Буферные растворы выбор

Для выбора подходящего индикатора проводят ориентировочное определение значения pH испытуемого раствора с помощью универсального индикатора, далее готовят эталонный ряд буферных растворов, значения pH которых лежат в области перехода окраски выбранного индикатора, добавляют к ним определенное одинаковое количество этого индикатора и измеряют pH (с точностью 0,1) испытуемого раствора методом стандартных серий. [c.486]

При фракционировании белков методом ионообменной хроматографии большое внимание уделяют выбору ионообменника (природе матрицы и емкости ионита) и буферного раствора, при котором осуществляется сорбция белков (величине pH и ионной силы, природе буфера и буферной емкости). [c.108]

После приближенного определения pH испытуемого раствора, выбора индикатора и состава буферной смеси приступают к точному определению рП буферным методом. Буферный метод определения pH основан на сравнении интенсивности окраски индикатора в испытуемом растворе и стандартных буферных растворах с известными величинами pH, к которым добавлен тот же индикатор и в том же количестве. Значение pH испытуемого раствора равно pH того буферного раствора, окраска которого совпадает с окраской испытуемого раствора. [c.134]

Классический электрофорез без носителя осуществляют в U-образной ячейке, в которой на буферный раствор, содержащий белок, наслаивается чистый буферный раствор. Выбором подходящего pH достигают одинакового знака заряда белков, ко- [c.350]

Были поставлены опыты по определению чувствительности реакций на сульфат-ион в зависимости от кислотности раствора. Для этой цели применяли соляную или азотную кислоту и буферные растворы, выбор которых оказался весьма затруднительным. Б. И. Кузнецов [4] отметил ранее, что при определении сульфата при помощи ториевого комплекса с реактивами, содер-СООН [c.318]

Для выбора оптимального значения pH при постоянных концентрациях определяемого вещества и реагента изучают влияние pH на интенсивность окраски раствора при определенной длине волны, ориентируясь на область наибольшего поглощения в случае бесцветного реагента. Для окрашенных растворов оптимум соответствует наибольшему различию в поглощении аналитической формы и исходных реагентов. Наиболее благоприятная ситуация складывается тогда, когда небольшие изменения pH практически не влияют на светопоглощение раствора пои условии, что само поглощение по возможности максимально. С химической точки зрения влияние pH сказывается на ионном состоянии определяемого элемента или вещества и исходных реагентов, равновесии аналитической и побочной реакций, выходе и кинетической устойчивости аналитической формы. Постоянное значение pH в фотометрируемом растворе поддерживают соответствующими буферными растворами или достаточными количествами кислот или щелочей. [c.59]

Существенную роль в выборе буфера должны играть солевые эффекты и возможность температурных изменений. Нужно иметь в виду и химическую природу компонентов буферного раствора, поскольку добавляемые вещества могут образовывать нерастворимые соединения и комплексы или давать другие нежелательные реакции со средой. Выше (стр. 98) мы рассмотрели влияние типа буфера и его концентрации на буферную емкость, эффект разбавления, солевой эффект и температурный коэффициент. Обсуждение может служить руководством при выборе подходящей буферной системы. [c.114]

Полная ассоциация отвечает наибольшему значению D" . Поэтому степени диссоциации и, соответственно, ассоциации выражаются соотношениями л = = и Р = о"Кр. Выбор подходящих буферных растворов (кис- [c.176]

В отчете приводят приближенное и точное значения pH испытуемого раствора, а также обоснование к выбору состава буферных растворов и расчета при их приготовлении. [c.135]

В то время как, например, для хроматографии на бумаге существуют определенные испытанные буферные смеси или для адсорбционной хроматографии известны элюотропные ряды растворителей, для хроматографии на ионитах трудно дать какую-либо универсальную пропись для выбора буферных растворов. Поэтому для каждого данного ионообменника и для каждой данной смеси хроматографируемых веществ необходимо подобрать оптимальные условия разделения эмпирическим путем. [c.556]

Выбор буферного раствора определяется исключительно природой фракционируемого материала. Если хлориды не вступают с последним в реакцию, то рекомендуется проводить хроматографию а ДЭАЭ-целлюлозе в СГ-форме. [c.205]

Для ионогенных соединений существуют и другие варианты выбора хроматографической системы. Во-первых, это ионообменная хроматография на материалах, которые по химизму взаимодействия повторяют классические иониты. Недостатком такого режима является сравнительно невысокая эффективность разделения. Подвижная фаза, как правило, представляет собой буферный раствор. Его pH и ионная сила подбираются таким образом, чтобы обеспечить желаемые значения констант сорбции. Другой режим разделения ионогенных соединений — так называемая ион-парная хроматография. Методически суть, ее сводится к тому, что в обычную обращенно-фазовую систему добавляют гидрофобные ионы, имеющие заряд, противоположный по знаку заряду разделяемых ионов. Этот прием позволяет по- оТучить пики ионогенных соединений почти идеальной формы, что редко достигается при обычной обращенно-фазовой или / ионообменной хроматографии соединений данной группы. [c.35]

Конечно нет строгого пути для выбора правильного значения а при расчете индивидуальных ионных коэффициентов активности. Однако из табл. III. 3 можно видеть, что y i в разбавленных растворах с полным основанием определяется условно из уравнения Дебая и Хюккеля в форме (1.27) с величиной d = 4—6 А. Если в буферных растворах / 0,1, то вариации а от 4 до 6 А соответствуют изменению менее чем 0,013 ед. ран, рассчитанного по уравнению (III. 37). [c.60]

Очевидно, приписывание величин рНд отдельным буферным растворам фиксирует значение Е° +Ед, и, наоборот, выбор стандартного потенциала определяет шкалу pH. Обе величины могут быть оценены только с помощью нетермодинамических предположений, которые частично обсуждены в предыдущих главах. Мы сочли необходимым рассмотреть здесь оба эти подхода к стандартизации измерений pH. [c.67]

Наиболее простой способ применения индикаторной бумаги заключается в следующем. Каплю исследуемого раствора помещают на полоску индикаторной бумаги. Появившуюся окраску сравнивают с набором стандартных цветов. Другой способ состоит в том, что конец полоски индикаторной бумаги опускают в раствор. Точность определения может быть повышена, если пользоваться вспомогательными буферными растворами, значения pH которых близки к pH исследуемого раствора. Известное ограничение в этом случае обусловлено недостаточно широким выбором индикаторных бумаг. [c.151]

Решающим при сочетании электрофореза с ТСХ является правильный выбор электролита, которым предварительно пропитывают тонкий слой сорбента. Обычно для разделения смесей ионов-щелочных металлов в качестве электролита применяют буферный раствор ЫН4С1 + НС1 (pH 2,18), 3,5-10- М раствор паравольфра-мата аммония или 0,001—0,1 М раствор нитрата аммония. Для анализа щелочноземельных металлов применяют 0,15 М раствор лимонной кислоты, для анализа тяжелых металлов — 0,05 М раствор КаОН, 0,1 М раствор НС1 или 0,1 М раствор а-оксиизомас-ляной кислоты. Редкоземельные элементы анализируют на фоне [c.159]

Эффективность разделения неорганических веществ методами зонного электрофореза и ионообменной хроматографии сильно зависит от pH используемого буферного раствора и от правильного выбора комплексообразующего реагента. При разделении органических кислот, аминокислот и многих других веществ биологического характера изменение pH влияет на разделение значительно сильнее, чем комплексообразование. [c.491]

Рис. 30.5а. Схема установки для выбора буферных растворов в инструментальном анализе аминов.

Тем не менее, несмотря на высокую эффективность современных методов, разделение сложных смесей пептидов приходится проводить в несколько стадий. Некоторые пептиды удается получить в достаточно очищенном виде уже на первой, стадии, в то время как для разделения пептидов, близких по молекулярному весу, по суммарному заряду или сродству к матрице, приходится подбирать специальные условия, варьируя при этом природу буферного раствора, тип ионита или молекулярного сита. Найти условия разделения пептидов с известной структурой не составляет большого труда. На практике исследователь имеет дело с малоизученным материалом, поэтому поиск оптимальных условий фракционирования приходится вести методом проб и ошибок. Ограниченное количество исходного материала и неизбежные потери из-за необратимой сорбции вынуждают резко ограничивать выбор возможных вариантов. [c.388]

Хотя в настоящее время существуют методы определения изоэлектрической точки исследуемых белков с достаточной точностью (например, изоэлектрическое фокусирование в градиенте плотности сахарозы), знание изоточки вовсе не обязательно для выбора ионообменника. Пригодность того или иного ионита легко определить по степени связывания белка в статических условиях. В случае анионита смолу приводят в равновесие с буферным раствором, pH которого соответствует верхней границе области устойчивости исследуемого белка. В случае катионита pH буфера будет соответствовать нижней границе этой области. Обессоленный белок растворяют в соответствующем буфере, осторожно (избегая вспенивания) перемешивают с порцией ионита, отделяют надосадочную жидкость. По концентрации белка в надосадочной жидкости судят о степени связывания его с соответствующим ионообменником. [c.431]

Выполнение работы. 1. Снятие спектра поглощения и выбор длины вол н ы. в делительную воронку помещают 1 мл стандартного раствора спирта в формалине, имеющего наибольшую концентрацию, добавляют по 1 мл растворов метаванадата аммония и 8-гидроксихинолина и 4 мл ацетатного буферного раствора. Перемешивают, добавляют 15 мл бензола и взбалтывают в течение 20 мин. Бензольный слой сливают в другую воронку, взбалтывают 2 мин с 10 мл раствора NaOH, сливают органическую фазу в кювету прибора (/ = 1 см) и измеряют оптическую плотность относительно раствора сравнения (15 мл бензола встряхивают с 10 мл NaOH и бензольный слой помещают в кювету) в области длин волн 300-400 нм через каждые 5-10 нм. Строят кривую светопоглощения в координатах оптическая плотность - длина волны и выбирают длину волны (светофильтр), соответствующую максимуму поглощения. [c.175]

Поэтому при выборе, условий ироьоденпл ф014.) 1ег[)ических ре<1к-ций необходимо учитывать область поглоще 1ия анионсв, рекомендуя использование тех или иных вспомогательных реагентов (кислот, и е-лочей, компонентов буферных растворов). При применении экстракционно-спектрофотометрического метода для исследования процессов комплексообразования, разделения и определения многих элементов используются различные органические растворители. При выборе растворителей нужно учитывать их прозрачность в определенных участках спектра (табл. 5). [c.39]

Чтобы избежать ошибок при использовании этого метода, рекомендуется готовить несколько серий растворов (две-три), отличающихся исходной концентрацией, и снимать поглощение приготовленных растворов при нескольких длинах волн (не менее двух). Кроме того, полнота образования комплексного соединения часто зависит от pH раствора. Оптимальное значение pH образования комплекса должно быть предварительно установлено (см. стр, 43, 46) и его следует соблюдать при приготовлении серии растворов. Обычно для этого используют буферные растворы. При выборе буферного раствора необходимо, чтобы комплексообразование иона металла с ком1юнентами буферного раствора отсутствовало. Для получения воспроизводимых результатов ионная сила раствора также должна быть постоянной. [c.100]

Выбор оптимальной концентрации суммы редкоземельных элементов в эталонных растворах (а следовательно, концентрации элемента с большим атомным весом в растворе сравнения) проводят по методу Ба-стиана (см. стр. 72). Выяснять пределы соблюдения закона поглощения (выбирать оптимальную концентрацию суммы редкоземельных элементов) следует по растворам элемента с меньшим атомным весом (Рг, У). В мерные колбы емкостью 25 мл вводят раствор соли элемента с меньшим атомным весом (Рг или У) в количествах (мкг) 8, 16, 24, 32, 40, 48, 56 (интервал в концентрациях должен быть постоянным. Ас = = 8мкг), прибавляют 1 мл арсеназо М, 15 мл ацетатного буферного раствора и доводят объем раствора до метки водой. Измеряют на спектрофотометре при А- 640 нм оптическую плотность каждого последующего раствора по отношению к предыдущему [А ). Далее поступают, как указано на стр. 205. [c.216]

Для селективного элюирования поглощенных ионов можно использовать воду, буферный раствор (фосфатный, ацетатный, боратный, гидрокарбонатный и др.) с определенным значением pH и ионной силы, растворы минеральных (соляная, азотная, серная, фосфорная) и органических (фенол, лимонная, молочная, винная, щавелевая, ЭДТА) кислот. Выбор элюента облегчается тем, что предельные коэффициенты распределения большинства [c.317]

С точки зрения техники анионообменная хроматография отлича- ется от катионообменной лишь выбором буферных растворов. [c.261]

Оуэн и Кинг [60] определили диссоциацию борной кислоты в растворах х.лористого натрия с помощью элементов без жидкостных соединений,, содержащих буферные растворы. Особенность этой работы состояла. в таком выборе стандартного состояния, при котором коэффициенты активности принимались равными единице для любого раствора хлористого натрия с концентрацией т. Таким образом, все растворы солей рассматривались в качестве отдельных растворителей. Способ математической обработки опытных данных аналогичен тому, который применяется в случае смосей воды с органическими растворителями, и был описан в гл. XV, 7. Хотя этот метод имеет некоторые формальные и логические преимущества, он не дает таких результатов, которые нельзя было бы получить с помощью старых методов, применение которых было рассмотрено в этом параграфе на примере изучения равновесия в растворе угольной кислоты. [c.585]

Скорость изменения окраски в конечной точке титрования. Кинетическая инертность или лабильность акваионов обусловливает выбор способа титрования — прямое или обратное. Образование лабильных комплексов ионов с металлоиндикатором обеспечивает быстрое изменение окраски раствора в конечной точке титрования. Соединение кобальта с ПАН-2 кинетически инертно, поэтому ПАН-2 не используют в качестве индикатора при определении кобальта прямым методом. На скорость изменения окраски раствора в конечной точке титрования влияют природа и концентрация буферного раствора. Например, была изучена скорость вытеснения свободного индикатора (Ind) при взаимодействии комплекса меди с металлоиндикатором и титрантом Y [755] [c.158]

Выбор аналитического метода в основном зависит от величины измеряемой растворимости. Умеренно высокие значения обычно определяют гравиметрическим или объемным методом, а низкие значения — полярографическим [15], колориметрическим [15, 48] или радиометрическим [59] методами. Незаряженные формы могут быть иногда отделены от насыщенного раствора экстракцией. Так, растворимость углеводородных лигандов в водных растворах серебра(I) была определена спектрофотометрически после экстракции лиганда гексаном [2], в то время как растворимость дитизона в буферных растворах измерялась [25] добавлением избытка радиоактивного серебра, экстрагированием дитизоната серебра хлороформом и определением активности в органической фазе. [c.232]

Почти во всех случаях большое значение имеет pH (см. гл. 6). В связи с этим важным критерием является зависимость оптической плотности от pH, когда в растворе имеется некоторый избыток реактива. При выполнении массовых анализов в лаборатории, несмотря на использование буферных растворов или индикаторов и т. п., всегда в серии растворов 31начения pH будут несколько отличаться. Поэтому для широкого применения реактива важным критерием его оценки, т. е. критерием выбора реактива, является отношение его комплекса (в присутствии некоторого избытка реактива) к изменению pH. Лучшим реактивом является такой, у которого достаточно широка площадка pH , т. е. интервал pH, при котором оптическая плотность мало изменяется. Влияние pH на комплексы различных реактивов показано на рис. 84. При реактиве. [c.229]

Наряду с одноколоночным анализом в непрерывном градиенте был разработан одноколоночный анализ в ступенчатом градиенте [8]. Вначале этот метод сильно уступал по эффективности двухколоночной схеме анализа время анализа белкового гидролизата составляло 38 ч. Разделение проводили на колонке (0,63X100 см) с амберлитом Щ-120 (20—40 мкм) в трех буферных растворах с pH 2,95 4,15 и 5,0 при 40 и 50 °С. Удовлетворительное разделение этим методом достигалось при правильном выборе градиента и тщательном подборе прочих условий анализа. Дальнейшее развитие этой схемы шло по линии сокращения времени анализа, т. е. повышения эффективности, а также повышения хроматографического разрешения при анализе нингидринположительных компонентов из биологических материалов. В результате продолжительность анализа белковых гидролизатов была доведена до 260 мин [40]. При анализе физиологических жидкостей основная задача состоит в том, чтобы разделить все имеющиеся компоненты на одной колонке и определить объемы их выхода в идентичных условиях. В связи с этим следует отметить работу Гамильтона [41], в которой указаны объемы выхода 180 веществ. Эти данные можно использовать для идентификации компонентов физиологических жидкостей, а также для выбора условий анализа нингидринположительных веществ природных смесей. Для повышения разрешения смесей амидов и других трудноразделяемых пар аминокислот также используют буферные растворы на основе солей лития [42, 43]. [c.348]

Пептиды наносят на колонку в 0,1—0,2 н. уксусной или муравьиной кислоте, в 0,2%-ном карбонате или бикарбонате аммония. Тип геля выбирают так, чтобы пептид появлялся на выходе колонки вблизи свободного объема. Для этой цели наиболее всего подходят сефадексы 0-10, 0-15, 0-25 и биогели Р-2 и Р-6. Объем образца не должен превышать 7з—74 от объема столбика геля (например, в случае сефадекса 0-25). Элюировать удобно летучими буферными растворами, хотя выбор буфера зависит от растворимости пептида. В случае необходимости обессоливание ведут в дистиллированной воде, однако при этом происходит расширение зон, которое может привести к их перекрыванию. Для достижения полного обессоливания необходимо увеличить столбик геля. В зависимости от объема выхода пептида, нагрузки на колонку и объема образца скорость элюирования составляет примерно 7—20 мл/ч см . При работе на сильиосшитых гелях рекомендуется несколько увеличить высоту столбика геля (по сравнению с сефадексом 0-25). Пептиды обнаруживают в элюате колориметрически, спектрофотометрически, а выделяют упариванием при пониженном давлении или лиофилизацией. [c.397]

Если необходимо разделить два твердых вещества, то во многих случаях для этой цели применяют выщелачивание или экстрагирование. Экстракцию обычно используют для выделения чистого неорганического вещества. В ацетоне, ацетофеноне, уксусном эфире, ацетоуксусном эфире, спирте и т. п., как правило, растворяются соли, в состав которых входят анионы больших размеров, такие, как роданиды, политионаты и ксантогенаты их можно опять выделить из раствора добавлением бензола. Выбор наиболее подходящего растворителя производят только на основании данных о растворимости если же они отсутствуют, то проводят предварительные опыты, которые позволяют судить о том, как ведут себя разделяемые вещества по отношению к избранному растворителю. При эгом обращают внимание не только на такие растворители, которые можно рассматривать как химически индифферентные, но также на кислоты, основания, растворы солей и буферные растворы. [c.240]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология