Буферы неорганические

Добавление некоторых солей органических кислот повышает растворимость органических веществ в водной фазе аналогично добавлению неорганических буферов эффект высаливания). Так, например, некоторые органические вещества, плохо растворимые в дистиллированной воде, очень хорошо растворяются в водных растворах натриевых солей бензойной кислоты или ксилолсульфокислоты [100]. [c.394]

Далее, соли, также имеющие характеристические значения величин R или при своем перемещении по колонке или по бумаге вытесняют часть остальных веществ, уменьшая эффективность разделения. Кроме того, описан ряд случаев, когда присутствующие соли вызывали удвоение полос или пятен некоторых индивидуальных веществ [82, 96). Наконец, соли могут мешать обнаружению компонентов смеси. Самое простое решение — всем отказаться от использования солей. В качестве буферов вместо неорганических солей можно применять органические вещества, которые затем удаляют отгонкой. О таких летучих буферных системах более подробно, сказано в главе, посвященной ионообменникам. [c.451]

Буферное действие фосфатной системы основано на возможности связывания водородных ионов ионами НРО," с образованием Н,РО, (Н + + НРО," —> Н,РО, ), а также ионов ОН с ионами Н,РО, (ОН + + Н,РО, —> НРО/ + Н,0). Буферная пара (Н,РО, —НРО/) способна оказывать влияние при изменениях pH в интервале от 6,1 до 7,7 и может обеспечивать определенную буферную емкость внутриклеточной жидкости, величина pH которой в пределах 6,9—7,4. В крови максимальная емкость фосфатного буфера проявляется вблизи значения pH 7,2. Фосфатный буфер в крови находится в тесном взаимодействии с бикарбонатной буферной системой. Органические фосфаты также обладают буферными свойствами, но мощность их слабее, чем неорганического фосфатного буфера. [c.588]

Типичные примеры ионитов IV типа — почвы, глины, некоторые синтетические неорганические иониты. Особенностью ионитов IV типа является то, что их обменная способность изменяется постепенно в широком интервале pH. Иными словами, эти иониты проявляют буферные свойства в очень широкой области значения pH. Например, чернозем обладает большой буфер-ностью во всем исследованном интервале pH (от 3 до 13), в то время как иониты I ц II типов проявляют буферные свойства на протяжении 2—3 единиц pH. [c.675]

К исследуемому раствору, содержащему 0,02—0,1 мкмоль неорганического фосфата, приливают дистиллированную воду до 1,6 мл, прибавляют 1,1 мл 3 М Ыа-ацетатного буфера, pH 4,3, содержащего 3,7% формальдегида. К каждой пробе последовательно с интервалом 1—1,5 мин добавляют по 0,1 мл 2%-ного раствора молибдата аммония и сразу же после интенсивного перемешивания 0,2 мл 6,75 мМ раствора хлористого олова. Окраска развивается в течение 15 мин при 20° С. Пробы фотометрируют при 660 нм. При добавлении в буферную среду этанола окраска развивается до постоянных значений через 45 с. Так же обрабатывают пробы стандартного ряда. [c.36]

Кальциевый обмен самым тесным образом связан с метаболизмом фосфора в организме. В свою очередь фосфор, принимая участие в ряде метаболических процессов, фактически связан со всеми системами преобразования энергии в живой клетке. Фосфор попадает внутрь клетки в виде неорганического фосфата, оказавшись в клетке, он включается в различные органические соединения и в полифосфаты. Полифосфаты служат резервом и основным хранилищем фосфора в клетках, в которых протекает синтез нуклеиновых кислот и фосфолипидов, играя роль своеобразного метаболического буфера [960]. [c.496]

Добавлением избытка неорганической кислоты или основания можно Полностью подавить ионизацию органических кислот и оснований. Таким образом можно экстрагировать органическим растворителем сразу все присутствующие органические кислоты или основания. Гораздо большей селективности экстракции можно добиться, подбирая pH буфера так, чтобы одна органическая кислота, оставаясь в диссоциированной форме, перешла в водную фазу, а диссоциация другой органической кислоты оказалась подавленной, благодаря чему вторая кислота останется в органической фазе. [c.393]

Р неорганического фосфата сняты в фосфатном буфере (концентрация 10 ммоль) в зависимости от pH. Показано, как начиная с pH 13.2, меняется вид спектров с уменьшением pH. Значение pH уменьшается от спектра к спектру примерно на 0,3 единицы. [c.76]

Это же явление наблюдается и у пекарских дрожжей. У дрожжей, взятых в виде гомогената, реакционная смесь, содержаш ая 5 -АМФ, глюкозу, фосфатный буфер (рН-7,0), при встряхивании при 37 °С, содержала максимум АТФ при минимуме глюкозы и неорганического фосфата. При достижении максимума АТФ распадается на АДФ и АМФ, уровень неорганического фосфата повышается. [c.430]

Волны для необратимых органических реакций обычно вытянуты вдоль оси потенциалов, и поэтому их распознавание и количественное измерение менее точны, чем волн, получаемых с неорганическими веществами. Обычно необходимо отдельно определять кривую остаточного тока на контрольном растворе, содержащем фон, буфер и вещество, подавляющее максимум. Исправленное значение тока получают вычитанием величины остаточного тока из средней величины наблюдаемого тока, измеренного при том же напряжении. Часто достаточно использовать метод отдельных измерений, при котором измеряют ток при определенных потенциалах до и после восстановления. [c.364]

Зональный электрофорез применим для разделения любых ионов как сложных органических, так и неорганических, если только можно подобрать условия, когда подвижности этих ионов (в первую очередь величины заряда) отличаются друг от друга. Этим методом, например, успешно разделяются пуриновые и пиримидиновые основания благодаря различиям в константах ионизации их аминогрупп. Дополнительные возможности появляются при разделении нуклеозидов, если проводить электрофорез в бо-ратном буфере, так как боратный ион по-разному связывается с гидроксильными группами пентоз, сообщая всему иону дополнительный отрицательный заряд. Наконец, нуклеотиды имеют еще две ионогенные группы фосфата, и различия в константах диссо-циации вторичных гидроксильных групп (первичные гидроксилы фосфата диссоциированы во всем интервале pH, в котором нуклеотиды стабильны) можно использовать для разделения сложных [c.105]

При определении малых примесей в нефтепродуктах широко применяют различные методы обработки пробы перед анализом. При этом преследуют различные цели концентрирование малых примесей, удаление мешающих элементов, устранение влияния основы и т. д. Часто подготовка пробы завершается получением и анализом водных растворов определяемых примесей. В таких случаях в качестве эталонов обычно используют водные растворы неорганических соединений. Однако применение таких эталонов не дает возможности получить информацию о полноте выделения интересующих элементов из пробы нефтепродукта, Поэтому даже при использовании косвенных методов анализа в ответственных случаях, а при разработке новой методики обязательно, нужно применять эталоны из металлорганических соединений, которые должны проходить все стадии обработки, подобно анализируемым пробам. Конечно, для этой цели лучше всего использовать нефтепродукт, сходный по составу с анализируемым, и с точно известным содержанием примесей, Но это очень трудно реализовать на практике. Поэтому обычно ограничиваются введением в чистый нефтепродукт синтетических металлорганических соединений, А в работе [189] при определении следов металлов в нефтепродуктах путем их кислотного озоления, перевода золы в раствор и анализа растворов методом вращающегося электрода, с водными растворами неорганических эталонных соединений, внутреннего стандарта и буфера, взятыми в нужных соотношениях, проводили все операции по химико-термической обработке, как с раствором золы нефтепродуктов. [c.94]

Концентрирование. Для концентрирования водных проб в 500—5000 раз обычно используют низкотемпературную вакуумную дистилляцию <35 °С). Сточные воды после первичной очистки концентрировали в 1000 раз, после вторичной очистки — до более высокой степени — примерно в 3000 раз. После концентрирования в вакууме остаток обрабатывали уксусной кислотой, чтобы разрушить карбонатный осадок и вновь растворить осажденные им органические вещества. Затем раствор центрифугировали, чтобы удалить неорганические соли. Осветленную жидкость замораживали и лиофилизировали. Высушенный замораживанием осадок помещали в хроматографический буфер [c.129]

В процессе развития аминокислотного анализа состав нингидринового реагента неоднократно подвергался изменениям, однако основные принципы, заложенные в первых работах Мура и Стайна [10, 33], остались неизменными. Основу буфера составляет концентрированный раствор ацетата натрия с pH 5,0, что является оптимальным для полноты реакции и измерения поглощения. Водный раствор метилцеллозольва обеспечивает хорошую растворимость как органических соединений, так и неорганических солей. Восстановленный нингидрин, необходимый для запуска реакции, получают под действием хлорида олова (И). Реагент готовят и хранят в отсутствие кислорода воздуха, например в атмосфере азота. [c.338]

КИСЛОТЫ и белки, а также неорганические вещества, которые действуют в качестве буферов. [c.326]

Оптическая плотность зависит от pH (pH 2-3), обычно используется цитратво-солянокислый буфер Неорганические соли мешают реакции, ошибка определения составляет 10-15 Ь. [c.29]

Блок-схема гидроксиламинфосфатного процесса изображена на рис. 165. Она состоит из неорганического и органического циклов, совмещенных в блоке 4 оксимирования. Из этого блока фосфатный буфер идет на отгонку избыточной воды в блок 5, затем в блок 2 для абсорбции нитрозных газов (там получается азотная кислота и удаляются избыточные ионы КН ), в блок 3 на гидрирование и возвращается на оксимирование. Органический цикл кроме орсимирования включает блок 6, где толуол отгоняют от окси- [c.569]

Разумеется, без достаточных экспериментальных подтверждений мы не можем настаивать на таком объяснении, однако это и не так уже существенно. Важен надежно установленный экспериментальный факт для элюции нативной ДНК (или двунитевой РНК, а также гибридных молекул ДНК—РНК) с оксиапатита требуется почти вдвое более высокая концентрация фосфатного буфера, чем для элюции денатурированной ДНК или однонитевой РНК. Это обстоятельство открыло возможность быстрого и надежного отделения двунитевых молекул нуклеиновых кислот от однонитевых, что сыграло очень важную роль как в изучении структуры генома (исследования кинетики ренатурации), так и в развитии современных методов генной инженерии (гибридизация молекул НК и др.). Как и в случае кислых белков, присутствие даже относительно высоких концентраций неорганических солей в элюирующем буфере практически не сказывается на процессах элюции одно- и двунитевых молекул НК с оксиапатита. Вместе с тем, варьируя концентрацию Na l или КС1 в буфере, можно управлять изменением конформации самих нуклеиновых кислот, а также характером их гибридизации (например, отделять истинные , полноценные, гибридные молекулы от несовершенных гибридов ). [c.230]

Метод Ратбуна и Ветлах в модификации позволяет проводить определение неорганического фосфата в присутствии белка, если его содержание в измеряемых пробах не превышает 50 мкг. В этом случае к 1 мл исследуемого раствора прибавляют 1 мл 3 М Ма-ацетатного буфера, pH 4,3, содержащего 37о формальдегида. Затем добавляют по [c.36]

Фруктозо-1,6-дифосфатаза (КФ 3.1.3.11) катализирует расщепление фруктозо-1,6-дифосфата на фруктозо-6-фосфат и неорганический фосфат. Фермент локализован в гиалоплазме, поэтому в качестве источника используют безмитохондриальный гомогенат печени крысы. Для проявления ферментативной активности необходимы ионы или Мп , оптимум водородного показателя сильно зависит от концентрации активирующих ионов и природы буфера. В глициновом буфере в присутствии Mg2+ максимальная скорость наблюдается при pH 9,2. [c.66]

Киназная реакция. Реакционная смесь (в расчете на 1 мл) должна содержать следующие компоненты- 40 мМ трис — 40 мМ Ма-р-гли-церофосфатный буфер, pH 8,6, 5 мг фосфорилазы, 5—10 мкг частично очищенного препарата киназы фосфорилазы, 0,1 мМ СаСЬ. Инкубируют 3 мин при 30° С. Реакцию начинают внесением 10 мМ Мд + и 3 мМ АТФ. Конечное значение pH — 8,2. Реакция протекает в течение 5 мин при 30° С. Останавливают реакцию добавлением охлажденного мале-атного буфера, pH 6,5. В контрольную пробу не добавляют киназу, чтобы внести поправку на присутствие следов фосфорилазы а в препарате фосфорилазы Ь и следов неорганического фосфата в используемых реактивах. [c.224]

Определение активности образующейся фосфорилазы а. Активность фермента измеряют по обратной реакции (синтезу гликогена), сопровождающейся выделением неорганического фосфата. К малеат-ному буферу (0,1 М), pH 6,5, содержащему 0,1 М глюкозо-1-фосфат — 2%-ный гликоген, добавляют равный объем раствора, полученного после киназной реакции. Реакцию проводят 5 мин при 30° С. Останавливают реакцию добавлением реактивов для определения неорганического фосфата. Количество образовавшегося фосфата рассчитывают по калибровочному графику. [c.224]

Препараты фермента были получены путем гомогенизирования свежих или лиофильно высушенных тканей с вероналовым или трис-буфером и последующего центрифугирования при 3000 g. Особенностью этих препаратов являлось высокое содержание в них сахаров и неорганического фосфата, что характерно как для проводящих, так и для паренхимных тканей. Поэтому определение активности гексокиназы по убыли глюкозы в опытной смеси или по убыли суммы легкогидролизуемого фосфата АТФ неорганического фосфата оказалось невозможным. Мы определяли действие гексокиназы непосредственно по количеству образующегося в течение опыта глюкозо-6-фосфата (и фруктозо-6-фосфата). Гексозомонофосфаты были выделены из опытной смеси путем фракционирования по Умб-рейту. Их количественное определение производили с помощью хроматографии на бумаге. Пятна глюкозо-6-фосфата и фруктозо-6-фосфата были элюированы с бумаги, и фосфорные эфиры определены по их сахарному компоненту с антроном [18]. [c.249]

Органические буферы, такие, как бикарбонат, пиперазин-Ы,Ы -бис-2-этанолсульфокислота, ацетат веронала и коллидин, являются более предпочтительными по сравнению с большинством обычно используемых неорганических буферов, так как всегда имеется опасность, что последние могут вносить нежелательные элементы в клетки (например, какодилатный буфер [c.277]

В институте химии нефти СО РАН для высокотемпературных пластов Западной Сибири были разработаны композиции ИХН, содержащие НПАВ, АПАВ и неорганическую щелочную буферную систему [153, 154]. Нефтеотмьсвающие свойства композиции ПАВ максимальны в создаваемой буфером области pH, а прочность границы раздела нефть/вода минимальна [155-157]. Для малоактивных нефтей У рало-Поволжья и Западной Сибири наблюдаются максимальные значения межфазного натяжения на границе с водой при рН=4,5-5,5 и минимальные значения при рН=9-10, что объясняется присутствием в нефти природных поверхностно-активных веществ, которыми явля- [c.33]

Суспензии по 100 мг комплекса инкубировали в минеральной среде, содержавщей неорганический азот и фосфатный буфер (pH 6,6), в течение 28 дней с суспензией почвы и определяли количество выделяющейся двуокиси углерода. [c.677]

Неорганический фосфат принимает участие во многих ферментативных реакциях, поскольку он либо переносится на субстрат, либо расщепляется. Кроме того, неорганический фосфат принимает на себя функцию буфера. Для фосфатной группы существуют кроме двух различных протонирован-ных форм в равновесии еще и следующие формы Н3РО4, Н2РО4, НРО4, Р04 . При измерении спектров ЯМР Р для различных значений pH мы всякий раз наблюдаем один сигнал, химический сдвиг которого изменяется в зависимости от концентрации ионов гидроксония (рис.2.8). Такой вид [c.76]

Для переноса интерфейсами с движущимся транспортером растворителей, содержащих большое количество воды, понадобился ряд усовершенствований [64] Размещение дополнительных нагревателей в каждой камере системы дифференциальной откачки позволило увеличить скорость транспортера [65] Другой подход заключался в добавлении к элюату второго, не сме шивающегося с водой, растворителя или в использовании жидкостно жидкостной экстракции [66] Эта методика была применена для анализа пестицидов класса карбаматов, элюен том служил неорганический буфер Анализируемое вещество экстрагировалось метиленхлоридом, экстракт наносился на дви жущийся транспортер [64] С помощью этой методики можно получать производные анализируемых веществ после выхода их из хроматографической колонки, например, для модификации веществ с низкой эффективностью экстракции или для увеличения давления паров нелетучих образцов [c.45]

Использование макроциклических реагентов (краун-эфиров, макроциклических антибиотиков (рис. 4.2.5), ка-ликсаренов, циклодекстринов и т.д.) как добавок в ведущий электролит (табл. 4.2.4-4.2.6) позволяет управлять селективностью разделения сложных смесей органических и неорганических соединений, в первую очередь, за счет уникальной способности макроциклов образовывать комплексы включения с анализируемыми веществами по типу гость - хозяин [93-98]. В образующихся комплексах хозяином выстуттает макроциклический реагент, а гостем — аналит. В зависимости от своего строения макроциклы могут связывать молекулярные, катионные или анионные субстраты. Многие из них используются в качестве хиральных селекторов. Типичные концентрации добавляемых в ведущий электролит циклодекстринов (ЦД), используемых для хиральных и ахиральных разделений, — от 1 до 20 мМ в 20-50 мМ боратном (pH = 9,3) или фосфатном (рП = 2,5) буферах [99]. [c.347]

Скрибнер и Рейли показали интересные новые возможности применения жидких амальгам в сочетании с титрованием ионов металлов этилендиаминтетрауксусной кислотой. Жидкая амальгама используется по существу как восстановитель при контролируемом потенциале. Количество ионов металла, поступающих в раствор из амальгамы, определяется титрованием ЭДТА, которое заменяет кулонометр для определения общего количества восстановленного вещества. Этот принцип может быть применен к исследованию как неорганических, так и органических систем. Так, л-нитрофенол восстанавливают до л-ами-нофенола встряхиванием обескислороженного раствора в ацетатном буфере в течение 5 мин с жидкой цинковой амальгамой. При этом количество образующихся ионов цинка, по данным титрования ЭДТА, соответствует 5,96 электрона на молекулу п-нитрофенола в сравнении с 6 по теории. [c.388]

Некоторые белки, такие, как склеропроТеины, не растворяются в воде и для очистки их диспергируют (например, кончиолин в 70%-ной уксусной кислоте) и затем фракционируют путем превращения в комплексные соли [174]. В результате диспергирования в салицилате натрия растительного белка (клейковины), отмытого от пшеничной муки, было показано, что он не гомогенен [164]. В случае высокомолекулярных белков неорганические примеси могут быть удалены, нанример, диализом или электродиализом. При меньшем молекулярном весе, как, например, в случае кортикотропинов, обессоливание можно проводить с помощью ионообменных смол [45]. Очистка может быть также осуществлена путем адсорбции на гелях с последующим элюированием селективными буферами [101]. [c.387]

ТОД широко применяют для обнаружения в элюатах белков и крупных пептидов, но он недостаточно универсален. Более общим методом анализа, не зависящим от аминокислотного состава пептидов, является измерение поглощения в области 180— 220 нм, где пептиды и белки характеризуются высокими коэффициентами поглощения [1] (например, поглощение при 210 нм в 10—20 раз выше, чем при 280 нм). Однако здесь имеются определенные технические трудности. Кроме того, в этой области интенсивным поглощением обладают почти все известные буферные растворы исключение составляют нелетучие буферы на основе неорганических солей. Можно также вести анализ по флуоресценции ароматических группировок. Этот метод обладает более высокой чувствительностью по сравнению со спек-трофотометрией при 280 нм, но область его применения также ограниченна. [c.391]

Недавно Цаугг и Кнокс [265] описали метод анализа, при котором молибденовая кислота, растворенная соответствующим образом, перемешивалась с 2-октанолом. После этого добавляли нитратный буфер и разделяли фазы. Абсорбцию молибдена измеряли в органической фазе и сравнивали с абсорбцией эталонного раствора, приготовленного из определенного количества неорганического фосфора, обработанного аналогичным образом. [c.142]

Сущность метода состоит в разбавлении известного объема анализируемой пробы тяжелым дистиллятом и встряхивании с водным раствором монохлорида йода. Любое присутствующее триалкильное соединение свинца реагирует с монохлоридом йода и экстрагируется в водную фазу в виде диалкильного соединения свинца. Водный экстракт отделяют от бензина и выпаривают до небольшого объема для разложения свободного монохлорида йода. Присутствующие органические вещества удаляют окислением азотной кислотой, при этом диалкильные соединения свинца переходят в неорганические соединения свинца. Остаток растворяют в воде и доводят pH раствора до 5 с помощью буфера ацетат натрия/уксусная кислота. Содержание свинца в буферированном растворе определяют титрованием этилендиаминтетраацетатом натрия с ксиленовым оранжевьш в качестве индикатора. [c.528]

Сущность метода. Определение заключается в выделении органических соединений ртути (этилмеркурхлорид) экстракцией хлороформом, получении дитизонатов органических и неорганических соединений ртутн в слабокислой среде ацетатного буфера в присутствии комплексона (III) и роданида калия, удалении [c.327]

На бумаге, пропитанной неорганическими ионообменниками, разделяли также и органические ссединения. Кателли [137] приводит значения Rf для двенадцати аминокислот на бумаге с фосфатом циркония, проявленных при псмсщи ацетатных буферов с различными pH. Он разделял смеси из двух или трех аминокислот. Подобные исследовании с алкалоидами проводили Кассио с сотр. [138]. [c.329]

В газовые колбочки емкостью 100—150 мл вносили по 2,5— 5 мл свежей гепаринизированной крови, плазмы или отмытых эритроцитов. К ним добавляли 2,5 мл бикарбонатного буфера (pH 7,6) и нейтрализированные кето-, окси- или аминокислоты, так чтобы конечная концентрация их в растворе составляла 0,25 М. В опытах по изучению синтеза аминокислот за счет использования неорганического азота добавляли хлористый аммоний (конечная концентрация 0,01 М). Общий объем пробы составлял 10 мл, время инкубации 8—24 часа. Инкубация производилась в водяном термостате при 37° в атмосфере кислорода. По окончании опыта пробы осаждались 8 —10-кратным объемом спирта при слабом подкислении уксусной кислотой. Коагулированные белки отфильтровывали, спиртовой фильтрат упаривали в вакууме до небольшого объема (примерно до 0,5 мл). Образовавшиеся аминокислоты идентифицировались методом бумажной хроматографии. [c.155]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология