Дрожжи центрифугированием

Экспериментальное определение числа клеток в 1 г дрожжей можно выполнить, сравнивая результаты подсчета с результатами определения концентрации дрожжей центрифугированием. [c.138]

Ранее в качестве питательной среды использовали газообразные алканы, прежде всего метан. Бактерии, ассимилирующие метан, сначала окисляют его в метанол. Такой процесс ферментации складывается из следующих операций. Бактерии суспендируют в питательный раствор, через который пропускают воздушно-метановую смесь. В растворе в качестве минеральных солей, необходимых для размножения дрожжевых клеток, находятся аммониевые соли. Твердая масса бактерий выделяется из содержимого в ферментаторе центрифугированием. Полученную центрифугированием массу промывают и просушивают. Выход дрожжей высокий. Из 100 ч. (по массе) метана получают 75 ч. готового клеточного материала. Применение газообразных алканов создает и некоторые проблемы — повышенная потребность в кислороде 1 г дрожжей нуждается в 5,3 г кислорода и т. п., смесь метана и кислорода небезопасна (взрывчатая смесь), микроорганизмы трудно отделяются центрифугированием от жидкой фазы. [c.206]

Количество биомассы дрожжей (60—80 г/л) определяется центрифугированием каждые 2 ч содержание сухих растворимых веществ (1,0—2,2%) —с помощью рефрактометра. В биомассе должно содержаться 10—20% почкующихся дрожжевых клеток и ие должно быть посторонних микроорганизмов (определяют каждые 2 ч под микроскопом нли в камере Горяева). [c.308]

Сначала разрушают стенки дрожжевых клеток путем механической, щелочной, кислотной или ферментативной обработки с последующей экстракцией гомогенной дрожжевой массы подходящим органическим растворителем. После такой очистки от органических и минеральных примесей дрожжевой продукт обрабатывают щелочным раствором для растворения белков. Далее белковый раствор, отделенный центрифугированием от оставшейся массы дрожжей, подвергают диализу. Очищенные от низкомолекулярных примесей белки осаждают, высушивают и используют в качестве белковых добавок в различные пищевые продукты сосиски, паштеты, мясные и кондитерские начинки. Белки дрожжей применяют также при получении искусственного мяса. Для этого их нагревают с последующим быстрым охлаждением или продавливанием белковой пасты через отверстия малого диаметра. В белковую пасту добавляют полисахариды и другие компоненты. [c.13]

Мелассу разбавляют водой в соотношении 1 1—1 4, подкисляют серной кислотой до pH 5,0, осветляют центрифугированием в специальных кларификаторах. При центрифугировании из среды удаляются вещества, которые могут ухудшать цвет и качество дрожжей. Такой 20—45%-ный раствор мелассы перекачивают в приточные мерные резервуары. Водные растворы солей (обычно в соотношении 1 10) перекачивают в отдельные приточные емкости. [c.104]

В микробиологической промышленности, так же как и в других производственных сферах, все технологические процессы связаны с большим расходом воды. Необходимо отметить, что главный процесс — культивирование микроорганизмов — идет в водной среде. Масса клеток в конце ферментации обычно не превышает 1—2%, а концентрация растворенных веществ — 5—10%. Независимо от того, где находится целевой продукт — в клеточной массе или в растворе, нерастворимую фракцию, включая и биомассу, перед спуском непригодного жидкого остатка в канализацию отделяют центрифугированием, фильтрацией или осаждением. Если в жидкости после выделения нужных продуктов остается много редуцирующих веществ в виде ассимилируемых микроорганизмами источников углерода, то такую жидкость культивации можно использовать в качестве среды для получения кормовых дрожжей или кормового витамина В и, а также других полезных веществ и продуктов. Однако даже после повторного использования жидкие отходы еще содержат определенное количество веществ, дальнейшее использование которых невыгодно. Эти отходы вместе с питьевой, бытовой и другими видами воды попадают в канализацию. Объем сточных вод можно уменьшить, применяя, где возможно, рециркуляцию. Это в первую очередь относится к охлаждающей воде. В ряде случаев остаток культуральной жидкости или часть ее можно использовать для приготовления питательных сред. [c.215]

Выход дрожжей высокий. Из 100 ч. (по массе) метана получают 75 ч. готового клеточного материала. Применение газообразных алканов создает и некоторые проблемы — повышается потребность в кислороде 1 г дрожжей нуждается в 5,3 г кислорода и т. п. Смесь метана и кислорода небезопасна (взрывчатая смесь), микроорганизмы трудно отделяются центрифугированием от жидкой фазы. [c.122]

Созревшее пиво осветляют и освобождают от дрожжей путем фильтрации или центрифугирования, после чего направляют на розлив. [c.207]

В производстве некоторых антибиотиков используют ротационные вакуум-барабанные фильтры непрерывного действия Если биообъектами оказываются бактерии или дрожжи, то можно применить центрифугирование в целях концентрирования суспен- [c.242]

Сепарирование клеток из культуральной жидкости проводят одним из следующих способов (в зависимости от биообъекта) фильтрованием через ротационные вакуум-фильтры, фильтр-прес-сы (например для отделения мицелиальной массы) коагуляцией или эЛектрокоагуляцией с последующим центрифугированием, исключая фильтрацию (например, для отделения бактериальной массы) центрифугированием, используя центрифуги непрерывного действия, например, для дрожжей, или корзинчатые — для нитчатых грибов. [c.475]

Определение фильтрованием. Концентрацию дрожжей в бродящем сусле можно определить не только подсчетом и методом центрифугирования, но и фильтрованием. [c.138]

Сравнивая между собой разные методы определения концентрации дрожжей, надо отдать преимущество методам центрифугирования и фильтрования в случае, если испытуемая жидкость содержит достаточное количество дрожжей (например 20 г в 1 л и больше). [c.139]

Вес сырых дрожжей, полученных путем центрифугирования 200 мл бражки в двух пробирках, равен 7 г. Определить концентрацию дрожжей в граммах в 1 л. (35 г). [c.199]

Пробу отсепарированной бражки для каждой партии отбирают непрерывно из желоба сепаратора. Содержание в ней дрожжей определяют методом центрифугирования. [c.309]

Концентрацию дрожжей в дрожжевом молоке определяют методом центрифугирования. [c.309]

В тех случаях, когда потребители дрожжей находятся в непосредственной близости к спиртовому заводу, целесообразно выпускать дрож.жи в виде суспензии, получаемой после центрифугирования, с содержанием около 500 кг биомассы в 1 т, е. 12,5% сухого вещества, В этом случае отпадает необходимость в затратах на упаривание и сушку дрожжей. [c.447]

Московским технологическим институтом мясной и молочной промышленности разработан способ получения кормовых дрожжей из жирового флотоконцентрата сточных вод мясокомбинатов. По этому способу разбавленный флотоконцентрат подается в специальный обогреваемый реактор, в который добавляется штамм белковых дрожжей. После брожения происходит отделение твердых веществ на ситах, центрифугирование образовавшейся белковой жидкости и ее последующая сушка с получением порошкообразного белкового концентрата. [c.227]

Митохондрии обычно выделяют путем мягкого разрушения ткани в изотоническом растворе сахарозы с последующим дифференциальным центрифугированием, которое позволяет отделить митохондрии от ядер, обломков клеток и микросом (фрагментов эндоплазматического ретикулума). Этот метод пригоден лишь для нежных тканей, таких, как печень. В случае более плотных тканей, таких, как сердечная мышца, их вначале обрабатывают протеазами (типа нагаре, например) или разрушают в гомогенизаторе. Митохондрии из дрожжей выделяют после переваривания клеточной стенки с помощью пищеварительных ферментов улитки. [c.14]

По объему осадка, получаемому после центрифугирования, микроорганизмы больше похожи на животные ткани. Дрожжи и сходные с ними грибы с толстой клеточной стенкой дают осадок, объем которого практически равен исходному объему клеточного материала. То же самое характерно и для бактерий. Если в процессе экстракции действуют значительные силы сдвига, в раствор может перейти большое количество материала клеточной стенки. Это создает новые проблемы, которые будут обсуждаться далее (разд. 2.3). [c.43]

Определение центрифугированием. Для определения в бродящем сусле концентрации дрожжей центрифугированием применяют лабораторную центрифугу с ручным или электрическим приводом, делающую 2,5—3,0 тыс. оборотов в минуту. Два стаканчика центрифуги смачивают с внутренней поверхности водой, взвещивают и.наливают в каждый стаканчик по 50 мл исследуемой жидкости, содержащей дрожжи. Затем стаканчики вставляют в гнезда центрифуги и центрифугируют в течение 5 минут при 2,5—3,0 тыс. оборотов. Совершенно необходимо, чтобы оба стаканчика с содержимыхм были однакового веса и чтобы они были помещены в центрифуге взаимно противоположно. В противном случае возможна поломка центрифуги. После первого центрифугирования жидкость из стаканчиков осторожно сливают, стараясь не взмутить осадка, вторично добавляют в каждый стаканчик по 50 мл исследуемой жидкости и снова центрифугируют в течение 5 минут. Приливание в стаканчик исследуемой жидкости повторяют четыре раза, чтобы в каждом стаканчике было отцентрифу-гировано по 200 мл жидкости. После четвертого раза в каждый стаканчик добавляют по 50 мл воды, дрожжевой осадок хорошо перемешивают стеклянной палочкой и еще раз центрифугируют [c.138]

Первичное осветление может осуществляться осаждением дрожжей, центрифугированием, фильтрованием или сочетанием этих методов (фильтрование проводится непосредственно перед розливом). Типичными осветляющими веществами являются бентонит, желатин, рыбий клей или хитозан (частично деацетилированный хитин, из- [c.110]

Методика опыта. 10 г дрожжей помещают в небольшую фарфоровую ступку, добавляют 15 капель эфира, чтобы убить дрожжевые клетки, 10 мл воды и ш епотку песка. Смесь тщательно растирают. К растертой массе приливают 50 мл 0,4%-ного раствора NaOH и снова растирают в течение 15 мин. Затем содержимое ступки переносят в центрифужные пробирки и центрифугируют (можно фильтровать). Центрифугат (фильтрат) переносят в стакан (лучше в высокий узкий цилиндр), куда добавляют из пипетки 5%-ный раствор СН3СООН до полного осаждения нуклеопротеида. Обычно для этого расходуется около 15 мл СН3СООН. Осадок отделяют центрифугированием. Для исследования осадок нуклеопротеидов подвергают гидролизу. [c.59]

Ход работы. Прессованные дрожжи тщательно растереть с чистым песком, добавив несколько миллилитров эфира и воды. Растертые дрожжи залить трехкратным (к весу дро жжей) объемом 0,4%-ного раствора-едкого натра, добавить 1—2 мл толуола и оставить на сутки. После этого щелочной экстракт, содержащий нуклеоиротеид, отфильтровать через большой складчатый фильтр и из фильтрата осадить нуклеоиротеид осторожным добавлением 5%-ной серной кислоты до прекращения выделения осадка. Осадок нуклеоиротеида отделить центрифугированием, разбавив небольшим количеством воды, н снова отделить центрифугированием, разбавив небольшим количеством воды, и снова отделить. С полученным нуклеопротеидом проделать цветные реакции на белки, а затем часть его подвергнуть гидролизу, для чего в течение двух часов кипятить с 10—20-кратным объемом 5%-ной серной кислоты в небольшой колбе с обратным холодильником. [c.181]

Источником получения ДНК обычно является ви-лочковая железа (тимус) телят, т. к. в ее клетках ядра составляют больше половины объема. Для получения РНК удобнее всего использовать дрожжи. Н. к. всегда тесно связаны с белками в нуклеопротеидных структурах. Для их освобождения проводят денатурацию белков добавлением к взвеси клеток (предварительно вскрытых путем разрушения их оболочки ) р-ра фенола высокой концентрации, а также нек-рых детергентов (напр., додецилсульфата) или хлороформа. Обычно фенольная депротеинизация ведется так, что фенола дается большой избыток и после отстаивания или центрифугирования образуются два слоя внизу — фенол, насыщенный водой, сверху — вода, насыщенная фенолом. Денатурированные белки сосредоточиваются в нижнем слое и у границы раздела, Н. к.— в верхнем водном слое, откуда их осаждают спиртом. При фенольной экстракции возможно частичное фракционирование Н. к. на ДНК (растворяется преимущественно при pH9) и РНК (растворима и при рН5). Однако полностью отделить ДНК и РНК друг от друга удается только дополнительным воздействием специфическими гидролитич. ферментами ДНК-азой и РНК-азой. Эти ферменты добьхваются из поджелудочной железы рогатого скота, подвергаются тщательной очистке и кристаллизации. Действуя ДНК-азой, разрушают ДНК и получают чистую РНК. С помощью РНК-азы очищают ДНК от РНК. После ферментативной обработки полученные продукты снова подвергают фенольной депротеинизации с последующим осаждением Н. к. спиртом. [c.189]

Если для производства спирта используют мелассу, такие предварительные операции не нужны, поскольку углеводы в ней содержатся в форме, пригодной для сбраживания. Тем не менее сырье все же приходится подготавливать к процессу осветлять подогревать и разводить водой, чтобы получить концентрацию сахара, оптимальную для брожения. После подготовки сырья добавляют культуру подходящих дрожжей и ведут сбраживание. В конце его, когда концентрация спирта достигнет 9—11% (по объему), отделяют дрожжи путем отстаивания. Остатки их перед перегонкой можно удалить центрифугированием. Применяются два способа кубовый и непрерывной перегонки (патент Коффи). После этого продукт либо отправляют на созревание (например, виски), либо проводят завершающие операции и [c.112]

По окончании брожения к смеси прибавляют 20—30 г коротковолокнистой стеклянной ваты или асбеста и отсасывают дрожжи. Фильтрат выпаривают на водяной бане в вакууме до густоты сиропа при температуре не выше 40° (примечание 2). Остаток (около 200 мл) взбалтывают со смесью 400 мл абсолютного спирта и 100 мл абсолютного эфира (примечание 3). Образовавшийся осадок удаляют центрифугированием, верхний эфирно-спиртовой слой сливают, а сиропообразный остаток экстрагируют смесью 200 мл 98,5%-ного спирта и 100 мл абсолютного эфира (примечание 4). Соединенные спиртово-эфирные растворы упаривают в вакууме при 35— 40° до получения густого сиропа. Остаток снова взбалтывают со смесью 400 мл 98,5%-ного спирта и 100 мл абсолютного эфира и центрифугируют (примечание 4). Верхний эфирноспиртовой слой отделяют, упаривают его в вакууме и перегоняют остаток из специальной колбы Клайзена. Выход сырого продукта, кипящего при 86—91°/12 мм, около 100 г. Сырой продукт опять перегоняют и собирают фракцию 88—90°/12 мм или 187— 189°/7б0 мм. Конечный продукт (примечание 3) представляет собою бесцветную жидкость с уд. в. 1,04 и удельным вращением [а] о° = = —15,0°. Выход 50—60 г (49—58% теоретич. примечание 5). [c.421]

Лайнен [38] установил, что лучшим источником активной уксусной кислоты является водный экстракт дрожжей. Перед экстракцией дрожжи суспендируют в водном растворе глюкозы или сахарозы, поддерживая слегка щелочную реакцию добавлением бикарбоната натрия. В полученную суспензию в течение 15 мин пропускают ток кислорода при 30°. Такая методика обеспечивает максимальное продуцирование активной уксусной кислоты . Затем суспензию порциями добавляют к сильно перемешиваемой кипящей воде, содержащей уксусную кислоту в количестве, достаточном для нейтрализации бикарбоната натрия при этом температура не должна опускаться ниже 70—80°. После окончания прибавления смесь быстро нагревают до кипения и также быстро охлаждают до 10°. Затем удаляют центрифугированием твердое вещество. Из 750 г дрожжей получают около 1690 мл прозрачного желтого экстракта. Чтобы избежать потерь активной уксусной кислоты , экстракт нельзя выдерживать при 100° дольше, чем это необходимо. Теперь уже можно употреблять название ацетильное производное кофермента А , а не активная уксусная кислота . Приблизительное представление об относительных концентрациях этого вещества в различных препаратах можно получить, используя фиолетовое окрашивание, появляющееся при добавлении к нил аммиачного раствора нитропруссида натрия. Появление окраски объясняется предварительным гидролизом КЗСОСНз до тиола ДЗН (окраска появляется приблизительно через 1 мин). Добавление твердого сульфата аммония увеличивает чувствительность реакции и устойчивость окраски. Общий объем пробы должен составлять 0,09 мл, а емкость пробирки, в которой эта проба проводится, — 0,9 мл. В указанных условиях легко обнаруживаются количества ацетильного производного кофермента А, превышающие 2 . Тиолы, конечно, мешают проведению этой пробы их можно удалять окислением спиртовым раствором иода до дисульфидов, которые инертны в условиях опыта. Присутствие дисульфидов в экстракте из дрожжей можно обнаружить, добавляя к аммиачному раствору (до прибавления нитропруссида) цианистый калий. При этом образуется тиол. Реакция протекает следующим образом [c.269]

После добавления спиртового раствора иода дрожжевой экстракт обрабатывают большим количеством сульфата аммония и экстрагируют 4 раза жидким фенолом. Последний даряду с другими нуклеотидами извлекает и требуемое вещество. Объединенные экстракты разбавляют равным количеством эфира и несколько раз экстрагируют водой. Водные экстракты освобождают от фенола встряхиванием с эфиром и затем упаривают в вакууме при низкой температуре до небольшого объема. Полученный раствор обрабатывают ацетатом бария в присутствии спирта и аммиака. Выпавшую бариевую соль разрушают разбавленной серной кислотой, отделяют сульфат бария центрифугированием и из полученного раствора удаляют ацетилкофермент А адсорбцией на угле. Показано, что в оставшейся жидкости не содержится тиолов и дисульфидов. Уголь промывают водой для удаления сульфата и экстрагируют водным пиридином до тех пор, пока экстракт не перестанет давать положительную реакцию на тиолы и дисульфиды. Пиридин удаляют экстракцией хлороформом, а водный раствор упаривают, как и раньше, до очень маленького объема и обрабатывают ацетоном. После стояния в течение ночи при —20° выпадает S-ацетильное производное кофермента А его центрифугируют и сушат в вакууме над силикагелем. В таких условиях при 0° вещество может храниться, не подвергаясь разложению. Из 3 кг дрожжей получают 180—250 мг S-ацетильного производного, содержащего от 1 до 5,5 1 СНзСО— на 1 мг вещества. [c.270]

Богаты белками (до 50% в сухих) и витаминами кормовые дрожжи, получаемые после гидролиза целлюлозы (см. главу XIV). Дрожжи другого вида способны усваивать жидкий парафин в присутствии раствора солей, содержащих азот, фосфор и калий, синтезировать на их основе белок и размножаться. Центрифугированием отделяют дрожжевую массу — белкововитаминный концентрат, содержащий до 60% белка, в составе которого — значительный процент незаменимых аминокислот, и богатый многими витаминами. [c.92]

В настоящее время разрабатываются новые декантационные и флотационные методы выделения биомассы с применением поверхностно-активных веществ. В частности, дрожжи, выращенные на дизельном топливе, отделяют от жидкости декантацией, при этом они скапливаются в масляной фазе в виде суспензии. Суспензию обрабатывают каким-либо детергентом, например сложным эфиром сахарозы, семизолом, после чего дрожжи отделяют центрифугированием. Дрожжевые клетки отмывают для удаления детергента, который вновь вводится в процесс. [c.113]

В процессе флотирования верхний слой дрожжевой суспензии отбирается и подается далее на сепараторы, а нижний слой сливается и используется вторично на приготовление питательных сред или раствора питательных солей. Остаток, содержащий органические соединения, направляется на очистные сооружения или же на упаривание, а затем сжигается. Остаток, содержащий минеральные соединения, может быть использован в качестве удобрения. Отделение дрожжей на сепараторах является одним из опасных узлов в этой схеме. Сепараторы, действующие по принципу центрифугирования, создают при работе большой шум, достигающий [c.424]

На большинстве предприятий по производству спиртных напитков используют промышленные штаммы дрожжей S. erevisiae, но известно и о применении в производстве рома дрожжей Szhizosa haromy esротЬе. Дрожжи для саке также являются штаммом рода 5. erevisiae. Различие между дрожжами низового брожения, которые в конце брожения оседают на дно бродильного чана, и дрожжами верхового брожения, которые всплывают на поверхность и снимаются вместе с пеной, в наше время большого значения не имеет, поскольку при производстве многих сортов темного пива используемые дрожжи оседают в конце брожения и удаляются центрифугированием, а не традиционными способами [11]. [c.46]

В конце 1980-х гг. был разработан аппарат для непрерывного дображивания с помощью иммобилизованных дрожжей после классического главного брожения [33, 80,81]. После брожения дрожжи удаляются центрифугированием, а пиво подвергается тепловой обработке для преобразования нетермостойкого прекурсора диацетила а-ацетолактата в диацетил. После нее пиво проходит через колонну с несколькими слоями иммобилизованных дрожжей на целлюлозном носителе. При этом иммобилизованные дрожжи,восстанавливают диацетил до ацетоина. Такая технология позволяет сократить продолжительность дображивания до нескольких часов (она применяется на пивоваренных заводах фирмы Синебрюхофф в Финляндии). [c.75]

При приготовлении вин цветочно-фруктового стиля важно своевременно удалять сухие вешества (СВ) винограда. Высокое содержание СВ приводит к образованию высших спиртов — изобутанола, активного амилового и изоамилового спиртов (соответственно, 2- и 3-метилпентанола) и утрате сложных фруктовых эфиров и ацетата [21, 44]. СВ можно удалить путем холодного отстаивания (под действием естественной силы тяжести) или с помощью механических средств — например, центрифугированием или фильтрованием. При холодном отстаивании сусло в течение примерно 24 ч охлаждают до температуры 5-8 °С. Для осветления сусла можно добавить пектолитические ферменты, но иногда вместо ферментов в качестве осветлителей используют бентонит, желатин или кизельзоль. Как правило, содержание СВ достаточно уменьшить менее чем до 0,5%, хотя некоторые виноделы являются сторонниками брожения полностью осветленного сока. В этом случае без аэробного размножения дрожжей и введения азотсодержащих добавок с инертными минеральными веществами брожение может прекратиться или замедлиться. СВ сока обеспечивают дрожжам наличие мест для почкообразования и высвобождения двуокиси углерода и этилового спирта, тем самым не допуская токсичности конечных продуктов обмена веществ. Добавление к таким сокам СВ винофада, диатомита или бентонита приводит к возрастанию интенсивности брожения [16]. Недавние эксперименты по использованию в этих целях растянутых волокон целлюлозы доказали их эффективность для предотвращения остановки брожения, поскольку содержащийся в этих волокнах кислород обеспечивает питательными веществами участки почкообразования. Эта целлюлоза также поглощает выделяемые дрожжами токсины и, следовательно, уменьшает вероятность остановки брожения. [c.135]

Осветление белых вин проводят бентонитом или желатином с кизельзолем (коллоидной взвесью кизельгура в воде). Последний способ позволяет получить в вине хлопья in situ, захватывающие при осаждении на дно взвещенные частицы. Механическое осветление проводят центрифугированием или фильтрованием. Больщинство вин перед розливом в бутылки в той или иной степени нуждается в фильтрации. Для сухих вин, обработанных соответствующими осветлителями, проводится грубое фильтрование (удаляются взвещенные частицы размером до 5 мкм), но некоторые вина могут потребовать трехкратного фильтрования с мембранным фильтрованием в конце (размер удаляемых частиц — 0,45-1,2 мкм), позволяющим удалить бактерии и дрожжи. Мембранное фильтрование особенно важно для вин, содержащих остаточные сахара, так как позволяет убедиться, что в бутылках не начнется повторное брожение. При окончательной обработке и розливе вина необходимо минимизировать контакт вина с воздухом, а содержание в вине свободного SO2 должно составлять 25-30 мг/л. Для минимизации окисления вина кислородом в ходе розлива бутылки предварительно следует продуть инертным газом. [c.142]

В производстве кашасы применяют брожение как по периодической, так и по непрерывной технологии. На большинстве предприятий применяют периодическую технологию, позволяющую повторно использовать собранную дрожжевую биомассу. Обычно по окончании брожения суслу дают отстояться, и биомасса оседает под действием силы тяжести. Затем отстоявшуюся жидкость отправляют на дистилляцию, а к осадку (pe-de- uba), составляющему 10-20% объема бродильного чана, для последующего брожения добавляют новое сусло. На некоторых предприятиях для отделения сусла от осадка используется центрифугирование жидкая фаза (супернатант) отправляется в перегонку, а дрожжевая взвесь обрабатывается водой, серной кислотой (pH 2,2-3,2) и взбалтывается в течение 4 ч, после чего возвращается в бродильную емкость для проведения нового брожения. И в том и в другом случае начальная стадия брожения сокращается, а более высокие концентрации дрожжей (до 3x10 клеток/мл) обеспечивают более быстрое начало стадии бурления, сокращая тем самым продолжительность брожения. [c.430]

Выращиваемые в анаэробных условиях дрожжи живут за счет спиртового брожения. Но генетическая непрерывность существования митохондрий поддерживается полулатентными дедифференцированными органеллами, так называемыми промитохондриями [1291, 1618, 1619]. Промитохондрии служат предшественниками митохондрий. Они содержат ДНК, их можно увидеть с помощью электронного микроскопа и можно сконцентрировать путем центрифугирования 1[426,1445,1446]. [c.180]

Подавление пены химическими веществами не всегда возможно или целесообразно. Причинами, ограничивающими в той или иной степени применение химических пеногасителей, могут быть их токсичное действие (пенообразование при производстве продуктов в пищевой, бродильной, фармацевтической и других отраслях промышленности), значительное удорожание выпускаемой продукции (например, применение химических пеногасителей при производстве кормовых дрожжей увеличивает их себестоимость примерно на 20%). Кроме того, химп-яеские пеногасители могут отрицательно влиять на ход технологического процесса или усложнять последующую переработку полуфабриката (стадии фильтрования, центрифугирования, сушки). [c.249]

Схема Труфанова по выделению рибофлавина из дрожжей заключается в следующем. Дрожжи подвергают автолизу для отщепления флавина от белкового носителя. Автолизат экстрагируют спиртом и подкисленной водой, экстракт отделяют центрифугированием. Рибофлавин из экстракта адсорбируют на асканите, из асканита его элюируют водно-спиртово-пириди-новой смесью. Из элюата витамин 83 вновь адсорбируют сульфидом свинца, после элюции повторно осаждают азотнокислым серебром. Серебряная соль разлагается сероводородом с последующей очи-сткой [c.90]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология