Определение сахарозы в водном растворе

Рис. 4. Номограмма для определения концентрации сахарозы и этилового спирта в водном растворе

Рефрактометрическое определение. Содержание сахара в чистых водных растворах сахарозы может быть определено на основании показателя преломления, измеряемого в рефрактометре при 20—28°. Содержание сахара находят по специальным таблицам, где приведены показатели преломления для растворов сахара различной концентрации (см. стр. 467). Описание метода определения сахарозы и рафинозы в мелассе см. [35]. [c.332]

ОПРЕДЕЛЕНИЕ СОДЕРЖАНИЯ САХАРОЗЫ В ВОДНОМ РАСТВОРЕ НА РЕФРАКТОМЕТРЕ-САХАРИМЕТРЕ [c.389]

Определение концентрации водного раствора сахарозы и этилового спирта. По средним арифметическим значениям показателя преломления и плотности раствора [c.19]

Характеристика продукции, сырья и полуфабрикатов. Помадные конфеты — сахарные кондитерские изделия, которые состоят из мелких (10... 20 мкм) кристаллов сахарозы, распределенных в насыщенном водном растворе различных сахаров сахарозы, глюкозы, мальтозы и декстринов. Такую структуру изделий получают из помадной массы — полуфабриката, образованного в результате определенной технологической обработки сахара, при которой сахар из крупнокристаллического состояния переходит в мелкокристаллическое, отчего помадная масса легко растворяется и тает . В отличие от сахара в помадной массе содержится от 9 до 12 % воды. Кроме того, в ней находятся мельчайшие пузырьки воздуха, придающие ей некоторую пышность и белую окраску. [c.131]

Из водных растворов она выделяется в виде кристаллов с температурой плавления в пределах 145—148°. Сладость ксилозы составляет примерно 50% сладости сахарозы. Организмом человека она практически не усваивается. Эта особенность позволяет использовать ее в качестве сладкого вещества для больных диабетом. Организм травоядных животных усваивает ксилозу полностью. Она восстанавливает Фелингову жидкость приблизительно в такой же степени, как и глюкоза. Благодаря этому для количественного определения ксилозы в водных растворах обычно применяют методы восстановления меди, используемые при анализах глюкозных растворов. [c.364]

Ход определения. Получите у преподавателя в химический стакан немного водного раствора сахарозы неизвестной концентрации и приступайте к анализу. [c.390]

Очень большое значение имеют относящиеся к этому типу анализа методы исследования водных растворов различных сахаристых веществ (полупродуктов и отходов сахарного производства, фруктовых и ягодных соков [45], джема, мармелада [47], меда). При этом часто довольствуются условной характеристикой концентрации таких растворов в процентах сахарозы, непосредственно отсчитываемых по шкалам рефрактометров-сахариметров. Если же нужно знать истинное содержание сухих веществ , то необходимые (обычно небольшие) поправки для каждого вида анализируемых объектов можно установить прямым определением сухого остатка высушиванием. [c.48]

Прецизионный лабораторный рефрактометр РПЛ Киевского завода контрольно-измерительных приборов (рис. 86) предназначается для определения процентного содержания сухих веществ в водных растворах. Шкала его охватывает интервал от 1,333 до 1,381 (т. е. до 30% сухих веществ по сахарозе). [c.211]

Вязкость белкового раствора с сахарозой т], необходимую для работы с экстраполяционными соотношениями (III.3) — (111.5) обычно принимают равной вязкости водных растворов одной сахарозы (см., например, [78, 91]) определяют последнюю с помощью номограмм, взятых, например, из работы [121]. Однако, как показано в работе [122], для корректного определения времен корреляции вращения белков для относительно больших концентраций белка (порядка 10 вес. %) вязкость исследуемых буферных растворов белка с сахарозой необходимо измерять непосредственно. В то же время для определения предельных экстраполяционных величин А,,,,, Ит Я. [c.139]

Позднее Джордан, Аккерман и Бергер [156] использовали полярографический метод для определения Одв кислорода в водные растворы сахарозы и глицерина. При этом для расчета Одв они использовали модифицированное уравнение Ильковича [c.811]

Значительно быстрее сухие вещества можно определить при помощи рефрактометра. Этот прибор, применяемый в сахарной промышленности, показывает весовое содержание сахарозы в водном растворе. Показаниями рефрактометра пользуются для определения так называемых видимых сухих веществ, содержание которых выше содержания истинных сухих веществ, определенных высушиванием. По исследованиям В. А. Смирнова и А. Н Бондаренко, для получения содержания истинных сухих веществ, надо содержание видимых сухих веществ умножить на 0,76. [c.315]

Стандартным веществом для проверки является прежде всего сахароза. В табл. 1 приведены удельные вращения [а]х водных растворов сахарозы, определенные Лоури [1]. В США применяется сахароза, имеющая констан- [c.149]

В агрохимическом анализе чаще всего пользуются рефрактометрами, предназначенными для определения водных растворов сахара (рефрактометр-сахариметр). Он отличается тем, что имеет неподвижную измерительную призму, а граница светотени отбрасывается на шкалу показателей преломления зеркалом, при помощи которого она может перемещаться по шкале. При измерении указатель (три черты или крест) совмещают с границей светотени и отсчитывают показатель преломления. На шкале рядом с показателями преломления нанесены весовые проценты сахарозы, иногда наносят только послед- [c.85]

Возьмите пустую пробирку от поляриметра, включите источник света и установите на шкале минимальное освещение. Приготовьте водный раствор сахарозы, растворив 20 г продукта в 100 г воды. Заполните этим раствором пробирку поляриметра и убедитесь, что не образовалось пузырьков. Раствор должен иметь комнатную температуру. Вращайте анализатор до получения такой же освещенности поля, как при пустой пробирке. Запишите значение угла, на который вы повернули анализатор. Вылейте раствор сахарозы и тщательно вымойте пробирку. Смешайте одинаковые объемы этого же раствора сахарозы и примерно 1 М раствора соляной кислоты, сразу же заметьте время. Заполните пробирку поляриметра этой смесью и измерьте угол, на который теперь нужно повернуть анализатор. Измеряйте углы через определенные интервалы времени. Начертите график зависимости угла вращения от времени и убедитесь, что скорость реакции меняется со временем. Угол вращения в нулевой момент времени вдвое меньше угла вращения в случае пробирки с исходным раствором сахарозы из-за того, что при разбавлении кислотой концентрация сахарозы уменьшилась в два раза. [c.30]

Калибровку прибора осуществляли разбавленным водным раствором стандартного вещества сахарозы, которую сжигали после предварительного испарения воды. График зависимости площади пика от количества образовавшегося СОг имеет линейный характер в широком интервале концентраций СОа [25, 31]. Правильность калибровки была проверена с использованием стандартных образцов железа и углеродистых сталей. Результаты экспериментов, приведенные в табл. 7.1, свидетельствуют о практически полном соответствии полученных данных паспортному содержанию углерода и о хорошей воспроизводимости результатов анализа. Для образцов синтетического ЗЮг с разным содержанием углерода также получена высокая воспроизводимость (табл. 7.2). Из этой же таблицы следует, что варьирование навески не влияет на результаты определения углерода. [c.221]

При нагревании серной кислоты (после отделения катионов на ионите) с сахарозой в соответствующих условиях образуется окрашенный в зеленый цвет продукт реакции, на использовании водного раствора которого основан метод определения сульфатов [4]. [c.357]

Оптический метод анализа свеклы на содержание сахарозы основан на ее свойстве в водных растворах определенным образом вращать плоскость поляризации светового луча. В обычном луче колебания световой волны совершаются по всем направлениям в плоскости, перпендикулярной к направлению распространения луча. В прямолинейно-поляризованном луче происходят взаимно параллельные колебания в одной плоскости с направлением распространения луча. [c.300]

Большинство определений кислотности начинается с очень тщательного удаления катионной золы путем экстракции образца большим избытком холодной разбавленной соляной кислоты [79, 132, 133, 135] или электродиализом [132, 135] с последующей тщательной промывкой дистиллированной водой, в которой не должно быть следов аммиака, во избежание образования солей аммония [136]. Несколько авторов [130, 137, 138] наблюдали, что способность целлюлозы сорбировать водные растворы, а также существование равновесий противоположно заряженных ионов на коллоидной поверхности целлюлозы (равновесие Доннана) делает прямое титрование кислотных групп стандартной щелочью ненадежным. Попытка установить кислотность оксицеллюлоз по скорости, с которой они инвертируют сахарозу, не привела к положительным результатам [138]. Однако кислотные оксицеллюлозы уменьшают концентрацию водородных ионов водного раствора соли, в который они погружены [1391, возникающее при этом равновесие тщательно изучено [130, 133, 137, 138, 140] и имеет следующий вид [c.155]

Работа выполнена на субклеточных фракциях головного мозга кроликов. Субклеточные фракции микросом, миелина и синаптосом получены с помощью метода дифференциального центрифугирования в градиенте плотности сахарозы (Белик и др., 1969). Первоначально были использованы водные растворы следующих ПАВ тритон Х-100, трис-дезоксихолат (дезоксихолевая кислота, нейтрализованная 1 М раствором трис до нейтральной реакции по бромтимоловому синему), додецилсульфат натрия и дигитонин. В ходе работы по определению ККМ оказалось желательным исследовать влияние ряда других ПАВ дезоксихолата натрия, октил-сульфата натрия, а также провести сравнение двух препаратов дигитонина. [c.119]

Метод основан на способности сахарозы в водных растворах определенным образом отклонять плоскость поляризованного светового луча от его первоначального положения. [c.148]

Ван Гук и Кильмартин [193] указывают на увеличенную растворимость малых кристаллов сахарозы, которую им удалось измерить с помощью рефрактометра. Однако величина а, определенная ими для границы раздела кристалл сахарозы — водный раствор, очень мала (лишь несколько эрг/см ). [c.33]

Рефрактометр типа РЛ. Данный рефрактометр (рис. 3, б) предназначен для определения показателя преломления жидкости и концентрации веществ в водных растворах — продуктах сахарного производства (масс. %). Пределы измерения а) по шкале показателей преломления от 1,300 до 1,540, цена деления 1 пгу, б) по шкале сахарозы от О до 95%, цена деления в интервале от О до 50% —0,2 и в интервале от 50 до 95% —0,1. Рефрактометр состоит из основания /, на котором установлена колонка 2, несущая корпус прибора. К корпусу крепятся верхняя 7 и нижняя 5 камеры Аббе. Нижняя камера 5, в которую заключена измерительная призма, жестко закреплена на корпусе. Верхняя камера 7, в которой находится осветительная призма, соединена шарниром 6 с нижней камерой и может поворачиваться относительно последней. Обе камеры полые и имеют штуцера 8, на которые надеваются резиновые трубки для соединения камер с термостатирующей установкой. Для контроля температуры служит термометр 10 в о праве, который соединен непосредственно с ниж-ней камерой. Нижняя и верхняя камеры имеют окна, которые закрываются съеглной крышкой или в нижней — крышкой, а в верхней — диафрагмой. Для направления овето вого потока в окно имеется отражательное стекло-зеркало 9, которое можно устанавливать под любым углом к оптичес <ой оси рефрактометра и фиксировать в необходимом положении. На переднюю крышку корпуса выведена шкала 11 и рукоятка 13, несущая окуляр 12, в котором нанесены три визирных штриха. Вращая рукоятку вокруг ее оси, совмещают границу светотени с в-изирной штриховой линией. На одной оси с рукояткой находится головка диаперсионного компенсатора 4, соединенного с оправой призмы Амичи, при помощи которой устраняется спектральная окраска границы светотени. Светотень во время работы должна быть резкой. [c.15]

Рассчитать осмотическое давление 1 М водного раствора сахарозы, зная, что при 30°С давление пара раствора равно 31,207 ммрт.ст. Давление пара воды при 30°С составляет 31,824 мм рт. ст. Плотность чистой воды при этой температуре (0,99564 г/см ) можно использовать для определения Vi разбавленного раствора. Чтобы решить эту задачу, в уравнение (4.22) нужно ввести закон Рауля . [c.137]

Для подтверждения принципиальной возможности повышения концентрации раствора при внесении в него высокодисперсного гидрофильного вещества мы провели следующие опыты. К ненасыщенным водным растворам ЫаС1, Ва304 и сахарозы добавляли высушенный силикагель отдельными порциями через определенные промежутки времени. На рис. 3, а, показано, как по мере прибавления силикагеля (в точках А, Б и В) к ненасыщенному раствору сахарозы концентрация его скачкообразно повышается вследствие адсорбции силикагелем растворителя. После введения силикагеля в насыщенный раствор сахарозы (рис. 3, 6) концентрация его резко повышается, достигает максимума, а затем медленно понижается до первоначального насыщенного состояния, т. е. характер изменения [c.37]

Здесь же необходимо отметить, что для определения вязкости исследуемых белковых растворов в работе [78] предлагается использовать спиновый зонд, свободно вращаюпщйся в исследуемом растворе. Для этого зависимость времени корреляции т этого зонда, помещенного в водный раствор сахарозы, от вязкости этого раствора, определенной по табличным данным, используется затем как калибровочная зависимость для определения искомой вязкости т белкового раствора по величине т, измеряемой для того Же зонда, растворенного в исследуемой системе. [c.139]

Так, для а-О-глюкозы [а]о= +112,2° (водный раствор, экстраполяция к нулевому времени), а [М]с= (112,2Х 180,16)/100= +202,1. В то время как октаацетат сахарозы имеет [аЬ= +59,6° (в хлороформе), значительно отличаясь по величине удельного вращения от октастеарата сахарозы, имеющего [а]о= +16,6° (в хлороформе), их молекулярные вращения [М]х>, равные +404 и +411, совпадают в пределах ошибки определения удельного вращения (ошибка в 0,5° при определении удельного вращения октастеарата сахарозы изменяет величину молекулярного вращения на 112). [c.538]

Хотя рНнАс представляет собой условную величину, а не меру активности протонов, отнесенную к водному стандарту, все же эта величина полезна для сравнения кислотности растворов в ледяной уксусной кислоте. Скорость инверсии сахарозы в растворах уксусной кислоты приближенно пропорциональна активности протона (вычисленной в предположении, что рНнАс = —Ig n) и находится в соответствии со значениями кислотности, найденными по изменению окраски серии триарилкарбинолов и ненасыщенных кетонов [36]. Высокая кислотность растворов сильных кислот в уксусной кислоте и их буферных растворов, образованных при частичной нейтрализации этих кислот мочевиной, снижается определенным образом при добавлении протофильных веществ (вода и спирт) [32]. Были получены кривые титрования и кривые разбавления слабых кислот в безводной уксусной кислоте. Очень слабые основания, которые не могут быть оттитрованы в воде, дают превосходную точку перегиба в безводной уксусной кислоте (см. рис. VII. 5). При титровании они проявляют свойства сильных оснований, однако, изменение рНнАс с разбавлением подчиняется концентрационному закону. Поэтому их нельзя рассматривать как полностью диссоциированные в том смысле, как это принято для водных растворов электролитов. Это явление, названное самозабуферивание , было замечено также Шварценбахом [37]. Оно объясняется сложной природой ионизационно-диссоциационных процессов в ледяной уксусной кислоте [37]. [c.197]

Для калибровки вибрационных плотномеров используется воздух. Значения плотности сухого атмосферного воздуха при различных давлениях и температурах приведена в [5]. Для проверки качества работы денсиметров, а также для калибровки в диапазоне плотностей р > 1 используют водные растворы солей, для которых значения плотности известны с высокой точностью. Для этих целей могут быть рекомендованы данные Миллеро [33], Васлова [34] и Данна [35], определивших плотности водных расворов щелочных галогенидов при различных температурах и концентрациях. Представляется перспективным использовать для контроля калибровки денсиметров водные растворы сахарозы, плотности которых точно измерены авторами [36]. Сахароза легче очищается и ее относительно большая молярная масса снижает чувствительность к примесям и повышает относительную точность определения концентраций в области больших разведений. [c.21]

Робертс и Риган [84] предложили свой оригинальный метод определения смесей карбоновых кислот по реакциям этих кислот (взятых в большом избытке) с интенсивно окрашенным дифенилдиазометаном. Скорость реакций они определяли колориметрически. Папа, Марк и Рейли [79] определяли смеси фруктозы — глюкозы, фруктозы — сахарозы, глюкозы — сахарозы в водных растворах и в сыворотке крови по их реакции с молибдатом аммония. Скорость реакций определяли колориметрически по образованию Mo(IV). Парсонс, Симан и Вудс [80] определили следовые количества (0,5%) нафтола-1 в нафтоле-2. При добавлении кислоты к щелочному раствору нафтола-2 он в основном осаждается, а образующаяся смесь реагирует с солью диазония. Нафтол-1 реагирует быстрее. Скорость реакции определяли колориметрически. В других работах сообщали о следующих определениях ароматических альдегидов в присутствии ароматических кетонов [31 ], ванилина в присутствии ацетованилина [32], смесей олефинов по реакции с надбензойной кислотой [64, 65, 86], таннинов в вине [16], тетраэтилпирофосфата в смеси с другими этилфосфатными эфирами [29], этилового эфира олеиновой кислоты и этилэлаидинового эфира [19] (изомеров, которые отличаются цис- и транс-конфигурациями отно- [c.188]

Объектив визирного устройства и установочное приспособление помещаются внутри корпуса, а окуляр располагается снаружи. При помощи рукоятки 3 окуляр вместе с объективом и компенсатором может передвигаться вдоль продолговатой прорези в передней крышке корпуса. В прорези укреплена стеклянная шкала показателей преломления По. Цена деления этой шкалы равна 0,001, десятитысячные доли могут быть отсчитаны на глаз. Справа от шкалы По располагается дополнительная шкала — процент сухих веществ — с делениями от О до 95% и ценой наименьшего деления 0,2% при содержании сухих веществ до 50% и 0,1%—свыше 507о- Показания этой шкалы соответствуют содержанию сахарозы в водных растворах и используются при различных аналитических определениях в лабораториях пищевой промышленности. В поле [c.170]

Для определения воды было предложено несколько электрометрических методов. Кейд ель описал метод определения воды путем прямых амперометрических измерений, основанных на количественном электролизе воды в специально сконструированной электролитической ячейке. Коул с сотр. определяли воду в органических жидкостях с помощью системы для непрерывного кулонометрического титрования. Непрерывно движущийся поток образца, обдуваемый противотоком азота, пропускали через кулонометрическую ячейку, состоящую из безводной пятиокиси фосфора, запрессованной между платиновыми электродами. При этом из образца удалялась вода. Как утверждают авторы, точные результаты получаются при анализе образцов с содержанием воды вплоть до 1 ррт. Двумя группами исследователей 2, мз было рекомендовано определение воды в органических образцах путем измерения диэлектрической проницаемости. Для этого образец экстрагируют безводным диоксаном. Диэлектрическая проницаемость водных растворов диоксана находится в линейной зависимости от содержания воды. Этот метод применим для определения воды только в таких неполярных соединениях, как сахароза и т. п. [c.436]

Оставим на время кислородную теорию кислот и начнем с водноионной теории, по которой кислота определяется как водородное соединение, дающее в водном растворе ионы водорода, а основание— как соединение, дающее в водном растворе гидроксильные ионы. Эти определения имеют большое значение при катализе в водных растворах, а каталитический метод был применен для определения концентрации водородных и гидроксильных ионов. Проблема гомогенного катализа непосредственно связана с проблемой кинетики реакций. Законы скорости реакции впервые были сформулированы в связи с изучением инверсии сахарозы при каталитическом действии кислот [1]. [c.67]

Определение способности к брожению проводят обычно на уг-леводно-пептонной среде с относительно высокой концентрацией углеводов и небольшим количеством пептона. Состав среды (г/л) углевод — 10,0 пептон — 2,0 Na l — 5,0 К2НРО4 — 0,3 агар — 3,0. На 100 мл среды добавляют 0,3 мл 1%-ного водного раствора бромтимолового синего, pH среды 7,1—7,2. Среду без углевода стерилизуют при 1 ати. Углеводы (глюкозу, сахарозу, лактозу) добавляют к стерильной расплавленной среде в виде растворов в дистиллированной воде, которые стерилизуют при 0,5 ати. Стерильную среду с углеводами разливают в стерильные пробирки слоем 5—в см и после того, как она застынет, ее засевают исследуемым микроорганизмом. Посев делают уколом. Для каждого углевода используют две пробирки. После посева поверхность среды в одной пробирке заливают стерильным расплавленным парафином, смесью вазелинового масла и парафина (1 1), или водным агаром (1,5 г агара на 100 мл), слоем 1—2 см. [c.164]