Формальдегид, реакции с белками

Недавно Блюм напечатал заметку, в которой он сообщает об открытии нового производного белка, получающегося при взаимодействии формальдегида с некоторыми растворимыми белками. Результаты, опубликованные Блюмом, значительно менее полны, чем имеющиеся у меня уже в течение некоторого времени. Нри этих условиях я вынужден, для того чтобы оставить за собой право продолжать начатые опыты, опубликовать мои данные, хотя я и не могу еще в настоящее время сделать никаких точных выводов относительно природы реакции, происходящей между формальдегидом и белком. [c.175]

Реакции белков с другими альдегидами, например с ацеталь-дегидом, или реакция их с глюкозой и другими сахарами (так называемая реакция побурения ) в настоящее время широко исследуются, так как они имеют важное значение в пищевой промышленности. Подобно формальдегиду, ацетальдегид может вступать в реакцию с первичными амино- и индольными группами. Однако эти реакции белков выходят за пределы круга вопросов, рассматриваемых в этой статье. [c.313]

Реакции формальдегида с амидными группами белков или полиамидов приводят к образованию ковалентных поперечных химических связей в этих полимерах и используются для так называемого процесса дубления белков и кож [c.300]

Вулканическая деятельность во всех ее проявлениях играла в этом отношении выдающуюся роль. Обогащая обширные зоны поверхности, в том числе и те, которые граничили с водоемами, соединениями металлов, вулканы способствовали развитию каталитических реакций. Вещества, выбрасываемые во время извержений, получаются в активном состоянии это, например, оксид кремния (IV) в форме высокопористой массы —пемзы, образующейся при застывании кислых лав (ее пористость достигает 80%) и др. Другой важной породой, которая могла функционировать и как адсорбент, фиксирующий на своей поверхности разнообразные частицы, и как катализатор, является глина. Глины относят к числу древнейших пород. Глинистые минералы (например, монтмориллонит) имеют пластинчатое строение силикатные слои, максимальное расстояние между которыми равно приблизительно 1,4 нм, разделены слоями молекул воды толщина этих слоев может изменяться в широких пределах. Глины обратимо связывают катионы и таким образом могут служить в качестве регулятора солевого состава окружающей водной среды. Скопление органических веществ на поверхности глинистых минералов, возможно, сыграло решающую роль в появлении предбиологических структур и возникновении жизни (Д. Бернал). По Акабори, из формальдегида, аммиака и циановодорода в абиогенную эру образовался амино-ацетонитрил, который подвергался гидролизу и полимеризации на поверхности глин, образуя вещества, близкие к белкам. Акабори показал, что нагревание аминоацетонитрила с кислой глиной ведет к появлению продукта, дающего биуретовую реакцию (реакция на белок). Твердые карбонаты, которые входят в большом количестве в состав земной коры, вероятно, катализировали процесс образования углеводов. Гидроксид кальция также может служить катализатором в таких процессах. Исходным веществом для синтеза углеводов служит формальдегид. Прямым опытом доказано (Г. Эйлер и А. Эйлер), что гликолевый альдегид и пентозы получаются из формальдегида в присутствии карбоната кальция. Схему образования углеводов из простейших соединений предложил М. Кальвин. [c.377]

Первые опыты синтеза соединений, подобных белкам, были проведены выдающимся советским биохимиком А. Н. Бахом. Как и в опытах А. М. Бутлерова, впервые получившего при взаимодействии формальдегида с известковой водой смесь сахароподобных веществ (стр. 296 в опытах А. Н. Баха при длительном хранении водного раствора формальдегида с синильной кислотой образовалась смесь веществ с большим молекулярным весом, дававших некоторые реакции, свойственные белкам. [c.392]

Процесс дубления является сложным физико-химическим процессом. Появление значительной прочности и других указанных свойств объясняется, по-видимому, образованием поперечных связей (мостиков) между полипептидными цепями молекул белка за счет взаимодействия между формальдегидом и аминогруппами молекул белка. Механизм образования этих связей еще не представляется достаточно ясным. По-видимому, имеют местО следующие реакции [c.233]

Формальдегид также способен образовывать метиленовые мостики между аминогруппой и какой-либо другой, содержащей лабильные атомы водорода (имидазольные, гуанидиновые, ин-дольные, SH- и ОН-группы). Эта реакция широко применяется для получения токсоидов и других модифицированных белков (см. гл. III). [c.57]

Токсическое действие формалина на возбудителей заболеваний обусловлено необратимыми реакциями формальдегида с аминогруппами веществ плазмы. При этом происходят осаждение белков и изменение нормального физико-химического состояния плазмы. [c.243]

С помощью некоторых бактерий, усваивающих водород, удается вовлечь в реакцию кислород и атмосферный, диоксид углерода, при этом получаются вода и формальдегид. Помимо того, что эти бактерии синтезируют очень нужный химической промышленности формальдегид и очищают воздух от диоксида углерода, они сами наполовину состоят из полноценного белка и могут быть использованы в кормовых целях. Микробиологические процессы широко применяются в гидролизной промышленности при сбраживании сахаристых веществ в получении спиртов, виноделии, изготовлении кормовых дрожжей, в сыроварении, при обработке кож и т. п. [c.14]

Гомогенные каталитические реакции широко распространены в природе. Синтез белков и обмен веществ в биологических объектах совершается в присутствии биокатализаторов — ферментов. Примером промышленных гомогенных каталитических процессов могут служить реакции этерификации и омыления сложных эфиров, окисления метана до формальдегида с помощью оксидов азота, алкилирования парафинов или бензола олефинами в присутствии трифторида бора или фтороводорода, некоторые реакции гидратации, окисления и т. п. [c.135]

Реакция взаимодействия макромолекул белка с формальдегидом протекает по следующей схе.ме [c.626]

Пикриновая кислота и таннин входят в состав растворов и мазей, применяемых для лечения ожогов. Они осаждают белки плазмы и образуют защитный слой над ожогом, тем самым ускоряя заживление. Некоторые белки осаждаются красителями и дают с ними цветные комплексы. Эти реакции применяются в гистологических и бактериологических исследованиях. Красители, например генциан фиолетовый, могут служить эффективными бактерицидными средствами. Они осаждают белки бактерий, не причиняя вреда тканям. Формальдегид, обладающий бактерицидными свойствами и осаждающий белки, используют для предохранения тканей от разложения. [c.294]

При проведении этих опытов я обнаружил, что белок, обработанный формальдегидом, теряет способность коагулировать при нагревании.Вслед-ствие несоверп1енства регулировки температура бани случайно поднялась до 92° вместо 50°. Полагая, что опыт погиб вследствие коагуляции белка, я извлек одну из колб и с удивлением констатировал, что раствор остался неизменным. Тогда я вскипятил несколько миллилитров этого раствора в пробирке,— белок не коагулировал. Проверка показала мне, что жидкость давала все реакции белка фиолетовое окрашивание с сернокислой медью и едким кали (биуретовая реакция), красное окрашивание реактива Миллона, желтое окрашивание концентрированной азотной кислотой и т. д. Первая пришедшая мне в голову мысль была, что при длительном нагревании в присутствии формальдегида белок превратился в пептон. Это превращение было мало вероятно, но все же возможно. Однако при подкислении жидкости уксусной кислотой и прибавлении раствора сернокислого магния образовался очень объемистый белый осадок. Как известно, пептоны в этих условиях осадка не дают. [c.176]

Химическая модификация белков производилась в трех направлениях 1) изменения активности или физических свойств белков, с тем чтобы сделать их более пригодными для использования в медицине или в промышленности 2) установления структуры групп, обусловливающих биологическое действие белков 3) получения специфических производных белков для сравнительного исследования физических или биологических свойств неизмененного белка, в частности для иммунологических исследований. Первая из этих трех задач — практическая — имеет большое историческое значение и продолжает играть важную роль при приготовлении биологических препаратов и в технологии получения белков. Некоторые вопросы, касающиеся приготовления и свойств токсинов и вакцин, будут рассмотрены в отдельных статьях следующих томов настоящего сборника. Данные о применении для указанной цели формальдегида суммированы в обзоре Френча и Эдсалла [1]. Образование поперечных связей в белковых веществах в промышленных условиях рассмотрено Бьоркстеном [2]. В обзоре Густавсона [3] изложены результаты исследования связи между характером белков и химическими процессами при дублении. Процессы, используемые для видоизменения белков с целью их промышленного применения, в принципе сходны с описываемыми ниже реакциями белков. Различие заключается лишь в том, что в промышленности используются более жесткие условия обработки и в меньшей степени заботятся о специфичности протекания реакции. Несмотря на практическое значение этих вопросов, они в дальнейшем изложении рассматриваться больше не будут. [c.269]

Реакция формальдегида с белками имеет также важное значение при дублении кож, фиксировании тканей и в процессах образования волокнистых веществ и пластиков. Густавсон [3] дал обзор работ, проведенных в этой области, а несколько лет тому назад Френкель-Конрат и сотрудники внесли существенный вклад в выяснение реакции дубления формальдегидом. [c.311]

Как уже указывалось, формальдегид реагирует с большинством нуклеофильных групп, имеюш,ихся в молекулах белков. В связи с многообразием этих групп, а также тем, что нуклеофильность таких групп варьирует в широких пределах в зависимости от их природы, скорости реакций формальдегида с белком также весьма разнообразны. Многие из обсуждаемых реакций протекают обратимо, другие же совершенно необратимы. Некоторые реакции идут очень легко при комнатной температуре, а иные протекают лишь при повышенных температурах. Нужно отметить, что природа этих реакций была понята лишь сравнительно недавно. Наиболее тш ательный и критический обзор обширнейшей литературы, посвяш енной этой реакции, был опубликован Френчем и Эдсал-лом [1501. В настоящем изложении приведены некоторые примеры из этого обзора, иллюстрирующие химизм протекающих процессов при взаимодействии формальдегида с белками. [c.363]

В отличие от многих ранее распространенных точек зрения в настоящее время известно, что обсуждаемая реакция совершенно неспецифична. Противоречивые объяснения, имевшиеся в ранних публикациях, были вновь обсуждены в серии исследований Френкель-Конрата с сотр. [151 — 155), причем этими авторами были рассмотрены и изучены типы реакций, которые имеют место при взаимодействии формальдегида с белками. Так, было показано [151 ], что при pH 3—7 и температуре 70° происходит взаимодействие альдегида с первичными аминными и первичными амидными группами белков, но при этом лишь в незначительной степени затрагиваются фенольные группы или пептидные связи основной цепи. Эти выводы были сделаны на основании опытов с производными белков, синтетическими полипептидами, а также с простыми модельными соединениями, содержащими максимальное или минимальное количество потенциально реакционноспособных групп. Полиглутамид, полученный из полиглутаминовой кислоты, как оказалось, связывает большее количество формальдегида (88 молекул формальдегида на 100 амидных остатков), чем любой из изученных белков. Однако полиглутаминовая кислота, полиглицин и полигексаметиленадипамид связывают менее одной молекулы формальдегида на 100 элементарных звеньев, из чего следует, что карбоксильная и пептидная или вторичная амидная группы не реагируют с формальдегидом в сколько-либо значительной степени. Белки, предварительно модифицированные реакцией с фенилизоцианатом или подвергнутые дезаминированию, проявляют пониженную способность к взаимодействию с формальдегидом. Продукты реакции в рассматриваемой работе анализировали на общее количество связанного формальдегида, а также на содержание свободных аминогрупп (по методу Ван-Сляйка), общее содержание групп основного характера и содержание первичных амидных групп. Проведение реакции при pH 3,5 и температуре 70° в течение 4 суток приводит к получению продуктов, содерн ащих максимальное количество связанного формальдегида, причем 50% от этого максимального количества формальдегида связывается с белком за 8 час, а 90% — за 24 час. Полиглутамин связывает 47 молекул формальдегида на 10 г при pH 3,4 и 31 молекулу при pH 6,7. Оказалось, что основные группы проявляют большее сродство к формальдегиду при увеличении pH. Так, изменение соотношения амидных групп и групп основного характера может в значительной [c.363]

Кроме того, эти процессы могут быть использованы для придания реакции белков с формальдегидом большей специфичности и соответственно для расширения возмояшостей применения обсуждаемой реакции с целью модификации белков, особенно модификации, связанной с изменением их биологических функций и активности. [c.365]

Реакции белков с другими альдегидами были исследованы лишь на ограниченном числе примеров. Росс и Стенли [158], например, нашли, что уксусный, пропионовый и масляный альдегиды реагируют с белком вируса табачной мозаики качественно точно таким же образом, что и формальдегид. Взаимодействие с каждым из этих альдегидов вызывает понижение активности вируса, причем во всех случаях затрагиваются как группы, реагирующие с нингидрипом, так и группы, взаимодействующие с реактивом Фолина. Во всех случаях активность белка может быть восстановлена, хотя при применении высших альдегидов эта реактивация протекает в меньшей степени, чем при модификации белка формальдегидом. Фурфурол переводит часть белка в нерастворимое состояние, но остающаяся в растворе часть совершенно не обнаруживает активности, причем она дает окраску меньшей интенсивности как с нингидрипом, так и с реактивом Фолина по сравнению с исходным активным белком. Бенз-альдегид также реагирует с этим белком лишь в ограниченной степени. [c.365]

Реакцию формальдегида с белками уже рассматривали в настоящем обзоре. Химизм протекающих при этом процессов был выяснен Френкель-Конратом с сотр., ссылки на работы которых были приведены выше. Образование из остатка формальдегида поперечной связи между двумя первичными аминогруппами не имеет места сшивание происходит между амидными, гуанидиновыми и имидазольными атомами азота. [c.415]

Реакция формальдегида с белками [150, 318, 319] обычно протекает с образованием поперечных связей между молекулами, приводя к повышению молекулярного веса и в конечном итоге к получению нерастворимых продуктов. Наиболее вероятно, что эта реакция сшивания затрагивает первичные амипогруппы. Разрушение аминогрупп реакцией с азотистой кислотой или защита их путем ацетилирования приводит к образованию продуктов, которые, по данным Девиса и Табора [320], пе сшиваются при действии формальдегида. Эти авторы предположили, что при сшивании двух молекул желатины происходит а) образование мономети-лольных производных, которые затем реагируют между собой, что приводит к получению поперечных связей [c.427]

Для проведения лабораторных исследований необходимо знать условия реакций, протекавших на первобытной. Земле, нричем следует отмстить, что ни белки, ни нуклеиновые кислоты не образуются самонроизвольно в нодны.ч растворах [47]. Самоконденсация формальдегида, другого возможного иредшест-венника живой материи, должна была бы привести к образованию сахаров, причем в присутствии СН4 реакция протекает через стадию фотолиза воды. [c.185]

Шкуры, особенно млекопитающих, представляют собой естественное сырье, обладающее замечательными физическими свойствами, которое становится еще более ценным после соответствующего изменения структуры. Как было уже указано, шкура животных представляет собой природную ткань из переплетающихся-между собо11 волокон, называемую сыромятной кожей. Хотя она и прочна, по имеет два чрезвычайно серьезных недостатка. Во-первых, будучи нерастворимой вследствие наличия белковых молекул, она все же чрезвычайно чувствительна к воде, набухая в тягучую массу и становясь несколько пластицированной. После-испарения воды пластицированные волокна оказываются сцементированными с образованием твердого рогоподобного вещества. Во-вторых, мокрая ко ка необычайно легко загнивает. Таким образом, кожу необходимо обработать, для того чтобы уменьшить ее чувствительность к воде и предохранить от гниения. Получаемый продукт носит название просто ко ки, а соответствующий процесс ее обработки называется дублением. Последний заключается в присоединении к белку дермы путем химической реакции или физической адсорбции некоторых веществ, сильно уменьшающих гидрофильный характер белка и предохраняющих его от гниения, при минимальном изменении как в физических свойствах, так и во взаимоотношениях отдельных волокон кожи.. Такое превращение может быть осуществлено действием различных веществ, как, например, таннинов, основных солей различных трехвалентных металлов, формальдегида и подобных ему веществ, вольфрамовой кислоты и т. д. Из них наиболее важными являются растительные дубители и соли хромовой кислоты. Их применение [c.383]

При автолизе под влиянием присутствующих в клетках протеолитических ферментов происходит расщепление клеточных белков на полипептиды и аминокислоты и в автолизате увеличивается количество свободных карбоксильных и аминных групп. Полипептиды и аминокислоты являются ам-фотерными веществами. В водном растворе они способны диссоциировать как кислоты и как основания, поэтому определить количество кислотных или основных групп методом титрования можно только в том случае, если одна из них будет блокирована. Принцип метода формолового титрования основан на том, что прибавлением избытка формальдегида блокируют аминогруппы, а количество свободных карбоксильных групп определяют титрованием щелочью. Реакции протекают по следующим уравнениям [c.287]

Клерк и Шенк (1937 г.), исследуя реакцию взаимодействия формальдегида с различными белками, установили, что рентгенограммы продуктов реакции заметно отличались от рентгенограмм исходных белков (появление на рентгенограммах новых характерных кольцевых полос). На основании полученных данных они пришли к выводу о наличии метиленовой связи между соседними полипептидньши цепями метиленпроизводных протеинов. [c.489]

Дьяченко и Шелпакова (1938 г.), пользуясь методом Зе-ренсена для количественного учета азота ЫНз-групп, вступающих в реакцию с формальдегидом, нашли, что- количество (аминного) азота в казеине для большого числа испытанных ими образцов в среднем составляло 10,93 мг ва г казеина. Если допустить, что реакция взаимодействия между формальдегидом и ЫНз-группами белка протекает по схеме 1, указанной Блюмом, то каждый грамм казеина может связать в среднем 23,4—25,7 мг СНзО. По схеме же 2 это количество связанного формальдегида на каждый грамм казеина должно составлять в два раза меньше, тГ е. 11,7—12,8 мг СН2О. Проводя реакцию взаимодействия казеина с 30%-ным раствором формальдегида в щелочной среде (pH = 11,88), и [c.489]

Простейшие выводы, которые можно извлечь из этих данных, состоят в том, что все эти субстраты связываются с белком в форме анионов (НОг , НСОО", R0 ) по одному и тому же центру белка, близкому к FeO, и что протон одновременно присоединяется по другому центру. Далее, окислительно-восстановительная реакция, по-видимому, протекает путем переноса гидрид-иона. Соответствующий изотопный H/D-эффект действительно наблюдался, хотя его можно объяснить на основе нескольких различных механизмов [159]. Рассмотрение структуры тех соединений, которые могут быть субстратами каталазы (и хлоронероксидазы), но не пероксидазы хрена, а именно перекиси водорода, первичных и вторичных спиртов, формальдегида [вероятно, в ( юрме его гидрата Н2С(ОН)2] и муравьиной кислоты, показывает, что они не так уж сильно различаются между собой, как это могло бы показаться на первый взгляд [c.221]

Белки образуют с фенолом и формальдегидом малорастворимые продукты кондеисации реакция протекает с участием имеющихся в молекуле белка свободных амино-групп. Фенол быстро осаждает белок из раствора, ири этом раствор мутнеет или образуются хлопья или сгустки. Формалин дубит белок, уплотняя его консистенцию и сильно снижая растворимость в воде и способность к набуханию. В обоих случаях происходит денатурация белка (ср. олыт 277). Живые клетки микроорганизмов при денатурации белков их плазмы гибнут, на этом основано применение фенола и формалина для дезинфекции. [c.320]

Блокируя аминогруппу, формальдегид одновременно освобождает карбоксильную группу, вследствие чего нейтральный раствор аминокислоты приобретает кислую реакцию. Теперь количество аминокислоты можно определить титрованием с помощью щелочи. Этот способ количественного определения аминокислот известен под названием формального титрования по Зёренсену. Его применяют при контроле процесса гидролиза белка и т. д. [c.241]

Вообще, наличие в системе тормозящих или активирующих веществ, специфического или неспецифического действия чрезвычайно важно для скорости ферментативной реакции. Известно большое количество веществ, инактивирующих белки неспецифически и действующих на разнообразные ферменты. Как правило, они в той или иной степени разрушают нативную структуру ферментного белка, инактивируя его при этом и тормозя (ингибируя) осуществляемую им реакцию. Так действуют, например, соли тяжелых металлов (ионы А , Си, РЬ и др.), формальдегид, мочевина, гуанидин (в больших концентрациях), химические вещества, реагирующие с 5Н-группами, такие как дихлор-диэтилсульфид (иприт), р-хлормеркурибензоат. Все они ингибируют действие ферментов, вызывая общие структурные изменения. [c.49]

Акабори [18] в 1955 г. высказал предположение, что вещества, предшествовавшие белкам, могли образоваться посредством реакции между формальдегидом, аммиаком и цианистым водородом, дающей аминоаце-тонитрил, с последующей полимеризацией и гидролизом, идущими на поверхности глин. Дальнейшие реакции связаны с введением боковых цепей в молекулы образовавшегося полиглицина. Акабори показал, что нагревание аминоацетонитрила с кислой глиной дает продукт с положительной биуретовой реакцией с другой стороны, обработка полиглицина, нанесенного на каолинит, формальдегидом или ацетальдегидом в присутствии основного катализатора (пиридина) приводит к образованию остатков серина и треонина. Автор считает, что метиленовые группы полиглицина, адсорбированного на каолините, более способны к реакции конденсации с альдегидом, чем в условиях, когда носитель не применяется . [c.49]

Поэтому, чтобы избежать инфицирования гелей, в суспензии гелей, заполненные колонки и элюенты добавляют бакте-риостазы, которые не должны реагировать ни с матрицей геля, ни с хроматографируемыми соединениями, не должны денатурировать или осаждать их. Если ход хроматографирования прослеживается по УФ-поглощению, то эти соединения не должны также поглощать в той спектральной области, которую используют для обнаружения. В самом начале развития гель-хроматографии был предложен в качестве бактериостазов ряд соединений, в частности толуол, фенол, крезол, формальдегид и хлороформ (см. также гл. 5, табл, 5.10). Однако фенолы и формалин вступают в реакцию с белками и вызывают необратимые их изменения. Хлороформ, который применяется в виде насыщенных водных растворов, непригоден для работы с мягкими гелями, так как вызывает уменьшение степени набухания и, таким образом, неблагоприятно влияет на хроматографические свойства этих гелей. Он также непригоден в тех случаях, когда колонки оснащены пластмассовыми трубками, так как повреждает их. [c.376]

Реакция с формальдегидом (формольное титрование). Эта реакция впервые была разработана Зёренсеном и часто используется для оценки степени гидролиза белка по количеству освобождающихся карбоксильных групп. Аминогруппы при этом блокируются формальдегидом, а карбоксильные оттитровы-ваются щелочью. Реакция формальдегида с аминогруппой протекает в два этапа. Вначале гидратированный формальдегид дает N-монооксиметилпроизводное аминокислоты< которое затем реагирует со второй молекулой альдегида, превращаясь в диоксиметилпроизводное [c.57]

Реакция с формальдегидом. Хорошо известно, что при комнатной температуре и в нейтральной среде формальдегид быстро и обратимо соединяется с амино- и иминогрупнами белков. При этом аминогруппа может соединяться с одной или двумя молекулами альдегида, тогда как иминогруппа — только с одной. Реакция протекает, вероятно, следующим образом [c.70]

Свободные гидроксильные и аминогруппы в белках, а также водородные атомы пептидной (амидной) связи могут быть использованы для различных превращений. Например, амино- и гидроксильные группы можно проацетилировать или прометилировать. Однако продукты превращения белков не являются сырьем для дальнейшей переработки в большинстве случаев эти реакции применяются для фиксации определенной формы белка и придания ему нерастворимости. С этой целью обычно используют реакции, связанные с образованием сетчатой структуры, например обработку формальдегидом, приводящую к образованию метиленовых мостиков между макромолекулами (при получении искусственного рога, галалита, и т. д.). Более подробно о способах переработки различных белков сообщается в технологической части книги. [c.126]

Первая модификация была разработана С. Г. Барлоговой [9]. Учитывая данные о сенсибилизирующих свойствах формальдегида, представлялось целесообразным отказаться от рекомендуемых Johnson формалинизиро-ванных эритроцитов. Хотя эритроциты обрабатывают 10% формалином, вызывающим необратимую денатурацию белков оболочки эритроцита, нельзя исключить появление и комплексных формальдегидсодержащих группировок, которые не обязательно будут закрыты другим аллергеном следовательно, такие эритроциты могут давать перекрестные реакции. [c.217]

Увеличение числа карбоксильных групп можно обнаружить титрованием щелочью в присутствии формальдегида или этилового спирта. Формолтитрование было впервые предложено Зёрен-сеном [12], причем первоначально предполагалось, что в результате этой реакции образуются N-метиленовые соединения следующей формулы RN = СНг. Хотя это предположение оказалось ошибочным (см. гл. VH), тем не менее следует считать, что формальдегид конденсируется с аминогруппами аминокислот, в результате чего аминогруппы теряют свои основные свойства. При взаимодействии аминокислот с формальдегидом, вероятнее всего, образуются моно- или диметильные соединения, соответствующие форм ж R-NH- HzOH или R Ы(СН20Н)г [13, 14]. Число карбоксильных групп в аминокислотах или белках можно определить также титрованием в этиловом спирте [15]. Спиртовое титрование оказывается возможным благодаря сдвигу величины рК для фенолфталеина, применяемого в качестве индикатора в то время как изменение окраски фенолфталеина в водном растворе происходит вблизи pH 9, в спиртовом растворе это изменение имеет место при pH около 12 [16]. При этих высоких значениях pH аминокислоты проявляют кислые свойства, так как положительно [c.25]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология