Липиды с мочевиной

Кроме синтеза белков, аминокислоты, поступившие в организм с пищей, расходуются на синтез ряда азотсодержащих компонентов, в том числе нейромедиаторов, гормонов, а неиспользованные подвергаются расщеплению. В процессе деградации азот аминокислот включается в молекулу мочевины и выводится из организма с мочой, а их углеродный скелет в зависимости от его строения либо превращается в липиды и углеводы, либо окисляется в соответствии с энергетическими потребностями организма. [c.359]

В последние годы разработаны многочисленные методы фракционирования смесей липидов. Особенно пригодными оказались фракционная кристаллизация при низких температурах и фракционирование с помощью соединений включения мочевины, например для разделения насыщенных и ненасыщенных жирных кислот и их эфиров. Для выделения метиловых эфиров жирных кислот с одинаковой длиной цепи была использована вакуумная дистилляция, а молекулярную дистилляцию применяли для разделения моно-, ди- и триглицеридов. Противоточное распределение между двумя жидкими растворителями использовалось для фракционирования жирных кислот в соответствии с длиной цепи или в соответствии со степенью нена-сыщенности, а также для разделения моно-, ди- и триглицеридов и фосфолипидов. Разделение нейтральных и кислых липидов осуществляли диализом через каучуковые мембраны. [c.144]

Смесь кислот, выделенных из природного липида, разделяют на насыщенные и ненасыщенные одним из общепринятых методов. Предельные жирные кислоты изостроения отделяют от кислот нормального строения с идентичным молекулярным весом, используя метод, основанный на способности последних образовывать аддукт с мочевиной. Известно, что органические вещества с неразветвленной углеводородной цепью способны давать с мочевиной кристаллический комплекс — аддукт, который не образуется с веществами, имеющими разветвленную цепь. [c.8]

Браун и Нетши [14] использовали изложенные выше представления для изучения белков мембран и липо-протеидов. Определения они проводили в 8 М растворе мочевины и пришли к выводу, что в обычных растворах эти молекулы вытянуты и сильно сольватированы. Влияние липида ца агрегацию белка или на его конформацию в 8 М растворе мочевины не было обнаружено. [c.142]

Красные кровяные тельца, или эритроциты, не имеют ядра. 35% от веса эритроцитов составляют твердые вещества. К ним относятся гемоглобин (31—33%), липиды (0,06%), остальное приходится на долю калия, магния, мочевины и глюкозы. Белые кровяные тельца, или лейкоциты, лишены гемоглобина, в остальном же качественный состав лейкоцитов не отличается от состава плазмы и эритроцитов. Тромбоциты состоят в основном из белков и фосфолипидов (особенно много в них фосфолипида цефалина). [c.360]

Потовые железы расположены почти по всей поверхности тела, в особенности на ладонях и ступнях ног. Выделения потовых желез состоят в основном из воды, хлористого натрия и мочевины. Бактерии могут действовать на мочевину и на липиды кожного сала и вызывать образование неприятно пахнущих соединений. Дезодоранты или уничтожают бактерии, или прекращают выделение пота 374 и кожного сала. Кожное сало представляет собой воскообразное. [c.374]

Высшие алифатические углеводороды можно выделить из неомыляемой фракции липидов методом жидкостно-адсорбционной хроматографии на -окиси алюминия или путем образования клатратов мочевины. Насыщенные углеводороды можно отделить от ненасыщенных углеводородов методом жидкостно-адсорбционной хроматографии на силикагеле, а фракции нормальных насыщенных соединений можно поглощать на молекулярном сите и тем самым отделить их от изопарафинов. Нормальные и изоуглеводороды с 12—33 атомами углерода разделяют на колонке с силиконом, используя температурное программирование от 100 до 270°, [c.461]

Давать названия многим вновь описанным специфическим ферментам стало весьма затруднительно. Первоначально их называли в зависимости или от источника их получения, или по методу их выделения. По мере увеличения количества известных ферментов их стали называть более упорядоченно, добавляя окончание аза к корню наименования субстрата. Субстрат фермента — это соединение или же тип вещества, на которое действует фермент. Например, сахараза катализирует процесс гидролиза сахарозы, липаза — фермент, который гидролизует липиды, уреаза — фермент, расщепляющий мочевину. Эта система использована и при выборе названий для таких ферментов, как протеазы, оксидазы [c.331]

Наиболее изучены следующие системы ферментов системы гликолиза, окисления жирных кислот, цикла трикарбоновых кислот, ферменты дыхательной системы (переноса электронов), преобразования и синтеза аминокислот, синтеза белков, синтеза липидов, образования мочевины, синтеза пуринов и пиримидинов п синтез ДНК и РНК. [c.159]

Проникновению многих веществ, несомненно, способствует пористая структура клеточных оболочек. Имеются данные о различной проницаемости клеточных стенок по отношению к кислотам, щелочам, солям и органическим соединениям. Как известно, в клетку легко проникает углекислый газ, что играет большую роль в процессе фотосинтеза. Установлено такл<е, что неорганические кислоты поступают в нее медленнее, чем органические. Среди органических соединений (углеводы, аминокислоты, липиды) даже в пределах одной группы наблюдаются заметные различия в скорости поступления в клетку. Так, моносахариды проникают в клетку быстрее, чем дисахариды к полисахариды, что зависит от величины молекул названных соединений. Среди прочих органических соединений хорошей способностью к диффузии отличается мочевина. [c.22]

Многие горячие источники обладают повышенной кислотностью известны также и другие многочисленные места с низкими значениями pH. В некоторых из них, например в болотах и кислых рудничных водах, низкие величины pH обусловлены жизнедеятельностью микроорганизмов. Сушествуют также зоны со щелочными значениями pH, правда, они изучены менее детально, не исключено, что в них будут найдены весьма интересные микроорганизмы. Одной из причин возникновения высоких величин pH, обусловленных микробной активностью, служит разложение мочевины до аммиака. Уже давно известно (гл. 7), что многие микроорганизмы способны размножаться в интервале значений pH, в котором их внутриклеточные ферменты не функционируют. По-видимому, несмотря на то что pH окружающей среды молсет меняться, внутри своих клеток эти организмы поддерживают постоянную кислотность. В последние годы это предположение подтвердилось для ряда организмов, особенно для тех, которые существуют в условиях повышенной кислотности. Структуры на поверхности клеток у Таких организмов должны быть приспособлены к крайним значениям pH, что и было действительно показано для некоторых из них. Наружные слои клеток микроорганизмов, живущих в условиях повышенных температур и кислотности, отличаются, надо полагать, характерным химическим составом, который необходим им для того, чтобы выдерживать такие необычные условия. Некоторые организмы обладают жесткими мембранами с очень низким содержанием липидов в этом отношении, а также свойствами своих липидов их мембраны напоминают мембраны экстремально-галофильных бактерии. [c.15]

В настоящее время хроматографические методы в значительной степени вытеснили все другие методы фракционирования липидов в аналитическом и микропрепаративном масштабе. Для разделения сложных смесей липидов на отдельные классы соединений использовали адсорбционную и распределительную хроматографию на колонках с силикагелем, на целлюлозных фильтрах, импрегнированных силикагелем, и на бумаге из стекловолокна. Распределительная хроматография с обращенными фазами использовалась для разделения членов винилогомологического ряда на гидрофобизованной колонке или на гидрофобизованной бумаге. Газовую хроматографию использовали в виде распределительно-хроматографического варианта в первую очередь для разделения метиловых эфиров жирных кислот. Разделение смеси липидов по степени ненасыщенности можно осуществить путем хроматографического разделения на силикагеле комплексных ртутноацетатных соединений ненасыщенных липидов. Для выделения кислот и для фракционирования сильно полярных липидов была использована ионообменная колоночная и ионообменная бумажная хроматография. Методом хроматографии на колонках с мочевиной или на бумаге, пропитанной мочевиной, можно отделить жирные кислоты с прямой цепью от кислот с разветвленной цепью. Эффект разделения основан на образовании соединений включения неразветвлеиных жирных кислот с мочевиной. Разли шые хроматографические методы разделения липидов описаны в многочисленных обзорах [23, 86, 96, 100]. [c.144]

ХТС липидов на ионообменниках еще пока не описана. Можно полагать, что ионообменная ХТС может оказаться весьма полезной при фракционировании сильно полярных липидов. Для осуществления подобных разделений, вероятно, пригоден ионофорез в тонких слоях и хроматография и ионофорез в тонких слоях (см. стр. 32). Перспективна также хроматография на Т01ШИХ слоях мочевины или других веществ, способных образовать соединения включения. Вероятно, на слоях мочевины можно отделить неразвет- [c.180]

Состав пота здоровых людей практически постоянный. На 98—99% он состоит из воды, вместе с которой из организма выводятся продукты метаболизма — азотистые вещества (мочевина, мочевая кислота, аммиак, некоторые аминокислоты), следы белка, жирные кислоты, холестерин, хлорид натрия, ароматические гидро-ксикислоты, глюкоза, стероидные гормоны и др, В секрете потовых желез найдены ионы натрия, калия, кальция, магния, хлора, иода, меди, марганца, железа,, В поте апокринных желез содержится значительное количество липидов. Пот человека характеризуется кислой реакцией (pH секрета эккринных желез 3,8—5,6, апокринных 6,2—6,9), Пот представляет собой прекрасную питательную среду для естественной аутофлоры кожи человека, состоящей главным образом из грамполо-жительных микроорганизмов — стафилококков, стрептококков, микрококков, палочки коли, грибковых микроорганизмов и др. Появление пота с неприятным запахом (осмидроз) у здоровых людей обусловлено главным образом бактериальным расщеплением пота или окислением его кислородом воздуха. [c.107]

Аммиак превращается в мочевину. Кетокислота может участвовать в различных (в зависимости от природы радикала Я) обменных реакциях. Если Н является метилом, то образовавшаяся кетокислота будет пировиноградной она может включиться в лимоннокислый цикл или же пойдет на образование гликогена. Из нее может образоваться ацильный остаток, способный включиться в липогенетический цикл. Таким образом, белковые компоненты пищи могут превращаться в углеводы и липиды. Взаимопревращения этих трех классов питательных веществ будут суммированы в конце этой главы. [c.403]

Почки могут ежедневно фильтровать и реабсорбировать огромное количество жидкости благодаря тому, что в двух почках находится примерно два миллиона нефронов, обеспечивающих колоссальную функционирующую поверхность. В каждом нефроне вода с растворенными в ней электролитами и небольшими молекулами органических веществ (например, мочевины) проникает из кровеносных капилляров в почечные капсу.т. Белки, липиды и клеточные элементы остаются в кровяном русле. Около клубочкового фильтрата (первичная моча) реабсорбируется в проксимальных извитых канальцах, которые окружены сетью тончайших капилляров. В процессе реабсорбции в кровь возвращается [c.441]

Изучение азотистого обмена главной своей целью обычно имеет изучение белкового равновесия. Однако в пище и кале обычно при этом изучается весь азот, который может быть определен путем сжигания по Къельдалю (т. е. находящийся в форме соединений NH=или NH2), и не определяются только производные азотистой и азотной кислот. Таким образом, вместе с белками определяются и продукты белкового распада — аминокислоты, мочевина, аммиак и т. п., а также содержащие азот липиды. Но содержание этих веществ в пищевых веществах в со- [c.193]

При использовании трудноусваиваемых источников азота возрастают энергетические потребности микроорганизма, на которые расходуется повышенное количество источника углерода. Поэтому для обеспечения направленного биосинтеза липидов микроорганизмами используются легкоассимилируемые источники азота, к числу которых можно отнести некоторые органические соединения, особенно аспарагин и мочевину. Высокая эффективность усвоения мочевины в качестве источника азота связана с ее физиологической нейтральностью. [c.339]

Аминокислоты, катаболизм — распад аминокислот в организме, сопровождающийся отщеплением аминогруппы. Углеводородный скелет молекулы аминокислоты превращается в продукты, которые способны метаболизировать по путям, общим с продуктами превращения углеводов и липидов, в дальнейшем эти продукты могут быть полностью окислены до углекислого газа и воды. Азот аминогруппы переходит в состав конечных продуктов азотистого обмена, основными из которых являются мочевина, мочевая кислота, аммиак. Кроме главных, экскретируются также и другие соедвнения, содержащие азот, но в значительно меньших количествах креа-тинин, индикан, аллантоин, свободные аминокислоты, пурины. [c.7]

Экстракт, содержащий фракцию общих липидов, омыляют, разрывая эфирные связи. Выделившиеся таким образом свободные жирные кислоты затем отделяют от неомыляемых липидов, например углеводородов, высших жирных спиртов и стеринов. Липиды неомыляемой части можно фракционировать далее методом жидкостно-адсорбционной хроматографиии или путем образования клатратов мочевины с последующим хроматографическим разделением. [c.450]

Углеводороды, высшие спирты жирного ряда и стерины составляют компоненты неомыляемой фракции, которые необходимо раньше разделить, а уже затем хроматографировать. Для этого неомыляемую фракцию обрабатывают мочевиной в горячем спиртовом растворе [85]. При охлаждении мочевина со спиртами жирного ряда и углеводородами образует кристаллические клатрат-ные соединения. Стерины остаются в верхнем слое. При кипячении клатратов с водой выделяются спирты жирного ряда и углеводороды. Методом жидкостно-адсорбционной хроматографии на окиси алюминия полученные фракции можно разделить далее на углеводороды, одноосновные и двуосновные спирты [18]. Неомыляемую же фракцию липидов можно сразу разделить на окиси алюминия без предварительного фракционирования мочевиной [57]. Сырую фракцию спиртов затем разделяют хроматографически на окиси алюминия на одноатомные спирты, а,а)-диолы и а,р-диолы, используя для элюирования различные сочетания растворителей. [c.454]

Метод с использованием клатрата мочевины [18, 85]. Неомыляемую фракцию (10 г) помещают в колбу с мочевиной (5,5 части) и этанолом (75 объемов). Смесь нагревают до температуры кипения и затем дают ей остынуть. Выпавший в осадок нерастворимый комплекс отфильтровывают и промывают холодным этанолом. К фильтрату добавляют мочевину (4 г) и полученную смесь вновь нагревают и охлаждают до получения второй порции кристаллов. Третье выпадение кристаллов получают, уменьшая объем второго фильтрата. Этим методом выделяют алифатические углеводороды и спирты, не обладающие сильно разветвленными цепями. Объединенный комплекс перекристаллизовывают из этанола и разлагают при встряхивании со смесью воды и эфира. Липиды экстрагируют в слой эфира и извлекают, отгоняя растворитель. Остаток растворяют в петролейном эфире и хроматографически разделяют на активированном алюминии. Петролейным эфиром (60—80°) элюируют насыщенные углеводороды. Одноатомные спирты элюируют смесью хлороформа и бензола (1 2), а а,р-диолы — смесью хлороформа и этанола. Чтобы очистить эту фракцию, а,р-диолы затем растворяют в ацерне, содержащем микроколичества серной кислоты, для образования кеталей, которые хроматографически разделяют на окиси алюминия и элюируют петролейным эфиром. а,р-Диолы выделяют из их ацеталей гидролизом. Диоловые фракции анализируют методом ГЖХ, переводя их в соответствующие углеводороды. [c.454]

Спирты жирного ряда выделяют из неомыляемой фракции липидов путем образования комплексных соединений с мочевиной или же путем жидкостноадсорбционной хроматографии на окиси алюминия. Спирты жирного ряда можно разделять методом ГЖХ, как таковые, или в виде ацетатов, или в виде исходных углеводородов. Наилучшее разделение насыщенных и ненасыщенных соединений с 18 атомами углерода достигается при хроматографическом разделении ацетатов на колонках, заполненных полиэфиром. Двуатомные спирты и спирты с числом атомов углерода более 20 лучше разделять, предварительно превращая их в соответствующие углеводороды. [c.468]

Известно, что в клетках различных организмов основная часть липидов присутствует в виде комплексов с белками — липопротеидов, которые разрушаются в процессе экстракции липидов различными органическими растворителями [петролейный эфир, хлороформ, диэтиловый эфир или смесь растворителей различной полярности, например хлороформ— метиловый спирт (2 1), этиловый спирт — диэтиловый эфир (3 2)]. При экстракции необходимо учитывать факторы, которые могут влиять на изменение структуры липидов температура, свет, кислород воздуха, действие липолитических ферментов и другие. Липиды способны растворять многие нелипидные компоненты (углеводы, аминокислоты, пептиды, мочевину и другие), а также образовывать с ними комплексы, что загрязняет липидные экстракты. Удаление этих примесей достигается промыванием липидного экстракта водой и насыщенными растворами минеральных солей или хроматографированием на колонках с различными адсорбентами. [c.187]

ГЛИЦЕРИДЫ — сложные эфиры глицерина по числу кислотных остатков в молекуле делятся на MOHO-, ди- и триглицериды по числу различных кислотных остатков — на одно- (все кислотные остатки одинаковые), дву- и трехкислотные Г. (кислотные остатки разные). Изомерия Г. связана с расположением кислотных остатков. Среди Г. неорганич. кислот большое значение имеет триглицерид азотной к-ты, неправильно называемый нитроглицерином. Г. высших и нек-рых низших жирных к-т широко распространены в природе, т. к. являются основной составной частью липидов, к-рые служат источником получения индивидуальных Г. Фпзич. и химич. свойства последних очень сходны, поэтому выделение их в чистом виде весьма сложно оно достигается ректификацией, дробной пизкотемп-рной (до —75°) кристаллизацией из растворите.яей (ацетон, метанол, эфир и т. д.), через соединения включения (комплексы) с мочевиной, противоточным распределением, различными видами хро.матографии и т. д. Таким путем удастся получить несколько фракций Г., различающихся размерами кислотных остатков или числом кратных связей в них. Эти фракции вновь подвергают разделению, получая в конце концов чистые Г. [c.485]

Чаще всего в качестве гидролизуемых групп выступают сложная эфирная, карбонатная, амидная, ангидридная, урета-новая, мочевинная, семикарбазидная и т.п. группы, имеющие аналогию со сложной эфирной и пептидной (амидной) группами, входящими в состав многих природных низкомолекулярных веществ и полимеров — липидов, пептидов, белков. [c.37]

Скорость этой реакции, по-видимому, зависит от типа неалкильного заместителя при атоме азота. Например, амиды деалкилируются медленнее соответствующих ионизирующихся аминов [96]. К сожалению, в настоящее время еще не проведены систематические сравнительные исследования кинетики гидролиза замещенных мочевин и соответствующих аминов, амидов и карбаматов. Ходжсон и Касида [97] изучили реакцию деалкилирования на примере большого числа карбаматов и для сравнения с некарбаматами реакцию деалкилирования монурона и диурона. Деалкилирование протекало под действием ферментной системы, выделенной из микросом печени крысы. Эти авторы установили, что мочевины деалкилируются с большим трудом, чем карбаматы, и пришли к выводу, что монурон и диурон, как трудно растворимые в воде вещества, малодоступны для воздействия ферментов. Однако установлено, что деалкилированию аминов в значительной степени способствует их хорошая растворимость в липидах [100]. Вероятно, скорость деалкилирования мочевин определяется не их растворимостью в воде, а какими-то другими, еще не выясненными свойствами или особенностями строения. [c.111]

Одним из компонентов механизмов покоя является антиоксидантная система, поддерживающая жизнеспособность организма при проявлении его пониженной функциональной активности. При этом компоненты АОС могут не только обеспечивать продолжительность состояния покоя, но и при создании благоприятных условий активировать выход из состояния гипобиоза живых организмов [Рогожин, Курилюк, 1996]. Ведущим звеном этой системы являются процессы перекисного окисления липидов, запускающие у покоящихся организмов основные процессы жизнедеятельности. Доказательствами этого утверждения служат следующие факты. При создании благоприятных условий (температура, влажность, кислород) семена могут прорастать [Николаева и др., 1985 Обручева, Антипова, 1997]. Однако предварительно у них должно активироваться дыхание. В покоящихся семенах дыхание крайне ослаблено, отмечаются изменения в составе жирных кислот и функционально активных веществ мембран митохондриальной системы за счет которых обеспечивается разобщение механизмов окислительного фос-форилирования при сохранении активности окислительных процессов [Скулачев, 1996]. Однако при активизации дыхания поступивший кислород ускоряет пусковые механизмы процессов ПОЛ. Контроль за этими процессами осуществляет антиоксидантная система в составе низкомолекулярных (аскорбиновая кислота, гидрохинон, мочевая кислота, мочевина, глутатион и др.) и высокомолекулярных (супероксиддисмутаза, каталаза, пероксидаза) соединений [Кения и др., 1993 Меньшикова, Зен-ков, 1993 Зенков, Меньшикова, 1993]. Причем между компонентами системы просматривается взаимная зависимость [Верхотуров, 1999]. Среди ферментов следует вьщелить пероксидазу, которая, обладая широкой субстратной специфичностью, способна катализировать реакции окисления различных органических соединений [Угарова и др., 1981]. Причем особенностью механизма действия пероксидазы является способность фермента катализировать окисление органических субстратов с участием [c.48]

Ведущим звеном этой системы являются процессы перекисного окисления липидов (ПОЛ), запускающие у покоящихся организмов основные процессы жизнедеятельности. Доказательствами этого утверждения служат следующие факты. При создании благоприятных условий (температура, влажность, кислород) семена могут прорастать. Однако предварительно у них должно активироваться дыхание. В покоящихся семенах дыхание крайне ослаблено, отмечаются изменения в составе жирных кислот и функционально активных веществ мембран митохондриальной системы, за счет которых обеспечивается разобщение механизмов окислительного фосфорилрфования. Однако поступивщий кислород активирует пусковые механизмы процессов ПОЛ. Контроль за этими процессами осуществляет антиоксидантная система, в составе низкомолекулярных (аскорбиновая кислота, гидрохинон, мочевая кислота, мочевина, глутатион и др.) и высокомолекулярных (супероксиддисмутаза, каталаза, пероксидаза) соединений. Причем между компонентами системы просматривается взаимная зависимость. Особенностью механизма действия пероксидазы является способность фермента катализировать окисление органических субстратов с участием кислорода, т.е. фермент может выполнять роль оксидазы. Оксидазными субстратами фер- [c.209]

Наружный капсид чувствителен к различным физическим и химическим воздействиям. В гипотонических растворах разрушается капсомерная структура [12]. Протеазы (например, химо-трипсин) [264, 283] и тиоцианат натрия разрушают наружный капсид. Сердцевина же очень стабильна и устойчива к обработке мочевиной, гуанидином, диметилформамидом, диметилсульфо-ксидом (ДМСО), додецилсульфатом натрия (ДСН) в умеренных концентрациях [133]. Она устойчива также к действию про-теаз [264, 283]. Поскольку реовирусы не содержат липидов, они не разрушаются при обработке органическими растворителями, например эфиром [107, 247, 298]. Вирионы устойчивы к действию 1%-ной перекиси водорода, 1 /о-ного фенола, 3%-ного формальдегида они стабильны в широком интервале значений pH и температуры [236, 288, 298, 325]. [c.271]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология