мл) (фон — 5 мл, остальное доводят до 20 мл соответствующим растворителем). [c.160]

Количественное определение этилового спирта в крови, как правило, проводится методом внутреннего стандарта, в качестве которого используются ацетон, метилэтилкетон, диоксан, но чаще всего н-пропиловый (ИПС) и трет-бутиловый (ТБС) спирты [28, 32, 42, 45]. Преимущественный выбор спиртов обусловлен, с одной стороны, возможностью быстрого проведения хроматографического анализа, при котором пик этилового спирта полностью отделяется от высших гомологов (рис. 3.12), и с другой — тем, что ИПС и ТБС не могут присутствовать в крови человека. Изопропиловый спирт не рекомендуется применять в качестве стандарта при анализе капиллярной крови, так как он иногда используется для [c.126]

Удаление низкомолекулярных веществ еще не приводит к окончательной очистке ферментов. Более радикальным приемом является осаждение ферментов этиловым спиртом определенной концентрации, ацетоном и другими водоо гнимающими реактивами с последующим извлечением их из осадков водою. Во всех приемах очистки ферментов критерием степени чистоты является активность их действия. Активность фермента в весовой части исходного материала принимается за единицу. Чем больше очищен фермент, тем больше его активность на единицу веса его препарата. В отдельных случаях можно было повысить активность ферментов в 2000 раз и больше по сравнению с активностью исходного материала. К эффективным приемам очистки ферментов относится связывание их на поверхности раздробленных частичек твердых веществ (адсорбция) с последующим освобождением (элюирование), а также отделение их от других веществ методом хроматографии. Следует, однако, указать, что эти приемы очистки ферментов обычно не приводят к их кристаллизации и они используются только при предварительной очистке ферментов. Весьма ценным в очистке ферментов оказался метод высаливания их нейтральными солями щелочных металлов, особенно сернокислым аммонием. Метод высаливания позволил получить целый ряд ферментов в кристаллическом виде. Часто для очистки ферментов приходится прибегать к различным приемам, и заключительным звеном работы является их высаливание. [c.176]

Это можно обосновать с точки зрения простых макрохимических, а вероятно, и молекулярных представлений. Во-первых, скорость бимолекулярного замещения пропорциональна концентрации атакующего агента, в то время как скорость мономолекулярного замещения обычно не пропорциональна этой концентрации. Поэтому изменение концентрации замещающего агента может изменить относительную скорость реакции по обоим механизмам. Далее, скорость мономолекулярного замещения часто гораздо сильнее зависит от ионизующей способности растворителя, чем скорость бимолекулярного замещения. Это особенно справедливо для реакций алкилгалогенидов например, муравьиная кислота, будучи сильно ионизующим растворителем, способствует реакциям мономолекулярного замещения даже в случае первичных алкилгалогенидов водный этиловый спирт и водный ацетон обладают меньшей ионизующей способностью, а безводные спирт и ацетон — еще менее ионизующие растворители. Иная картина, которая будет рассмотрена в разд. 3, а, наблюдается при разложении ониевых солей, когда оба реагента находятся в ионной форме скорость реакции бимолекулярного замещения в отличие от мономолекулярного весьма чувствительна к изменениям среды. Однако и для этих реакций, как и для реакций алкилгалогенидов, справедливо, что оба механизма значительно отличаются друг от друга по их зависимости от растворителя, природа которого может менять относительное значение обоих механизмов. Температура оказывает менее сильное влияние на механизм реакции. При определенной реакции в случае алкильной группы, расположенной близко к критической точке , в которой изменяется механизм реакции (т. е. в случае группы, тенденция которой к реакциям по одному из механизмов не проявляется достаточно четко), путем изменения условий реакций, в особенности концентрации реагирующих веществ и растворителя, можно добиться того, что преобладающим будет один из механизмов. Такие изменения легко осуществляются для реакций вторичных алкилга-логенидов. В слабоионизующих растворителях, например в спиртах, и при высокой концентрации активных нуклеофильных реагентов, например алкоголят-, азид- или тиолат-ионов, происходит бимолекулярное замещение однако в сильноионизующих растворителях, например в муравьиной кислоте, и при относительно небольшой концентрации активных анионов реакция протекает по мономолекулярному механизму, на что указывают кинетические и другие характеристики процесса. Короче говоря, вторичные алкил- [c.361]

Смесь 1 мл водного раствора, содержащего около 0,1 мг вторичного амина и 3 мл 0,05%-ного раствора 3,5-динитробензоил-хлорида в бензоле встряхивают 20 мин с 0,5 мл 0,2 н. раствора NaOH, добавляют 10 мл 2 н. раствора NaOH для разложения избытка реактива и снова встряхивают 20 мин. После центрифугирования отбирают 1 мл бензольного раствора, добавляют 3 мл смеси, полученной из 90 мл этилового спирта и 10 мл ацетона, после чего вводят 0,2 мл свежеприготовленного 1% -ного раствора этилата натрия. Оптическую плотность растворов розового или красного цвета через 25 мин измеряют при следующих значениях Хмакс -при определении N-бутиланилина — 556 нм, диэтиламина — 537 нм, пиперидина — 543 нм, N-этиланилина — 555 нм. [c.140]

По данным Ma h a и Н е г г m а п n ai продолжительность окисления ни в коем случае не должна быть меньше 10 минут. Опыты определений в присутствии примесей показали, что присутствие этилового спирта, ацетона и ацетальдегида повышает результаты определения. Если вместо 0,2 н. применяют 0,1 н, раствор иода, то для анализа берут 10 г или мл формалина, которые разводят до 500 мл в остальном определение ведут, как описано. [c.171]

Определение в воздухе. Ф. с фуксиносернистой кислотой дает голубую окраску в растворах серной или соляной кислот. По интенсивности окраски определяют количество Ф. Разработаны методики раздельного определения при совместном их присутствии Ф. и акролеина (Гурвиц), Ф. и фенола (Петрова), Ф. в смеси с метиловым и этиловым спиртом (Яковцевская) или ацетоном (см. у Коренмана). Полярографическое определение Ф. в воздухе (Петрова и Яковцевская). [c.292]

Определение кониентрации других растворов. По методике, описанной для раствора саз1ара, можно определить концентрацию водных растворов глицерина, этилового спирта, уксусной кислоты, ацетона, минеральных солей, кислот, оснований, кардиамина, корозола, кодеин-фосфата, уротропина и т. д. Аналогичным путем определяется количество белков в сыворотке крови при клинических исследованиях, спирта в тинктурах и др. Если раствор составлен-из двух жидкостей, то его концентрацию можно вычислить по формуле (11). Для этой цели следует установить плотность и показатель преломления исследуемого раствора и входящих в его состав чистых веществ. Вычисление удельной рефракции раствора и чистых веществ провести по уравнению (9). [c.20]

Метод определения этилового спирта, диэтилового эфира, ацетона, изопропилового спирта, диизопропилового эфира. НФ полиэтиленгликоль 400 или триэтилепгли-коль. [c.121]

Это дейст вие иода в щелочном растворе служит качественной реакцией на ацетон, этиловый спирт, ацетальдегид и т. д. и может служить также для количественного определения ацетона спирта, молочной кислоты окисляемых сначала до ацетальдегида (иодоформпая реакция Либена). Ср. этот том, БЫП., 1, стр. 33. Относительно. механизма реакции образования иодо-(]юрма см. литературу [c.438]

Все операции, связанные с количественным определением этилового спирта этилнитритным методом, должны проводиться очень быстро в герметически закупоренных делительных воронках. Количественному определению этилового спирта не мешают многие летучие, имеющие токсикологическое значение, вещества — формальдегид, уксусный ангидрид, хлороформ, хлоралгидрат, дихлорэтан, фенолы, бензол, анилин, серный эфир, ацетон, скипидар. Другие летучие спирты (метиловый, пропиловый, бутиловые и амиловые) ведут себя так же, как и этиловый спирт (дают эфиры азотистой кислоты). Следовательно, по нитритному методу определяется суммарное содержание спиртов в исследуемом материале. [c.106]

Методика определения, -(авеску определяемой соли ( 0,001 г-экв), взвешенную на аналитических весах, растворяют в 50 м.а этилового спирта или 90%-ного ацетона, отбирают 1—5 мл раствора в кювету для титрования, разбавляют до 20 мл соответствующим растворителем, перемешивают и устанавливают начальную оптическую плотность. После добавления каждой последующей порции тнтранта (0,05—0,10 мл) раствор перемешивают и записывают оптическую плотность. Титрование проводят без кюветы сравнения. В процессе титрования первоначальный объем не должен увеличиваться более чем на 5—10% (во избежание ошибок, связанных с изменением оптической плотности вследствие разбавления). [c.462]

Феноксиметилпенициллин — белый кристаллический порошок без запаха, кисловато-горького вкуса, негигроскопичен, т. пл. 118—120°, [а о = + 180—200° (с = 1,95 -ный спирт), мало растворим в воде, растворяется в метиловом и этиловом спиртах, ацетоне, хлоро< рме, бутилацетате, глицерине. Устойчив в слабокислой среде, но разлагается при кипячении со щелочами и в присутствии фермента пенициллиназы. К солнечному свету устойчив. При взаимодействин с растворами хлоргидрата гидроксиламина, едкого натра, а затем уксусной кислоты, а также нитрата меди выделяется зеленый осадок. Для определения удельного поглощения по ГФ1Х 0,09— 0,1 гпрепарата (точную навеску) растворяют в 4 5"о-ного раствора гидрокарбоната натрия, разбавляют водой до 500 мл и определяют оптическую плотность (D) ири длине волны 268 ммк и при 274 ммк в кювете с толщиной слоя 1 см. Контрольным раствором служат 4 л1/г5 о-ного раствора гидрокарбоната натрня, разведенные водой до 500 мл. Прп длине волны 268 чмк Е = 34,8. Отношение D при длине волны 268 ммк к D при длине волны 274 ммк должно быть не менее 1,21 и не более 1,24. [c.735]

Исследования влияния магнитного поля на коррозионную активность технологических жидкостей проведены также на Морты-мья-Тетеревском месторождении. Напряженность поля составляла 30 кА/м. Для оценки защитной эффективности магнитной обработки использовали гравиметрический метод определения скорости коррозии металлов [209]. Степень защиты вычисляли на основании сопоставления экспериментальных данных, полученных на образцах без обработки магнитным полем и в его присутствии. При реализации гравиметрического метода определения скорости коррозии металлов продукты коррозии удаляют различными составами, взаимодействующими не с основным металлом, а с продуктами коррозии. Образцы металла, предназначенные для гравиметрических испытаний и имеющие форму тонкой пластинки, зачищают тонкой наждачной бумагой с зернистостью менее 0,1 мм, замеряют штангенциркулем линейные размеры с точностью до 0,01 мм и высчитывают площадь их поверхности. Затем обезжиривают ацетоном или этиловым спиртом, промывают дистиллированной водой, высушивают фильтровальной бумагой и определяют массу каждого образца на аналитических [c.71]

Анализ равновесного пара успешно применяется для определения не только спиртов, но и других токсичных веществ в биологических материалах [54,55]—ацетона, ацетальдегида, анестетиков (эфира, хлороформа, гало-тана), основания амфетамина, галогенированных [56— 58] и ароматических [59] углеводородов, метилмеркап-тана [60] и метилметакрилата [61]. В большинстве случаев при определении летучих веществ в жидких биологических объектах техника и приемы количественного анализа аналогичны рассмотренным выше для этилового спирта. Различия в основном касаются условий газохроматографического разделения, выбора стандарта, температуры установления равновесия и способов дозирования в хроматограф газовой фазы. [c.134]

Опыт 24. Несколько бутылей емкостью 0,5 л наполняют до половины легковоспламеняющимися жидкостями (например, метиловым или этиловым спиртом. ацетоном, бензолом). Взяв бутыль с метиловым спиртом, измеряют термометром его температуру. Допустим, она будет Ю° С. Согласно температурным пределам (см. табл. приложений), концентрация паров метилового спирта при этой температуре является взрывчатой. Д.1я тоге чтобы убедиться в этом, зажигают спичку, зажимают ее шипцами и опускают в бутыль. Происходит взрыв. Что подтверждает правильность определения взрывчатости смеси по температурным пределам взрываемосп . [c.258]

Перед определением показателя преломления откидывают верхнюю половину призмы рефрактометра (верхнее полушарие измерительной головки) и промывают ее поверхность диэтиловым эфиром (или этиловым спиртом, ацетоном) с помощью пипетки, затем протирают ватой мягкой гканью. После этого на поверхность призмы наносят две-три капли исследуемого неф- [c.33]

Получая инактивированные вакцины (брюшного тифа, холеры), биомассу медленно нагревают до 58—6ГС или обрабатывают формалином или спиртом. Инактивированные вакцины в организме вызывают образование иммунитета при помощи определенной фракции клеточной массы — липопротеидного комплекса, поэтому в последнее время эти вакцины пытаются освободить от балластных веществ, выделяя химическим путем содержащий антигены комплекс. Для этого клеточную массу обрабатывают трихлоруксусной кислотой или трипсином и затем антиген осаждают этиловым спиртом или ацетоном. [c.125]

К содержимому мерной колбы добавляют 6 мл 2%-ного раствора соли Рейнеке и оставляют на 3 ч в холодильнике. Образовавшийся осадок рейнеката холина отфильтровывают на холоду через стеклянный фильтр № 2 или 1. Колбу ополаскивают 3—5 раз по 2,5 мл охлажденной профильтрованной водой (со льда), насыщенной рейнекатом холина. Осадок на фильтре промывают охлажденным профильтрованным этиловым спиртом, насыщенным рейнекатом холина. После промывания осадок сушат, пропуская через него воздух. Сухой осадок растворяют в ацетоне (последовательно приливая небольшие порции его на фильтр). Раствор рейнеката холина в ацетоне выливают в мерную колбу емкостью 50 мл и доводят ацетоном до метки. Одновременно таким же способом (исключая экстрагирование и омыление) готовят рейнекат холина из определенного количества стандартного раствора холинхлорида. [c.147]

Титриметрически определяют серу в препаратах арсеназо III в присутствии индикатора ортанилового К. Навеску арсеназо III разлагают по методу Шенигера, и полученную серную кислоту титруют раствором хлорида бария. Для этого в колбу емкостью 300—500 мл из жаростойкего стекла с притертой пробкой вводят 10 мл 6%-ного раствора Н2О2 и пропускают кислород 3—5 мин. Навеску анализируемого образца 1—5 мг с содержанием 1—10% S, завернутую в беззольную фильтровальную бумагу, помещают в платиновую корзиночку, подвешенную к пробке. Бумагу поджигают и вносят в колбу. Пробку плотно прикрывают и придерживают рукой до полного сожжения образца. Через 30—40 мин пробку, крючок и стенки колбы обмывают небольшим количеством воды, пробку вынимают, а содержимое колбы кипятят 3—5 мин для разложения Н2О2 и охлаждают. К полученному раствору прибавляют 5—10 капель 0,2%-ного раствора ортанилового К, устанавливают pH 3—5, разбавляют вдвое этиловым спиртом или ацетоном и титруют из микробюретки или пипетки со шприцем 0,01 М раствором хлорида бария до перехода окраски из фиолетово-красной в сине-зеленую. В случае высокого содержания серы в навеске тон окраски несколько изменяется. Сравнивают с двумя растворами свидетелями раствором одного металлоиндикатора в тех же условиях и раствором металлоиндикатора с двумя каплями раствора хлорида бария. Таким же образом проводят холостое определение. [c.60]

Для определения процента хлора в хлорсодержащих органических соединениях применяли методику, описанную Чеблеем [8.]. Натрий прибавляли к раствору органического соединения, содержавшего хлор, в жидком аммиаке. Прибор охлаждали смесью сухого льда с ацетоном. После испарения аммиака избыток свободного натрия удаляли этиловым спиртом содержание хлора определяли одним из обычных методов. Однако, Дайнсом и Брюстером [9] было установлено, что в ряде случаев при разложении органических соединений образуются цианиды. Соединения, полученные при фторировании гексахлорэтана, относились именно к этой группе, [c.123]