Биологические иодида

Теоретические основы кинетических методов анализа излагаются в монографии [304]. Обзорные данные об определении бромид- и иодид-ионов в биологических материалах содержатся в работе [258]. [c.116]

На таком же слое силикагеля возможно частичное разделение этих биологически активных веществ при разделении водой (ср. рис. 115). Этот растворитель передвигается примерно с такой же скоростью, что и упомянутые выше (см. рис. 116), и к тому же позволяет осуществить хроматографический анализ сразу после нанесения водного экстракта. В табл. 34 представлены сравнительные результаты прямой идентификации водорастворимых витаминов с помощью света различных длин волн и приблизительные пределы обнаружения их на необработанной реактивом хроматограмме. Эти соединения можно обнаружить так же, как упомянуто выше, реактивами для опрыскивания, в частности после обработки хлором, раствором о-толидин — иодид [c.237]

Дополнительные осложнения при введении J в меченые молекулы (сывороточный альбумин, изотонический раствор иодида натрия и др.) часто возникают вследствие необходимости проводить весь процесс в асептических условиях и затрачивать время н биологическое исследование готового препарата. [c.701]

Диэтилдитиокарбамат натрия, который был применен при определении цинка в биологических материалах [881], не является эффективным маскирующим агентом, так как понижает интенсивность окраски дитизоната цинка в результате образования бесцветного диэтилдитиокарбамата цинка. Тиосульфат натрия при pH 4—5,5 предотвращает экстракцию меди, ртути, серебра, золота, висмута, свинца и кадмия [95, 305] кобальт можно замаскировать диметилглиоксимом [474], кадмий — иодидом и тиомочевиной [1276]. [c.222]

Опубликованы результаты практического использования иодидного электрода. Определение иодида в продуктах питания и растениях с иодидным электродом значительно экспресснее стандартного метода его определения [51]. Электрод использовали для анализа органических и биологических объектов для определения 10 —10 г/мл иодидов [52]. Высокая селективность иодидного электрода позволяет использовать его для прямого определения иодида в минеральных водах [53]. Интересной областью использования элект присутствии иодата [c.392]

Описано определение иодид-иона в крови и других биологических объектах и в морской воде . Возможно потенциометрическое измерение скорости реакции. [c.169]

При действии на хлорид таллия иод-иодидного раствора образуется ТИз. Последний идентифицируется по желтой окраске. Метод применяют для обнаружения хлорид-иона в биологических материалах [485]. Бромид- и иодид-ионы также осаждаются нитратом таллия(1). [c.21]

Вследствие того что в обоих электродах роль активного компонента мембраны выполняет иодид серебра, ионы, способные образовать нерастворимые соединения с серебром, мешают определению амигдалина, так как на поверхности электрода выпадает нерастворимый осадок. Вещества, способные восстанавливать ионы серебра, также мешают проведению анализа. Поскольку гелевая мембрана чисто механически наложена непосредственно на чувствительный элемент цианидного электрода, его поверхность можно быстро очистить и покрыть свежей мембраной, если это необходимо. Некоторые переходные и тяжелые металлы образуют прочные цианидные комплексы и поэтому также могут влиять на точность анализа. Такие металлы, как медь, кадмий и ртуть, могут дезактивировать ферменты. Однако обычные компоненты биологических проб и часто встречающиеся примеси как например, хлорид- и бромид-ионы можно не учитывать при проведении анализа. [c.180]

Рассчитать концентрацию иодида в биологическом материале (мг/кг) по вариантам [c.292]

Биологические испытания Бромиды и соединения брома Запах Иодиды [c.543]

Задача определения иода в виде иодидов в образцах биологического происхождения в количествах порядка нескольких микрограммов связана со значительными трудностями, так как почти во всех таких образцах концентрация этого элемента очень низка. [c.218]

Содержание хлоридов и иодидов в крови и в биологических жидкостях также определяли этим методом . [c.406]

Несмотря на то что среди колебательных систем реакция Брея — Либавски начала исследоваться намного раньше других, нельзя считать ее полностью изученной. Между тем полное понимание этой реакции может пролить свет на периодическое взаимодействие пероксида водорода и иодид-ионов в биологических системах. Ниже в этом подразделе сгруппированы последние исследования указанной реакции. [c.91]

Метод движущейся границы использовался для изучения лабильных комплексов самых различных типов от простых неорганических ионов до форм, образованных взаимодействием биологических макромолекул. Например, были получены константы устойчивости иодида кадмия [1], кональбумина — лизо-зима [23] и систем овальбумин — нуклеиновая кислота [49]. Метод движущейся границы также применялся для определения констант ионизации аминокислот [75]. Электрохроматографиче-ские данные можно обрабатывать аналогичным образом 63а]. Значения р для ряда неорганических кислот были рассчитаны по известным значениям электропроводности и чисел переноса [42, 63]. [c.379]

Используются различные модификации колориметрического метода, основанные на поглощении паров Р. водным раствором иода и иодида калия с последующим определением аниона (Hgl4) по интенсивности желто-розовой окраски осадка комплексной соли u2(Hgl4) на взаимодействии Р. с иодом, хлоридом меди и сульфитом натрия, чувствительность метода 0,02 мкг в анализируемом объеме раствора, определению ме-щает железо [38] методы с применением антипирина или твердых сорбентов [39]. Концентрации паров и аэрозолей хлорида Р. можно установить колориметрическим методом, основанным на определении иона Р. по розовой окраске комплексной соли чувствительность метода 0,5 мкг в определяемом объеме определению мещают Р. и Р.-органические соединения ( Техн. условия... ). В объектах окружающей среды и в биологических материалах. Обзоры методов определения Р.— см. [9] Дмитриев, Тарасова Дубинская Кри< терии сан.-гиг. состояния окружающей среды . [c.185]

Анализ с помощью изотопного разбавления используют в тех случаях, когда полное разделение химически подобных веществ оказывается затруднительным или невозможным, а выделение в чистом виде некоторой доли анализируемого вещества осуществляется сравнительно просто. Так, при анализе растворов, содержащих Вг - и 1 -ионы, количественное разделение этих галогенов связано с большими трудностями, а выделение части иодид-ионов, не содержащих примеси бромид-ионов, можно провести прилива-нием к аммиачному раствору Вг - и 1 -ионов количества раствора AgNOз, недостаточного для полного осаждения иода. Достоинством метода изотопного разбавления является также и то, что ири его осуществлении можно пренебречь любыми потерями вещества в ходе анализа за счет неполноты выделения в процессе очистки и т. д. Это особнно важно при анализе биологических объектов, когда нет уверенности, что выделенная фракция достаточно чиста. Показате- [c.211]

Экстракция с помощью NaDD была применена для определения меди в никеле [549, 824], растворах солей никеля, кобальта и других металлов [481, 795], кадмии 359, 521, 615], цинке [359, 521, 1189], олове [411], титане и цирконии [1132], тантале [387 , селене и селениде кадмия [995, 1363[, теллуре [714], хро.ме [1139] и сурьме высокой чистоты [811] и других металлах [798, 1431]. Этот метод был использован также для определения меди в сплавах [647], рудах [795], едких щелочах [470, 1409], щелочных металлах высокой чистоты [117], поваренной соли [1537], иодиде натрия [1219], воде [469, 718, 1014], почвах [171], красном фосфоре [1469], растениях [303] и других биологических материалах [515]. [c.235]

В последние годы для определения следов мышьяка применяют активационный анализ. Недавно предложен метод определения мышьяка в биологических материалах. В случае присутствия сурьмы проводят предварительную экстракцию иодидиых комплексов толуолом из растворов, содержащих H2SO4 и KI [91]. Наиболее интересный пример использования активационного анализа — определение мышьяка в волосах Наполеона. Анализ выполнен, чтобы установить, не погиб ли Наполеон вследствие отравления мышьяком. Это интересное исследование иллюстрирует значение анализа в судебной медицине [92, 93]. [c.27]

Полярографию использовали [154] для определения хлорида в биологических материалах после осаждения протеинов суль-фосалицнловой кислотой. Сульфосалициловая кислота является также подходящим фоновым электролитом для проведения анализа. Гороховский и Измайлова [155] определяли хлорид, бромид и иодид, используя серебряный электрод специальной конструкции, что позволило получать воспроизводимые осциллополяро-граммы для концентрации хлоридов 10 —10 М. Для определе- [c.318]

Комплексонометрическое определение хлорид-ионов основано на их осаждении в виде Ag l, растворении осадка в аммиачном растворе K2Ni( N)4. Серебро при этом переходит в комплексный ион [Ag( N)2] , освободившийся ион никеля(11) титруют раствором ЭДТА в присутствии мурексида (метод Флашка). Метод использован для определения хлорид-ионов в смеси с цианид-[441, 541, 542], иодид-ионами [540], в вине [852], жидком броме [821], биологических материалах [516] и ряде других объектов [7, 441, 728]. [c.46]

Определению хлорид-ионов по окраске хлораниловой кислоты мешают бромид-, иодид-, цианид-, роданид-, фторид-, иодат-, фосфат-ионы. Сульфат-ион, а также небольшие количества ионов Ре(1П) и Си(11) не мешают [422, 434]. Метод рекомендуют для анализа биологических жидкостей [422, 657, 957]. Он был использован для определения хлоридов в органических соединениях [762]. [c.56]

Для исключения или снижения помех от галогенидных ионов при определении хлорид-ионов с помощью ионселективных электродов предложено добавлять в анализируемый раствор комплексы ионов Hg(II), Ag(I), РЬ(П), Bi(III), u(II) или d(H) с этилендиа-мином, н-бутиламином, триэтилентриамином, этилендиаминтетрауксусной кислотой, циклогександиаминтетрауксусной кислотой, этиленгликоль-быс-(2-аминоэтиловым эфиром) тетрауксусной кислоты или нитрилотриуксусной кислотой. Хорошие результаты получаются при использовании комплекса Hg(II) с этилендиаминтетрауксусной кислотой при pH 6,5 [739]. Эффективно отделенно бромид- и иодид-ионов при определении хлорид-ионов с хлорсе-лективным электродом на анионообменной колонке, заполненной анионитом Дауэкс-1Х10 [403] или Дауэкс-1Х8 [615] в NO3-форме. Отделение иодид-ионов возможно экстракцией после окисления их до Ja нитритом натрия в кислой среде [615]. Протеины не мешают потенциометрическому определению хлорид-ионов с мембранным хлорсеребряным электродом этот электрод перспективен для определения хлорид-ионов в биологических объектах [871]. [c.86]

При описанной выше методике мышьяк окисляется до мышьяковой кислоты, которая нелетуча и может быть определена одним из известньпх способов. Если исключить определения следов мышьяка, применяемые главным образам при анализе пищевых продуктов и биологических веществ, то основные методы микро- и полумикроопределения мышьяка сводятся либо осаждению арсената магния-аммоиия, (который прокаливают до получения пироарсената М 2А5207 [412, 414] и последний взвешивают), либо к непосредственному иодометрическому определению мышьяковой кислоты [726]. Последняя методика общепринята благодаря быстроте и простоте ее. Она основана на добавке иодида калия к раствору, полученному после сожжения, и титровании выделившегося иода [c.140]

Навеску биологического материала массой т г после минерализации и соответствующей обработки растворили в 25,00 мл воды. В две колбы вместимостью 25,00 мл поместили по 5,00 мл полученного раствора, в одну из них добавили 1,00 мл стандартного раствора иодида с концентрацией 0,5 мкг/мл. В обе колбы при одинаковых условиях добавили растворы реагентов (КЮз, NaзAsOз, цитратный буфер), объемы довели до метки водой и из полярографических данных определили время окончания реакции в каждой колбе X и 1х+ст- [c.292]

Метод биологического восстановления может быть использован также для очистки сточных вод от сульфатов, хроматов, бихрома-тов, хлоратов, перхлоратов, иодатов и других кислородсодержащих анионов [7, с. 183]. В процессе очистки броматы и иодаты восстанавливаются до бромидов и иодидов, сульфаты — до сероводорода. Скорость восстановления веществ при оптимальной температуре 33 °С и pH 7—7,5, мг Оа на 1 г беззольного вещества ила за 1 ч [c.29]

Метод определения сурьмы в биологических материалах основан на том, что сурьма (Ш) с раствором, содержащим по 10% серной кислоты и иодида калия, образует желтый комплекс KSbJ4, котор ЫЙ можно оп р делить колориметрически (стр. 469). [c.472]

Определение пероксидных соединений липидов в биологических материалах осуществляют косвенным иодо-метрическим методом, основанным на обесцвечивании под действием иода, выделяющегося при реакции пероксидных соединений с иодид-ионом, тиофлуоресцеина [65]. Измеряют поглощение при 590 нм, мольный коэффициент поглощения равен 25 ООО. [c.40]

В зависимости от химического состава ПАВ мицеллы могут быть неионными, катионными, анионными или амфотерными. Физические свойства ряда детергентов приведены в табл. 1. Наиболее широко применяемые неионные детергенты содержат полиоксиэти-леновую или полиоксипропиленовую цепь, связанную, как правило, со спиртами или фенолами имеющими длинную углеводородную цепь. К неионным ПАВ относятся также эфиры сахаров, жирные алканоламины, жирные окиси аминов. Все эти вещества довольно трудно получить в виде индивидуальных химических соединений, однако отсутствие ионов в мицеллах, которые они образуют, делает их особенно полезными в качестве детергентов и эмульгаторов и позволяет упростить теоретическое рассмотрение структуры таких мицелл. ККМ неионных ПАВ обычно в 100 раз меньше, чем ККМ ионогенных детергентов, содержащих сравнимые по величине гидрофобные группы. Поэтому масса мицелл неионных детергентов существенно больше, чем масса мицелл ионогенных ПАВ. Анионные детергенты обычно содержат длинную углеводородную цепь и карбоксилатную, сульфатную или сульфонатную группу. В качестве противоионов выступают натрий, калий, литий или водород. Длинноцепочечные четвертичные амины или пиридипы с бромид-, хлорид- или иодид-ионом в качестве противоиона образуют группу катионных ПАВ. Степень нейтрализации заряда противоионами в слое Штерна у катионных мицелл несколько меньше (это связано с некоторым экранированием заряда четвертичной аммониевой группы), поэтому их структура более компактна по сравнению с анионными мицеллами. Катионные мицеллы обладают несколько большей солюбилизующей способностью в отношении неполярных субстратов, чем анионные мицеллы, образованные ПАВ того же молекулярного веса. Амфотерные мицеллы образованы цвиттер-ионными молекулами, у которых тип диссоциации определяется pH раствора [45, 46]. Природные фосфатиды и липиды, такие, как лецитин и соли желчных кислот, также образуют мицеллы и определяют многие важные биологические функции in vivo и in vitro [20, 47—51]. [c.228]

Дитиокарбаматы (фербам, манеб, пабам, тиурам, цирам и цинеб) разделяли на две группы на бумаге из стеклянного волокна, пропитанной формамидом. В качестве подвижных фаз применяли хлороформ, петролейный эфир и смесь н-гексана и хлороформа. Соединения обнаруживали при опрыскивании бумаги водным раствором азида натрия (3 вес. % в объеме) с последующей обработкой бумаги парами иода и немедленным опрыскиванием раствором растворимого крахмала (1 вес. % в объеме). Азид натрия и иод реагируют очень медленно с образованием иодида натрия и газообразного азота. Эта реакция ускоряется в присутствии тиокетонов, например дитпокарбаматов. При опрыскивании крахмалом избыток иода окрапшвает фон в темно-синий цвет, тогда как иод на поверхности, занятой фунгицидом, уже связан и эти участки остаются белыми. Реакция проста и чувствительна, но для биологических жидкостей не применялась. [c.85]

Пептапласт можно использовать в качестве конструкционного материала для аппаратуры, подвергающейся воздействию растворов иодида и бромида калия различных концентраций с примесью иода при температуре до 70 С [45, с. 18], кислорода и щелочи при температуре 100 °С [45, с. 27], морской воды [45, с. 68], молочной кислоты и технологических сред производства различных пищевых продуктов [45, с. 21 194] и витаминов [45, с. 82]. В последних случаях важную роль играет биологическая нейтральность пентапласта в сочетании с определенными типами термостабилизаторов [45, с. 56 194]. [c.62]

Исследования показали, что температура, кислотность, концентрация иодида оказывают влияние на результаты титрования меркаптанов в биологических веществах (например, цистеина, глу-татиона зо-з2 Возможно, это объясняется присутствием других веществ, поскольку опыт показал, что чистые образцы меркаптанов могут быть оттитрованы без особых затруднений. [c.286]

Описано много случаев применения соосаждения для выделения следов элементов при содер/каниях порядка 10" —10" %. Семнадцать элементов (А1, Со, Сг, Си, Ге, Оа, Ое, Мп, Т1, N1, V, В1, РЬ, Мо, d, 2п и Ве), содержащихся в природной воде, осаждали оксихинолином, таннином и тио-налидом и определяли методом эмиссионной спектроскопии при содержаниях до 10" % [107]. Примерно 7-10" % золота в морской воде осаждали сокри-сталлизацией с 2-меркаптобензимидазолом при pH 1 и определяли спектрофотометрически [108]. Также 3-10" % урана в морской воде осаждали сокристаллизацией с сс-нитрозо-р-нафтолом при pH 7—8 и определяли флуо-рометрически [109]. Сокристаллизацию с тионалидом применяли для концентрирования серебра в морской воде при содержаниях менее 10" % [110]. Для концентрирования молибдена из морской воды использовали сокристаллизацию с а-бензоиноксимом [111]. Си, Ре, РЬ, Мп, N1, 8п и 2п в хлориде, бромиде, иодиде и нитрате калия, хлориде, бромиде и нитрате натрия осаждали оксихинолином и тионалидом из горячего раствора при pH 9 в присутствии алюминия в качестве элемента-носителя и определяли затем эмиссионной спектроскопией при содержаниях до 10" % [112]. Следы Сг, Со, N1, 2x1, Ag, V, Мо, Ве, Ое, Оа, Зп, РЬ, Аи и Т1 в различных биологических образцах определяли методом эмиссионной спектрографии после озоления образцов и отделения от щелочных и щелочноземельных металлов, фосфатов, сульфатов и галогенидов соосаждением с оксихинолином, таннином и тионалидом при pH 5,2, используя алюминий в качестве элемента-носителя [ИЗ—115]. Подобные методы описаны таюке в работах [116, 117]. [c.101]

Тот же общий подход, основанный на концепции силы анионного поля, был использован Эйзенманом для объяснения сродства различных стеклянных электродов к катионам и распространен затем на ряд химических и биологических систем, включая ионообменные смолы, образование ионных пар и взаимодействие с мембранами [39]. Относительную шкалу энергий взаимодействия различных катионов с анионами переменной силы поля можно построить для галогенных солей эмпирически, сравнивая свободные энергии гидратации со свободными энергиями образования кристаллических галогенидов щелочных металлов. Получающиеся при этом результаты совпадают с зависимостями, представленными на рис. 7, и показывают, что для больших анионов, таких, как иодид, сила взаимодействия уменьшается в ряду Сз" >ВЬ+ >К >Ма в то время как для анионов небольшого размера, таких, как фторид, соответствующий ряд имеет вид >-Na >КЬ+ >Сз . При промежуточных значениях силы поля получают промежуточные ряды, которые согласуются с наблюдаемыми последовательностями специфичност1т стеклянных электродов. Аналогичные сопоставления, основанные на энергиях галогенидов щелочных металлов в виде двухатомного газа, их коэффициентах активности в концентрированном водном растворе и на вычисленных энергиях электростатического взаимодействия как функции ионных радиусов, приводят по существу к тем же результатам. Основность, т. е. энергия взаимодействия с протоном, может рассматриваться как особый случай ионного взаимодействия и лиганды, обладающие высокой основностью, такие, как 0]г1 , также имеют большую силу анионного поля и предпочтительно взаимодействуют с другими небольшими катионами, такими, как и Ка . [c.287]