Пары оснований в обратные

Следовательно, и направление реакции между такими парами станет обратным тому, которое ожидается на основании их положения в таблице стандартных потенциалов. [c.353]

Выделение продуктов реакции. Ввиду того что физические свойства олефинов, образующихся в результате реакции распада по Гофману, весьма разнообразны, невозможно предложить метод выделения продуктов этой реакции, который оказался бы применим во всех случаях. При разлон ении растворимого в воде четвертичного основания образуются олефины и амины, которые обычно обладают меньщей растворимостью и которые можно отогнать с водяным паром или же которые могут оказаться в остатке — в зависимости от условий пиролиза. Обычно из некоторой части четвертичного основания обратно получается исходный третичный амин, который остается в реакционной смеси в виде примеси. Если непредельное соединение не обладает основным характером, то его можно довольно легко выделить если же в этой части молекулы сохраняется атом азота, что бывает в тех случаях, когда исходят из гетероциклического амина, то может возникнуть проблема разделения этих аминов. Встречаясь с такими трудностями, многие исследователи просто подвергали неочищенный продукт реакции повторному метилированию и снова осуществляли реакцию распада до тех пор, пока не получали продукт, не содержащий азота. Если оказывается необходимым разделять смесь третичных аминов, то обычно используют различия в растворимости самих аминов или одной из их солей. [c.389]

В дальнейшем, однако, более детальные исследования мутаций, индуцируемых акридиновыми красителями, показали, что мутации второго типа соответствуют не предложенным Фризом трансверсиям, а вст.авкам или делециям одной или нескольких пар оснований в цепи ДНК. Но из этого не следует, что трансверсии в ДНК вообще не возникают. Они возникают, но относятся к мутациям первого типа и, следовательно, индуцируются и дают реверсии под действием мутагенных аналогов оснований. Большинство гП-мутантов, которые не дают обратных мутаций как спонтанно, так и в присутствии мутагенов, представляют собой про- [c.324]

Энергия, необходимая для расплетения ДНК, зависит от последовательности пар оснований. Это, по существу, величина, обратная количеству энергии, высвобождаемой при образовании двойной спирали. Таким образом, чтобы разделить 10 пар оснований, нужно затратить 12-50 ккал/моль. Значит, реально существующий уровень суперспирализации соответствует количеству энергии, которое может обеспечить расплетание только совсем немногих пар оснований. [c.33]

В реакции образования D-петли вытеснение гомологичной кольцевой цепи происходит частично структура ковалентно замкнутого двухцепочечного кольца может служить топологической помехой распространению реакции. Реакция будет более эффективной, если поставить структуры двух- и одноцепочечной молекул в обратном порядке. Кольцевая одноцепочечная молекула может взаимодействовать с гомологичной двухцепочечной, вытесняя полностью одну цепь. Схема реакции представлена на рис. 35.7 [средний ряд). Она начинается в одном конце молекулы и распространяется к другому ее концу, образуя гетеродуплекс длиной до нескольких тысяч пар оснований. [c.449]

На рис. 39.9 показана взаимосвязь канонических последовательностей в 1 -локусе мыши. В каппа-локусе за каждым Ух-геном следует последовательность со спейсером из 12 пар нуклеотидов. Перед каждым 1х-сегментом расположена каноническая последовательность, имеющая спейсер из 23 пар оснований. Последовательности, прилежащие к V- и 1-сегментам, находятся в Противоположных ориентациях. В лямбда-локусе обнаружена обратная организация за каждым геном следует каноническая последовательность, со спейсером из 23 нуклеотидов, в то же время перед каждым 1г -сегментом расположена последовательность, разделенная спейсером из 12 пар нуклеотидов. [c.509]

Методика, приводимая ниже, предназначена для выявления роста частоты обратных мутаций под действием нескольких часто используемых химических мутагенов, Эта методика с использованием дисков из фильтровальной бумаги, пропитанных соответствующими веществами [6, 9], позволяет исследовать на мутагенную активность не только аналоги оснований и гидроксиламин, но и алкилирующие агенты (ЭМС), соединения группы I R (I R-19I), вызывающие преимущественно вставки и делеции пар оснований (сдвиги рамки), и НТГ, сходный по специфичности с ЭМС. [c.32]

Если выпадет пара оснований вблизи вставки (слева или справа), то за пределами участка, ограниченного вставкой и выпадением (прямой мутацией и супрессором) нуклеотидных пар, исходная информация будет восстановлена благодаря сдвигу рамки (сдвигу считывания) в обратном направлении [c.392]

В первых экспериментах по обмену, проведенных на ДНК из тимуса теленка, самые малые зарегистрированные времена обратного обмена составляли около 120 с. К этому моменту в ДНК оставалось 1,9 атомов Н на пару оснований. Вплоть до времен порядка 1000 с кинетика обмена описывалась одной экспоненциальной кривой, причем в ДНК оставалось лишь 0,2 атома Н на пару оснований при этом Ту = 330 с. Экстраполяция данных к нулевому моменту времени дала кажущееся начальное содержание Н = 2,3 на пару оснований. Эта величина находится в очень хорошем согласии со значением, получающимся из расчетов в предположении, что все протоны, участвующие в образовании межцепочечных водородных связей, обмениваются медленно, а все остальные протоны обмениваются столь быстро, что этот обмен не удается наблюдать. В каждой АТ-паре имеется два протона, участвующих в образовании водородных связей, а в каждой ОС-паре — три. Исходя из известного нуклеотидного состава тимусной ДНК можно заключить, что на каждую пару оснований должно приходиться в среднем по 2,42 протона. [c.296]

Судя по величинам стандартных потенциалов пар u +/ u (+0,15 в) и 1а/2Г (+0,54 в), следовало бы ожидать течения рассматриваемой реакции в обратном направлении. Причина расхож-д ния между направлением реакции, предполагаемым на основании в< личины стандартных потенциалов, и действительным заключается в малой растворимости ul (см. 88). Концентрация восстановленной формы, т. е. Си -ионов, в растворе сильно понижается в результате выпадения в осадок ul, а стандартный потенциал пары u +/ u+ (фактически пары u +/ ul) больше стандартного потенциала пары I2/2I. [c.408]

На основании анализа физико-химических особенностей процесса, а также его аппаратурного оформления можно выделить три основных источника развития аварийных ситуаций увеличение скорости подпитки бромистого этила уменьшение или полное прекращение подачи охлаждающего рассола в обратный холодильник, а также попадание в реакционный объем воды, с которой реактив Гриньяра реагирует очень бурно. В качестве защитных воздействий, способствующих уменьшению скорости реакции и увеличению теплоотвода из реакционного объема могут быть применены отсечка подпитки бромистым этилом прекращение перемешивания подача в рубашку реактора аварийного охладителя сброс избыточной части паров эфира. С учетом этих данных проводилось физическое моделирование процесса на лабораторной установке. [c.202]

Достоверность нахождения определенных изомеров в состоянии равновесия очень важна для понимания геохимической истории нефтей и, в частности, для определения температуры нефтеобразования. Попытки решения обратных задач, т.е. попытки онределения температуры нефтеобразования на основании реальных соотношений изомеров в нефтях, делались неоднократно, начиная с известной работы Фроста [8]. Однако насколько далеко могут зайти эти расчеты, проводимые без учета реального достижения равновесия между изомерами, указывает хотя бы то, что для разных пар изомеров одной и той же нефти были получены различные температуры образования начиная от 100° и кончая 10 000° С [9]. [c.350]

Это чисто ионное уравнение реакции представляет собой процесс, обратный реакции между NH3 и Н2О, который описывается уравнением (15.6). В обратной реакции, описываемой уравнением (15.7), NH4 играет роль донора протона, а ОН -роль акцептора протона. Таким образом, если реакция протекает в одном направлении, HjO играет роль кислоты, а КНз-роль основания. Но в обратной реакции NH4 играет роль кислоты, а ОН -роль основания. Рассмотренный пример показывает, что каждая кислота связана с сопряженным основанием ", которое образуется из этой кислоты в результате отщепления от нее протона. Например, сопряженным основанием для NH4 является NH3, а сопряженным основанием для Н2О является ОН . Точно так же каждое основание имеет сопряженную кислоту, которая образуется из этого основания в результате присоединения к нему протона. Например, Н2О является сопряженной кислотой основания ОН . Кислота и основание, которые, подобно HjO и ОН , отличаются только наличием или отсутствием протона, называются сопряженной кислотно-основной парой. [c.73]

Для оснований эти авторы также различают константу диссоциации ионных пар К = равную обратной величине константы ассоциации = -Касс, [c.311]

Тщательные исследования структуры ДНК привели к выводу, что я-электрониые системы существуют не только в рамках пар оснований. Основания, расположенные в спиральной молекуле ДНК друг над другом, также имеют общие я-электронные системы, поэтому можно говорить о гигантской общей я-системе электронов, распространяющейся на всю частицу нуклеиновой кислоты. Особенно сильно проявляется взаимодействие в тех случаях, когда в правой спирали молекулы ДНК пиримидиновое основание находится над пуриновым (при обратном расположении взаимодействие слабо) несколько меньще взаимодействие оснований одного типа. [c.355]

Раскручивание двойной спирали и пространств, разделение цепей осуществляется при помощи неск. спец. белков. Т. наз. геликазы расплетают короткие участки ДНК, находящиеся непосредственно перед репликац. вилкой. На разделение каждой пары оснований расходуется энергия гидролиза двух молекул АТФ до аденозиндифосфата и фосфата. К каждой из разделившихся цепей присоедшгяется неск. молекул ДНК-связывающих белков, к-рые препятствуют образованию комплементарных пар и обратному воссоединению пепей. Благодаря этому нуклео гиднью последовательности [c.253]

Ключевым катализатором в данном случае является фермент ДНК-лигаза. Его функции заключаются в репарации повреждений одной цепи двуспиральной ДНК, которые находятся между 5 -фосфатом одного остатка и З -гидроксильной группой его соседа (акцептора). Некоторым лигазам необходим в качестве кофактора АТР другие используют для этой цели различные коферменты. Для того, чтобы расположить 5 -фосфат сегмента донора в непосредственной близости с сегментом акцептора, их отжигают с третьим сегментом, матрицей (splint), который имеет подходящую последовательность оснований, комплиментарную фрагментам донора и акцептора в обратной полярности схемы (3), (4) . На практике должны быть завязаны как минимум по четыре водородные связи между парами оснований каждого сегмента. Для устранения неоднозначности в направлениях комплиментации могут быть сделаны два или три таких связывания одновременно, как это показано для образования отрезка дуплекса (4). Этот нуклеотидный блок фактически соответствует остаткам с 30 по 60 Молекулы аланиновой тРНК установленной Холли последовательности (см. разд. 22.1.3.3), [c.179]

Получение генов. Их возможно получать методом химического синтеза, выделением из геномов живых организмов, а также при помоши обратной транскриптазы, которая на соответствующей мРНК кодирует комплементарную ДНК (кДНК). Первый и второй методы имеют ограниченное применение. Химический синтез — достаточно длительная и дорогостоящая процедура. Вьщеление однородных фрагментов ДНК осуществляется при помощи ферментов-рестриктаз, которые узнают и расщепляют ДНК в строго фиксированных точках. Эти ферменты функционально связаны с модифицирующими метилазами следующим образом метилазы осуществляют метилирование в сайтах ДНК, которые атакуются рестриктазами. Метилирование защищает собственную ДНК клетки от неспецифической фрагментации, в то время как чужеродная ДНК немедленно разрушается. В месте разрыва полинуклеотидных цепей образуются, в частности, липкие концы, способные образовывать между собой комплементарные пары оснований. Открытие В. Арбером рестрикции и использование ее для получения генов было отмечено Нобелевской премией. В настоящее время идентифицировано более 500 рестриктаз, причем их название складывается из первой буквы рода микроорганизма и двух пер- [c.499]

Мутации, вызываемые транспозонами. В генетике бактерий все большее значение приобретает метод получения мутаций с помопдью транс-позонов. Транспозоны (Тп) представляют собой короткие двойные цепи ДНК, которые состоят из более чем 2000 пар оснований и обычно обусловливают устойчивость к одному антибиотику, в исключительных случаях-к нескольким, Транспозоны способны перепрыгивать из одного участка генома в другой, в частности из бактериальной хромосомы в плазмиду и обратно таким образом, они могут включаться в различные участки генома (см. разд. 15.3,1), В случае внедрения транспозо-на в какой-либо структурный ген хромосомы нуклеотидная последовательность этого гена будет нарушена и генетическая информация не сможет транслироваться в функционально полноценный полипептид. ВЬзникнет инсерционный мутант. [c.447]

Возможным следствием способности тРНК к образованию третичной структуры является открытое в последние годы существование ряда индивидуальных транспортных РНК в двух отличающихся по конформации и способных к взаимному превращению формах, только одна из которых соответствует биологически активной (нативной) форме. Эти две форА1Ы заметно отличаются друг от друга по гидродинамическим свойствам, причем биологически неактивная (так называемая денатурированная ) форма менее компактна, чем нативная, и только незначительно отличается по гипохромному эффекту. Оценки различий в числе пар оснований между активной и неактивной формами 29 , 297 приводят к величинам 2—5. Условия взаимопревращения этих форм таковы, что позволяют предполагать наличие заметного энергетического барьера между ними. Нативная форма может быть превращена в денатурированную при инкубации с комплексообразующими агентами, такими, как трилон В, даже при 0° С Однако обратный переход при добавлении ионов магния при комнатной температуре протекает медленно и может быть ускорен, если раствор денатурированной тРНК нагреть примерно до 60° С, а затем охладить. Это, возможно, означает, что для перехода денатурированной формы в нативную необходимо разрушить какую-то структуру (возможно, третичную). Аналогичные переходы происходят при изменении pH. Конечно, не исключено также, что при [c.296]

Легко убедиться, что большинство агентов песплшетрично по своему действию и чаще производят реакцию по замещению Г—Ц- А—Т, чем обратную. Поэтому, как правило, мутанты разбиваются на две группы даже в случае простых замещений. Одна группа ревертирует в несколько раз легче, чем вторая. Все дело в том, какие пары оснований должны заменяться при реверсии. Некоторые из мутагенов являются особо селективными, или асимметричными в этом смысле, например гидроксиламин, другие менее избирательны, более симметричны, наиример азотистая кислота, 2-аминопурпн. [c.402]

В работе В. Г. Дашевского и А. Э. Кистера [56, с. 91] потенциальная функция взаимодействия оснований минимизировалась по пяти параметрам — В , 0,, О, с1 и т. Значения этих пяти параметров в кристаллических полинуклеотидах для большинства пар оснований не соответствуют минимуму энергии. Что же касается координат минимумов, то они в значительной степени определяются предположениями, сделанными относительно электростатических взаимодействий и, в частности, зарядов на ато.мах. Помимо этого, D (см. рис. 9.8) в области В-формы очень слабо зависит от взаимодействия оснований и определяется ограничениями на геометрию двойной спирали, накладываемыми рибозо-фосфатным остовом. Впрочем, о роли остова свидетельствует и тот факт, что персистентная длина полинуклеотидов, которая может быть найдена как вторая производная потенциальной энергии по величине, обратной радиусу кривизны (в равновесном положении), получается заниженной на порядок, если учитывать только взаимодействия оснований. Следовательно, за геометрию и свойства нуклеиновых кислот ответственны не только основания, т. е. не только стэкинг-взаимодействия, но и конформационные возможности рибозофосфатного скелета, и потому для предсказания структуры нуклеиновых кислот имеет смысл искать минимум энергии взаимодействия всех атомов полинуклеотидной цепи по всем важнейшим геометрическим параметрам и в первую очередь по ф, 0, 6, (О и X. [c.419]

Влияние влажности на дихроизм полос поглощения в инфракрасных спектрах нуклеиновых кислот и нуклеопротеидов исследовалось рядом авторов 17, 117, 118]. Зависимость обратной степени дихроизма R = ej /e i) полосы при 1672 в спектре дейтерированной пленки МаДПК от содержания воды (DgO) в пленке приведена на рис. 48. Полоса при 1672 связана с валентными колебаниями двойной связи оснований, а переходный момент этой полосы расположен близко к плоскостям пар оснований. На рисунке можно видеть два плато одно в области, где относительная влажность выше 90%, а другое в области относительной влажности между 70 и 80%. Эти плато должны соответствовать двум кристаллическим формам Л-форме при 75%-ной относительной влажности и В-форме при 92%-ной относительной влажности. Из данных рентгенографического анализа [119] следует, что в В-форме плоскости пар оснований перпендикулярны спиральной оси, тогда как в Л-форме они расположены под углом 20°. Наблюдаемая степень дихроизма для плоскостных колебаний оснований В-формы равна 1/5,1, тогда как для Л-формы она равна 1/3,8. Из данных по степени дихроизма [c.86]

Экспериментальные результаты работ различных авторов сведены в таблицы и графики зависимости логарифма давления пара от обратного значения температуры. На основании наиболее надежных данных по давлениям пара и термодинамическим функциялс с помощью элоктро гной машины рассчитаны коэффициенты уравнений, связывающих давле1гие пара и температуру, и значения давлений пара через определенные интервалы температур. Результаты расчетов сведены в таблицы. [c.3]

Инициация. Белки гер, или ферменты хеликазы (лат. helix — спираль), расплетают короткие участки ДНК. На разделение каждой пары оснований расходуется энергия гидролиза двух молекул АТФ до АДФ и неорганического фосфата. К каждой из разделившихся цепей прочно присоединяются несколько молекул ДНК-связывающе-го белка, которые препятствуют образованию комплементарных пар и обратному воссоединению цепей. Благодаря этому нуклеотидные последовательности цепей ДНК оказываются доступными для репликативной системы. Быстрое раскручивание цепей родительской ДНК в процессе репликации (4500 об/мин) компенсируется биологическим шарниром — ферментом гиразой (семейство топоизо-мераз), который обеспечивает кратковременный разрыв одной из цепей ДНК, быстро восстанавливаемый с высокой точностью после [c.302]

Отрицательные супервитки закручивают ДНК вокруг ее оси против часовой стрелки-в направлении, обратном правосторонней двойной спирали. Это в принципе означает, что напряжение скручивания можно частично ослабить, регулируя саму структуру двойной спирали. При этом может получиться форма с меньшим углом вращения на пару оснований, а местами может даже нарушиться спаривание оснований. ДНК с отрицательными супервитками называют недокрученной (ипс1ег 0ипс1). Крайним случаем служит локальный переход правосторонней спирали в левостороннюю. [c.32]

Экзонуклеолитическая активность проявляется в направлении, обратном синтезу ДНК. Действие фермента, исправляющего ошибки, схематически показано на рис. 32.8. На стадии роста цепи нуклеотид предшественник занимает положение в конце растущей цепи. Формируется связь. Фермент передвигается дальше на одну пару оснований, готовую к спариванию со следующим нуклеотидом-предшественником. Если происходит ошибочное спаривание, фермент перемещается в обратном направлении и вырезает последнее добавленное основание, на место которого может присоединиться правильный нуклеотид-предшественник. Такого рода активность была наиболее полно охарактеризована у фермента ДНК-полимеразы I, однако вероятно, что другие ДНК-полимеразы прокариот функционируют аналогично. [c.415]

Если бактериальную ДНК подвергнуть тепловой денатурации указанным образом, а затем идентифицировать фракцию реас-социировавшей после отжига двухцепочеч-ной ДНК по исходной концентрации молекул Со и времени реакции (I), то получается линейная зависимость (на логарифмическом графике этому соответствуют 8-образ-ная кривая, Сд1-кривая) (рис. 2.78). Если провести такой эксперимент с фрагментами человеческой ДНК длиной примерно в 600 пар оснований, то кривая будет совершенно другая. Сразу же после начала отжига обнаруживается небольшой процент реассо-циировавшей двухцепочечной ДНК. Крутой наклон кривой показывает, что следующая фракция ДНК отжигается примерно в 50000 раз быстрее, чем бактериальная ДНК еще одна фракция ДНК отжигается быстрее бактериальной в 10-1000 раз. Остальная ДНК (% 50%) характеризуется такой же кинетикой, как и бактериальная. Эти данные можно объяснять следующим образом небольшая часть ДНК человека имеет области, в которых комплементарные последовательности располагаются на одной и той же цепи, но в обратном порядке (палиндром). Эта ДНК может реассоци-ировать очень быстро, просто складываясь вместе. Другая фракция содержит повторяющиеся последовательности, которые реассоциируют, образуя двухцепочечную [c.115]

В заключение отметим, что трудно судить, какой механизм транзиций является основным при возникновении спонтанных мутаций у данного организма. В настоящее время удается лишь определить, к какому типу — транзиции, трансверсии, делеции, вставки — относятся точечные мутации, а также найти их относительные частоты (так, показано [59], что для системы Е. oli транзиции Г — Ц А — Т и А —Т Г —Ц составляют соответственно 19—30 и 42%, а трансверсии — больше 12%). Однако решить даже эту задачу относительно легко только в особых случаях, когда генетический факюр или специфические условия среды в сильной степени влияют на этот процесс. Обычно можно исключить некоторые механизмы как невероятные, что уда-гтся сделать двумя путями можно сопоставить генетическую эбласть и распределение частот прямых спонтанных мутаций областью и распределением частот мутаций, индуцирован-iHx мутагенами с известными свойствами, или можно инду-хировать различными мутагенами обратные мутации у спонтанных и индуцированных мутантов и этим путем определить <арактер соответствующих изменений пар оснований. [c.29]

Рассмотрим кинетику плавления самокомплементарных или комплементарных олигонуклеотидных двойных спиралей. Для простоты будем считать, что с заметной вероятностью могут сушествовать только состояния с одним непрерывным спиральным участком, что цепи не смещены друг относительно друга и что имеется лишь один центр нуклеации. На рис. 23.12 схематически изображена наиболее общая модель, удовлетворяющая таким условиям. В ней учитывается, что константы скоростей прямой и обратной реакции, соответствующие образованию последовательных пар оснований, могут отличаться друг от друга. Для системы, состоящей из я пар оснований, в рамках такой модели должна существовать (и — 1) постоянная времени релаксации. [c.336]

М. Рекорд и Б. Зимм (М. Re ord, В. Zimm, 1972) пришли к заключению, что сложность наблюдаемого кинетического процесса (рис. 23.17) является следствием изменения во времени параметра, определяющего скорость расплетания. Поэтому не имеет смысла разлагать наблюдаемые кинетические кривые на произвольное число экспонент. Параметр, определяющий скорость процесса, имеет следующие свойства. Он становится постоянным, равным к , при больших временах. При этом процесс образования новых распла ленных участков уже завершен, и происходит только разрастание ранее образовавшихся участков. Константа скорости приблизительно в 20 раз меньше, чем начальная скорость. Она значительно меньше для температурных скачков, приводящих к полной денатурации, чем для небольших температурных возмущений, приводящих к денатурации лишь на 25-50%. Далее, для фиксированной конечной степени расплетания величина обратно пропорциональна молекулярной массе ДНК. Эти факты очень важны, поскольку они означают, что скорость расплетания пары оснований по какой-то причине сильно зависит от длины ДНК и от того, в каком состоянии находятся другие участки ДНК — в спиральном или клубкообразном. [c.345]

По влиянию на экспрессию генов мутации разделяют на две категории мутации типа замен пар оснований и типа сдвига рамки считывания (й-атезЫЛ). Последние представляют собой делеции или вставки нуклеотидов, число которых не кратно трем, что связано с триплетностью генетического кода. Первичную мутацию иногда называют прямой мутацией, а мутацию, восстанавливающую исходную структуру гена, - обратной мутацией, или реверсией. Возврат к исходному фенотипу у мутантного организма вследствие восстановления функции мутантного гена нередко происходит не за счет истинной реверсии, а вследствие мутации в другой части того же самого гена или даже другого неаллельного гена. В этом случае возвратную мутацию называют супрессорной. Молекулярно-генетические механизмы, благодаря которым происходит супрессия мутантного фенотипа, весьма разнообразны. [c.278]

Имеющиеся профаммы осуществляют также поиск характерных особенностей последовательностей, включая прямые (рис. 7.17) и обратные (рис. 7.18) повторы. Выявляются не только полностью совпадающие сегменты, но и сегменты с той или иной степенью несовпацения для этого допускаются определенные отклонения параметров, заложенных в профамму, от фиюзированного значения. В примере, представленном на рис. 7.17, перечислены все повторы длиной не менее щести пар оснований и гомологичные не менее чем на 75%. Предполагается, что максимальный размер образующихся петель равен двум основаниям. [c.330]

Ферменты рестрикции используются для расщепления молекул ДНК на определенные фрагменты, которые более удобны для анализа и манипулирования, чем исходная молекула. Например, E oRI расщепляет кольцевую двухцепочечную ДНК вируса SV-40 длиной 5,1 кЬ только в одном месте, Пра - в четырех местах и Hind - в 11 местах. Кусок ДНК, образованный одним ферментом рестрикции, можно специфически расщепить на более мелкие фрагменты с помощью другого фермента. Используя несколько ферментов рестрикции, можно картировать хромосомы (разд. 31.8). Более того, набор фрагментов, полученных с помощью ферментов рестрикции, может служить своего рода отпечатком пальца для соответствующей молекулы ДНК. Небольшие различия между сходными молекулами ДНК можно легко выявить с помощью электрофоретического разделения их рестрикционных фрагментов. Для каждого данного геля электрофоретическая подвижность фрагмента ДНК обратно пропорциональна логарифму числа пар оснований (до определенного предела длины фрагментов). Для разделения фрагментов ДНК длиной до 1000 пар оснований используют полиакриламидный гель, а для [c.38]

Для полной оценки структурных характеристик контактных масс необходимо знать объем пор ил средний радиус и распределение объема пор по размерам. Зная размеры пор, можно при заданных условиях катализа определить наличие (или отсутствие) и степень внутриднффузионного торможения, а также степень использования внутренней поверхности катализатора, величина которой обратна размерам пор. Среди множества различных методов широкое применение нашел адсорбционный метод, который основан на том, что капиллярная конденсация в узких порах происходит при давлениях, меньших, чем давление насыщенного пара адсорбата [67, 68]. Снижение давления паров над цилиндрическим столбом жидкости, находящейся в поре (капилляре) с радиусом г, выражается уравнением Кельвина [c.301]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология