Разделение с помощью бумаги

Частичный гидролиз полисахаридов проводят для получения олигосахаридов, важных для установления структуры. Олигосахариды можно исследовать с помощью хроматографии на бумаге образцы, необходимые для идентификации или структурного анализа, могут быть получены после хроматографического разделения на бумаге или на колонках, заполненных целлюлозой [55, 99], а также градиентным элюированием водным спиртом из колонки, заполненной смесью уголь — целит [8, 17, 56]. Было показано [114], что смеси олигосахаридов легко разделить в нейтральной среде на колонках со смолой дауэкс 50 (2% диви-нилбензола, величина частиц 40—80 мк, Ь1+) при элюировании водой. Элюирование протекает в порядке уменьшения размера молекул, и первыми вымываются из колонки олигосахариды с более высоким молекулярным весом. [c.304]

В настоящее время широко распространен достаточно точный нингидриновый метод определения аминокислот при помощи хроматографического разделения на бумаге. Однако разделение некоторых аминокислот обычной хроматографией на бумаге требует большой затраты времени например, для разделения основных аминокислот, необходимо минимум 4— 5 суток. Применение электрофоретического разделения позволило сократить время разделения лизина, аргинина и гистидина до 3 часов и за счет этого сократить общее время, необходимое для количественного анализа этих аминокислот, с 5—б дней до 6—7 часов. [c.254]

Хорошие результаты дает сочетание применения меченых соединений и использования бумажной хроматографии. В этом случае могут быть идентифицированы продукты метаболизма, разделенные на бумаге, а при помощи счетчиков можно провести их количественное определение. Таким методом удалось показать, что L-валин является предшественником цефалоспорина С [129]. При добавлении меченого сульфата в культуральную жидкость продуцента пенициллина с помощью бумажной хроматографии установлено, что в отсутствие предшественника значительная часть меченой серы содержится в биологически неактивном веществе, названном соединением VI [c.40]

Хроматография на бумаге. Исключительно большой интерес представляет целлюлоза в виде фильтровальной бумаги, и ее свойства широко изучались в течение последних лет. Термин хроматография на бумаге применяется теперь для обозначения всех процессов хроматографического разделения на бумаге, независимо от механизма разделения. В это понятие включается также и распределительная хроматография на бумаге (см. ниже). Техника хроматографии иа бумаге в применении к красителям представляет собой в основном усовершенствованный метод капиллярного анализа Шенбейна. Иногда для разделения смешанного красителя на ряд концентрических зон, в каждой из которых располагается индивидуальный краситель, достаточно нанести на фильтровальную бумагу несколько капель воды. Еще в 1893 г. Патерсон получил таким образом для продажного красителя Яркого черного Е прекрасно выраженный капиллярный спектр из пурпурно-черного, оранжевого, зеленого и желтого колец. Он измерил также капиллярные скорости и показал, что у красителей с сульфогруппами в молекуле, например у Кислотного фуксина, ббльшие скорости, чем у основных красителей, например у Фуксина. Гранди описал схему идентификации красителей на окрашенной бумаге, основанную на последовательных экстракциях кипящей водой, этиловым спиртом и аммиаком для разделения кислотных, основных и прямых красителей. Вслед за тем индивидуальные красители выделялись капиллярным методом с помощью промокательной бумаги или ацетатного шелка. Капиллярные явления, характерные для растворов и золей красителей, были исследованы Гарнером. По высоте капиллярного подъема R раствора красителя на фильтровальной бумаге, выраженной в процентах к высоте подъема чистого растворителя, он [c.1508]

Повторное хроматографирование незначительно увеличивало степень токсичности и изменяло специфическое вращение токсичного вещества. Хроматографическое разделение на бумаге ватман № i при использовании растворителей фенол —вода (4 1 V/V) и третичный бутиловый спирт — уксусная кислота — вода (2 1 1 V/V) показало, что все вещества на хроматограмме легко обнаруживаются с помощью реактива Яффе и дают [c.50]

Тонкослойную хроматографию применяют для разделения фенолов почти всех классов этот метод весьма универсален, и в большинстве случаев его с успехом можно использовать вместо бумажной хроматографии. Однако, по нашему мнению, его лучше рассматривать как метод, дополняющий бумажную хроматографию. Например, методики разделения на бумаге водорастворимых флавоноидов отработаны столь хорошо, что применять для разделения этих соединений тонкослойную хроматографию, если последняя обладает такой же разрешающей способностью, просто не имеет смысла. Разделение с помощью ТСХ протекает быстрее, но это различие не столь уж велико например, скорость хроматографии на пластинках с целлюлозой лишь в 4—5 раз больше, чем на бумаге. [c.255]

Целесообразнее всего идентифицировать эти красители при помощи хроматографии (табл. ХХП.8). Для разделения на бумаге используют 1—27о растворы красителей в смеси 2 н. соляной кислоты с метиловым спиртом (2 1), а для тонкослойной хроматографии — 0,1—0,15% растворы, которые наносят на расстоянии 1,5 см, от края пластинки, так чтобы диаметр пятна не превышал 2 мм. При тонкослойной хроматографии в качестве адсорбента используют целлюлозу (см. ХХП. 1.5. б), в качестве подвижных растворителей — следующие системы [70, 71] 1) 2,5%раствор цитрата натрия —25% аммиак (4 1) 2) пропиловый спирт —этилацетат — вода (6 1 3) (система применяется также при хроматографии на бумаге [72]) 3) пропиловый спирт — 2 н. аммиак (6 4) 4) 2 г трехзамещенного цитрата натрия в 100 мл 5%-ного раствора аммиака. [c.543]

Фильтрование [5,1, 5,24, 5,27, 5,30, 5,36, 5,51, 5.60, 5,67]. Метод основан на разделении систем Г — Т, Г — Ж, Ж — Т, Ж1 — Ж2 с помощью пористого материала (ткань, бумага, сетки, гравий, песок, металлокерамика, полимерные пленки и т. д.) и применяется для отделения взвешенных частиц на поверхности фильтрующих материалов под действием сил прилипания. Степень извлечения зависит от гранулометрического состава выделяемых частиц, их концентрации и свойств (гидрофобность, плотность, структура, дисперсность и т. д.), а также характеристики дисперсной среды и устанавливается чаще всего опытным путем. [c.472]

При решении задачи разделения необходимо прежде всего установить связь между давлением р и температурой t для перегоняемых смесей, которую изображают в виде кривых давления паров. Если на миллиметровой бумаге построить график зависимости давления насыщенных паров от температуры, то с его помощью можно определить, при каком давлении лучше проводить дистилляцию или ректификацию (см. рис. 39). При этом для температуры лучше использовать логарифмическую шкалу. Выбор давления разгонки зависит от того, какая из следующих операций должна быть проведена а) аналитическая разгонка б) препаративная ректификация в) перегонка с целью накопления продукта г) сравнительная ректификация с целью моделирования промышленной ректификации в лабораторных условиях. При этом необходимо учитывать, принимая во внимание гидравлическое сопротивление колонны, что ректификацию следует проводить под давлением, исключающим опасность термического разложения вещества и обеспечивающим такую температуру в конденсаторе, при которой имеющаяся в распоряжении охлаждающая среда будет пригодна для конденсации паров. [c.53]

Важное преимущество электрофореза на бумаге перед методом подвижной границы связано с возможностью полного разделения компонентов путем элюирования соответствующих зон. С помощью комбинирования сте-кания раствора по наклонной фильтровальной бумаге с электрофоретическим отклонением создан метод, позволяющий беспрепятственно разделять компоненты. [c.158]

Простым, экспрессным и точным методом является метод количественного определения по высоте пика (зоны), образуемого при хроматографическом разделении ионов на бумаге, импрегнированной осадителем. Определение проводят методом градуировочного графика. Для построения последнего на импрегнированную осадителем бумагу наносят с помощью капилляра вместимостью 0,002—0,005 мл стандартные растворы такие же объемы анализируемых растворов. [c.341]

Следы пор обнаруживают визуально при дневном электрическом освещении (освещенность не менее 30 лк). Подсчет пор осуществляют при помощи стекла, разделенного на квадратные сантиметры, которое накладывают иа бумагу с отпечатками пор. Подсчитывают число точек определенного цвета в каждом квадрате н определяют среднее их число по формуле [c.274]

Хроматографическое разделение монофосфата, дифосфата и трицикло-фосфата. При охлаждении в смеси поваренной соли со льдом готовят растворы следующих веществ (по 40 мг) в 5 мл воды монофосфат, пирофосфат и триметафосфат. Часть этих растворов смешивают. Следует познакомиться с методикой работы методом хроматографии на бумаге (разд. 38.3.6). При помощи стеклянной палочки или микропипетки отбирают по капле каждого из четырех полученных таким образом растворов и наносят их на бумагу. Используют метод восходящей хроматографии. Для приготовления элюента смешивают 120 мл метанола, 10 мл разбавленной уксусной кислоты (2 мл ледяной уксусной кислоты и 8 мл воды) и 30 мл буферного раствора. Готовят в колбе на 1 л смеси из 133,3 г трихлоруксусной кислоты и 30 мл 25%-ного раствора NH3 и разбавляют дистиллированной водой до метки. [c.552]

Электрокинетические явления находят практическое применение. Так, с помощью электрофореза проводят формование различных изделий из тонких взвесей с последующим их спеканием. Метод электрофореза щироко применяют для разделения, выделения и исследования биоколлоидов, особенно белков. Простой его вариант, называемый электрофорезом на бумаге, состоит в том, что нанесенное на полоску бумаги пятно исследуемой смеси белков разделяется на компоненты по величине их заряда, а следовательно, и скорости движения в поле постоянного электрического тока. Этим методом исследуют качественный и количественный состав белков крови и других биологических жидкостей. [c.308]

ПАР и ПАН-2 использованы для обнаружения Сс1, Си, РЬ и 2п [877] при хроматографическом разделении на бумаге, ПАР и ПАН-2 — для обнаружения В1, Сё, Со, Си, Мп, N1, РЬ, У(У), и(У1) [736] и 2п (ПАН-2) [658] при их разделении методом тонкослойной хроматографии. При анализе воды и лекарственных препаратов ионы Сё, Со, Си, Hg, N1, РЬ и 2п разделяют на катионообменных бумагах Амберлит 5А-2 или У А-2 , а затем обнаруживают при помощи ПАН-2 или ПАР [97]. Фуимото [637] отмечал, что сорбирование ионов смолами, а затем обнаружение при помощи ПАН-2 или ПАР понижает предел обнаружения В], Hg(И), N1, Рс1, Т1(П1) и У(1У, V) до рО < 8,7, в то время как без сорбции рО = 6,5—7,0 рВ — отрицательное значение логарифма предельного разбавления). Пиридиновые азосоединения широко применяются в качестве проявителей в тонкослойной хроматографии. Используют пластинки с гипофосфитом циркония [704] (разделяют и обнаруживают с помощью ПАН-2 лантан и иттрий), силикагелем [879] (разделяют и обнаруживают Со, Си, N1 с помощью ПАН-2), с целлюлозой МЫ-ЗОО-НК и силикагелем [736] (разделяют В , Сс1, Со, Си, Мп, N1, РЬ, У(У) и и(У1), подвижный растворитель СН3СОСН3—1-СЭН7ОН—СНзСООН—НС —НаО, проявитель — ПАН-2 или ПАР). На пластинках Силуфол на основе силикагеля [646] разделяют Со, Си, Ре, N1 и затем обнаруживают с помощью ПАН-2. Метод применяют для определения элементов в нитратах бария и стронция, хлоридах кальция, аммония и гидрокарбонате аммония. На целлюлозе МЫ-ЗОО-НК, пропитанной хлороформным раствором анионообменника — хлоргидрата Прайамина 1М-Т, отделяют цинк и обнаруживают его реагентом ПАН-2 [658]. Разработан метод обнаружения РО4 , В1, 5Ь, Н 2,6-диамино-З-фенилазо-пиридином [687]. [c.184]

Что касается хроматографического разделения на бумаге смеси карбоновых кис тот, получаемых окислением парафинистого дистиллята, на индивидуальные кислоты при помощи гидроксамовых производных [194) . круговой хроматографии посредством капельного ме тода 1195] и восходящего метода с 70 к 0%-ной уксусной кислотой [196], то здесь положительных результатов получить не удалось. Это объясняется тем. чтг-гехнические карбоновые кислоты, наряду с собственно карбоновыми кислотами, содержат оксикислоты. зфи-рокислоты, кетокислоты и другие функциональные группы. Кроме того, в смеси этих кислот, няряду с кислотами жирного ряда, в значительном количестве имеются нафтеновые кислоты и примесь ароматических кислот Поэтому не представляется возможным указанными хроматографическими методами идентифицировать технические карбоновые кислоты, получаемые окисление нефтепродуктов. [c.82]

Описаны многочисленные методы определения фенолов и их производных, при которых берутся известные в органической химии реакции сочетания с дна-зотированными аминами с образованием азокрасителей. При анализе воды на наличие фенола, орто-, мета- и пара-крезолов используется метод бумажной хроматографии 80, 81 ]. Исследуемые вещества извлекают из воды с помощью диэтилового эфира. Разделение на бумаге осуществляют в системе растворителей бензол—циклогексан—метанол (1 6 0,14). В качестве проявляющего реагента выбирают диазотированный раствор сульфаниловой кислоты. Перед разделением этих же веществ с помощью ТСХ они предварительно переводятся в азокрасители. С этой целью используют известную реакцию сочетания фенолов с диазотированным п-нитроанилином. Разделение осуществляют на пластинках с тонким слоеМ алюминия, в качестве подвижной фазы берут хлорбензол. [c.281]

Сущность метода. Метод заключается в хро.матографическом разделении на бумаге ртутьорганического соединения пропилена с последующим детектированием последнего с помощью дифенилкарбазида или меркуриона. В обоих случаях чувствительность реакции составляет 0,5 мкг на бумаге. Стирол, акрилонитрил, аммиак и окись этилена определению не мешают. [c.300]

М. С. Иванова [57] использовала осадочную хроматографию на бумаге для обнаружения следов примесей различных веществ в неорганических препаратах. Для этого бумагу пропитывали ортооксихинолином, высушивали, после чего на ее поверхность наносили раствор исследуемого вещества. По окончании формирования первичной хроматограммы, последнюю пролшвали органическими веществами, в которых ортооксихиноляты катионов перемещались с различной скоростью. Таким образом, в данном случае имело место сочетание осадочной и распределительной видов хроматографии. Аналогичное сочетание осадочной и распределительной хроматографии имело место в работе и Вентурелло [58], который определял присутствие в растворе катионов Си +, А , Сс1 +, Hg +. Для этого бумагу предварительно обрабатывали дитизоном в ацетоне и высушивали при 20 С. С помощью смеси этилового спирта и воды автор производил разделение указанных ионов. Подобное разделение на бумаге Со +, N1 + было проведено Х.Нагаи [59]. Методика работы в основном сводилась к следующему. Бумагу предварительно обрабатывали рубеановодородной кислотой с последующей экспозицией в парах аммиака, после чего получали осадочные хроматограммы указанных ионов, зоны которых затем разгоняли водой, содержащей л-бутанол и п-пропанол. [c.70]

Найдены условия разделения и, ТЬ и РЗЭ с помощью бумаги, обработанной жидким анионитом [2741. Жидкий анионит готовят встряхиванием бензольного раствора три-н.октиламина с трехкратным объемом раствора НЫОз или ее соли и последующим отделением органической фазы фильтрованием через хлопковое полотно. Полученной жидкостью пропитывают бумагу ватман № 1. Эффективное разделение получено при элюировании растворами НЫОз различной концентрации, а также растворами Ь1Ы0з, ЫаЫОз, ЫН4ЫО3, Са(ЫОз)2 и А1(ЫОз)з методами радиальной и нисходящей хроматографии. [c.186]

Дальнейшая обработка материала определяется задачами исследования. Фиксированные листья можно подвергнуть фракционированию, т. е. выделению определенных групп содерн ащихся в них органических веществ, производимому иа основании растворимости, отношения к различным гидролитическим воздействиям, ионообменным реакциям и т. п. Из полученных фракций органических веществ при помощи различных методов, среди которых прежде всего следует упомянуть хроматографическое разделение на бумаге, могут быть выделены и идентифицированы вещества определенного химического строения. Измеряя активность пре-ратов, приготовленных как из полученных фракций, так и из выделенных соединений, можно установить особенности распределения углерода, поглощенного при фотосинтезе или при темповой фиксации СОг среди различных продуктов обмена веществ растений. Путем таких исследований, представляющих большой интерес, решается вопрос о том, оказывается ли качественный состав продуктов, образующихся при участии фотосинтеза, различным у разных видов растений, а также в разное время дня и вегетационного периода. [c.18]

Другое направление микрохимического метода — капельный анализ. В принципе это довольно старое направление, но сегодняшнее определение следовых количеств веществ имеет свои особенности. Когда каплю раствора помещают на фильтровальную бумагу, растворенные вещества концентрируются на небольшом пространстве. Волокна фильтровальной бумаги образуют капилляры, и на такой бумаге можно разделять очень небольшие образцы. История этого метода восходит к Ф. Ф. Рунге. В 1834 г. он обнаружил свободный хлор с помощью бумаги, на которую была нанесена смесь иодида калия с крахмалом [700]. Г. Шифф [256] в 1859 г. применял фильтровальную бумагу, пропитанную карбонатом серебра, для идентификации мочевой кислоты в образцах мочи. X. Ф. Шенбайн в 1861 г. установил, что при попадании капли водного раствора на фильтровальную бумагу вода распространяется быстрее, чем растворенное вещество, и что высота подъема последпего меняется в зависимости от его свойств. Он указал, что это явление можно использовать для разделения солей [257]. В 1898 г. Г. Трей предложил способ разделения следовых количеств меди и кадмия, а также разработал новый прием нанесения капли на бумагу. Кончик трубки фильтровальной воронки вытягивали в капилляр и слегка изгибали. В воронку наливали раствор и касались бумаги кончиком капилляра. При этом образовывалась капля, которая равномерно смачивала бумагу [258]. Подобные наблюдения были использованы при разработке метода бумажной хроматографии. Классические работы Ф. Гоппельсредера, изучавшего зависимость скорости подъема жидкости по капилляру, распространения капель растворов по капиллярам фильтровальной бумаги от ряда факторов, и аналитическое применение этих эффектов обобщены в изданной им в 1910 г. в Дрездене книге Капиллярный анализ ( Кар111агапа-1у8б ). [c.131]

Белковые фракции сыворотки крови исследовали электрофоретическим разделением на бумаге и последующей колориметрией в электрофотоколориметре 4-14 отдельных фракций, окрашенных бромфенолсиним и элюированных 0,1 N раствором МаОН. Общий белок определяли с помощью рефрактометра. [c.456]

Описаны попытки разделения на бумаге гуминовых кислот и фульвокислот, экстрагированных из почвы [9], восходящим, нисходящим, круговым и двумерным методами с помощью кислотных, нейтральных и основных элюентов. Наиболее универсальным оказался метод круговой хроматографии. Из кислотных элюентов применяли следующие смеси н-бутанол — уксусная кислота — вода н-бутанол — муравьиная кислота — вода н-пропанол — муравьиная кислота — вода изопропанол — муравьиная кислота — вода. После разделения проводили исследование отдельных. компонентов. Детально были изучены свойства нейтральных элюентов, а именно смесш метилэтилкетон —этанол — вода бензол — ацетон— вода диоксан — ацетон — вода и ацетон—.метанол — вода. Определенное разделение было достигнуто в первой системе (6 3 1), но и оно было неудовлетворительным. Были испытаны также несколько основных элюентов, поскольку они, как известно, хорошо разделяют кислоты ряда индола и фенола и их производные. [c.304]

Мопзелизе и Миранда используют для разделения красителей бумагу, пропитанную карбонатом кальция. Выделение красителей для аиализа они проводили с помощью многократной адсорбции на шерсти, которую затехм промывали аммиаком. После подкисления шерсти проводилц хроматографирование в смеси этанола с водой (9 1). Талер и сотрудники [1, 2] для разделения красителей, получаемых из продуктов переработки каменноугольной смолы, рекомендуют применять водные растворы аммиака и едкого кали или едкого натра. Однако лучше использовать аммиачный раствор, поскольку раствор щелочи вызывает пабухание бумаги. Добавление солей приводит к уменьшению величин Для этой цели используют карбонат патрия, хлорид натрия, сульфат аммония и т. п., т. е. такие соли, прибавление 2%-ного раствора которых уже вызывает полное высаливание. Красители в этом случае остаются на линии старта. [c.662]

Электрокинетические явлеиия находят практическое применение. Так, с помощью электрофореза проводят формование различных изделий из тонких взвесей с последующим их спеканием. Метод электрофореза широко применяют для разделения, выделения и исследования биоколлоидов, особенно белков. Простой его вариант, называемый электрофорезом на бумаге, состоит в том, что нанесенное на полоску бумаги пятно исследуемой смеси белков [c.331]

Для разделения двухкомпонентпой смеси 4-нитрофенола н 4-амипофенола при помощи одномерной хроматографии на бумаге в качестве подвижной фазы используют 0,5 Ai раствор НС1. Проявляют разделенные соединения на хроматограмме над концентрированным раствором аммиака. [c.220]

Настоящий автоматический анализатор ионов — бумажный хроматографический титрометр разработан в Советском Союзе. Он имеет скромный вид узкой (несколько миллиметров) полоски фильтровальной бумаги, равномерно импрегнированной тем или иным осадителем ионов, например карбаминатом свинца — для осаждения ряда катионов или нитратом серебра — для осаждения анионов. Количество импрегната, приходящееся на единицу площади поверхности полоски (титр бумаги), известно. Анализ раствора производится впитыванием его в полоску до первой метки, а затем впитыванием растворителя (обычно воды) до второй метки, более удаленной от впитывающего конца полоски, чем первая метка. Разделение смеси ионов, например хлора, брома, иода, происходит со скоростью впитывания, причем высота зоны каждого иона обратно пропорциональна титру бумаги. Результаты анализа считываются со шкалы, заранее нанесенной на полоску в соответствии с титром бумаги. Анализ при помощи этого анализатора — минутное дело, доступное всем, а не только химикам. Он может быть легко изготовлен в любой лаборатории. [c.15]

После завершения разделения смеси полоски бумаги (фореграммы) проявляют в УФ-излучении или с помощью соответствующего реактива и зоны идентифицируют путем сравнения с форе-граммами свидетелей (чистых веществ). Количественное определение компонентов смеси проводят с помощью самопишущего денситометра или путем экстрагирования веществ из вырезанных зон с последующим спектрофотометрированием раствора (см. [c.231]

Подготавливают прибор устанавливают его горизонтально с помощью винтов кюветы заполняют электролитом, соединяют оба их отделения фитилями из полосок фильтровальной бумаги, присоединяют клеммы электродов к источнику тока. Нарезают полоски хроматографической бумаги 4,0X45 см и на расстоянии 10 см от анодного конца намечают карандашом линию старта полоски бумаги погружают в раствор электролита в ванне, затем отжимают их между слоями фильтровальной бумаги и раскладывают на столе, покрытом чистым стеклом. 0,01—0,02 мл подлежащей разделению смеси наносят микропипеткой на шлифованную грань предметного стекла, стекло прикладывают к полоске бумаги по линии старта. При такой методике раствор [c.232]

Большие успехи в разделении смесей достигнуты с помощью тонкослойной хроматографии (ТСХ). В этом методе носитель, например силикагель или оксид алюминия, наносят тонким слоем на стеклянную пластинку. Основным достоинством тонкослойной хроматографии является более быстрое выполнение анализа, чем методом бумажной хроматофафии, так как в тонком слое носителя растворитель движется бысфее, чем по бумаге, а также возможность применять более широкий круг элю-ентов, в том числе и элюентов, разрушающих бумагу. [c.294]

На круг хроматографической бумаги накладывают шаблон с пятью секторами и простым карандашом очерчивают линию фронта (на рис. 3.10 нанесена пунктиром). В четыре сектора с помощью микрошприца в 2—3 приема в одну и ту же точку на линии старта (на рисунке обозначено звездочками) наносят по 4 мкл растворов-свидетелей четырех аминокислот. После каждого нанесения пробы пятну дают подсохнуть. Диаметр пятна не должен превышать 3 мм и ни в коем случае пятно не должно касаться границ секторов. Чем меньше пятно, тем лучше разделение. Последовательность нанесения растворов-свидетелей аминокислот записывают в тетрадь. На стартовую линию пятого сектора микроширицом (объем пробы указывает преподаватель) наносят раствор, содержащий смесь аминокислот неизвестного состава. [c.216]

Зонный электрофорез на бумаге. Различают бумажный электрофорез низковольтный (при градиенте напряжения 20—30 В/см) и высоковольтный (с градиентом напряжения до 200 В/см). Высоковольтный электрофорез применяют для разделения низкомолекулярных соединений. Приборы оборудуют устройствами для отвода джоулевой теплоты, для чего используют инертные жидкости (тетрахлорид углерода, толуол), в которые помещают пропитанные буферным раствором бумажные полоски (фореграммы). Сама жидкость охлаждается с помощью погруженного в нее холодильника. [c.363]

Ниобий и тантал разделяют на непропитанной бумаге в виде фторидов в одной из двух систем диэтилкетон, насыщенный водным раствором 2,2 М плавиковой кислоты, — 2 М азотная кислота (./ / Nb — 0,55 Та — 1,0) или смесь 100 мл метилизобуликетона с 3 мл 40%-ной плавиковой кислоты (Л/ ЫЬ —0,1 Та — 0,87). Разделение во второй системе используют для количественного определения обоих элементов в стали сначала химически выделяют эти элементы в виде оксидов, которые затем переводят во фториды и разделяют хроматографически. Обнаруживать и количественно определять эти элементы можно, например, с помощью 8-оксихинолина. [c.242]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология