Аминокислоты, определение методом разделения на бумаге

Хроматография — метод разделения и анализа смеси веществ, основанный на различной сорбции компонентов анализируемой смеси определенным сорбентом. Впервые X. предложена в 1903 г. русским ученым М. Цветом. Разделение ведут в колонках, наполненных силикагелем, оксидом алюминия, ионообменными смолами (ионитами) и др., или же на специальной бумаге. Вследствие различной сорби-руемости компонентов смеси (подвижная фаза) происходит их зональное распределение по слою сорбента (неподвижная фаза) — возникает хроматограмма, позволяющая выделить и проанализировать отдельные вещества (процесс подобен многоступенчатой ректификации). В зависимости от агрегатного состояния подвижной фазы различают газовую и жидкостную X. по механизмам разделения — ионообменную, осадочную, распределительную и молекулярную (адсорбционную) X. в зависимости от техники проведения разделения в X. различают колоночную (колонки сорбентов), бумажную (специальная фильтровальная бумага), капиллярную (используют узкие капилляры), тонкослойную X. (применяют тонкие слои сорбентов). Методами X. анализируют смеси неорганических и органических соединений, концентрируют следы элементов. В химической технологии X. применяют для очистки, разделения веществ. X. позволяет разделять и анализировать смеси веществ, очень близких по свойствам (напр,, лантаноиды, актиноиды, изотопы, аминокислоты, углеводороды и др.). [c.151]

Использование радиоактивных изотопов существенно расширило возможности метода разделения близких по свойствам веществ методом хроматографирования на бумаге. Отпала необходимость в наличии избирательных реактивов, дающих окрашенные соединения, повысилась чувствительность и точность определений, появилась возможность количественно определять и разделять смеси близких по свойствам веществ, например, смеси сложных аминокислот. [c.309]

В настоящее время широко распространен достаточно точный нингидриновый метод определения аминокислот при помощи хроматографического разделения на бумаге. Однако разделение некоторых аминокислот обычной хроматографией на бумаге требует большой затраты времени например, для разделения основных аминокислот, необходимо минимум 4— 5 суток. Применение электрофоретического разделения позволило сократить время разделения лизина, аргинина и гистидина до 3 часов и за счет этого сократить общее время, необходимое для количественного анализа этих аминокислот, с 5—б дней до 6—7 часов. [c.254]

Более быстрым методом разделения пептидов энзиматического гидролизата является метод пептидных карт ( отпечатка пальцев , или фингерпринта ), сочетающий высоковольтный электрофорез и хроматографию на бумаге. С помощью этого метода возможно сопоставление пептидных смесей, получаемых при расщеплении различных белков, и выявление столь малых различий в аминокислотном составе отдельных пептидов, как замещение единичной аминокислоты какой-либо другой. Такие различия имеют большое значение при сравнительном изучении гомологичных белков различных видов растений и животных, а также прй определении генетических изменений в структуре белка, возникающих в результате точечной мутации. [c.81]

Одно из достоинств метода ТСХ — его быстрота. Анализ аминокислот этим методом требует значительно меньше времени, чем хроматографирование на бумаге. Так, двумерное хроматографирование на бумаге длится несколько дней, тогда как методом ТСХ его можно осуществить за 4—5 ч. Другое преимущество ТСХ — повышенная чувствительность. Например, чувствительность определения гистамина этим методом в 2 раза выше, а чувствительность определения цистеиновой кислоты в 50 раз выше [24]. При двумерном разделении различие в чувствительности еще больше и для отдельных кислот может возрастать в 250—500 раз. [c.478]

Хроматографическое разделение аминокислот. Для аналитических целей определения аминокислот в смесях разделение их производится хроматографией на бумаге или на ионитах. Метод десорбционного анализа, разработанный Муром и Штейном [29], основан на сорбции аминокислот сульфокатионитом и десорбции кислотой или буфером—нитратом натрия. Фракции с колонн собираются обычно автоматическим приспособлением и анализируются колориметрически реакцией с нингидрином. Аминокислоты в отдельных фракциях идентифицируются по порядку, в котором они [ВЫХОДЯТ из колонны при десорбции буферами с повышающимся pH. [c.597]

В ряде работ [434, 435] описано хроматографическое разделение некоторых белковых гидролизатов на колонне, наполненной крахмалом, с последующим определением в элюате отдельных аминокислот нингидринным методом. Такой же способ был применен для разделения тимина, урацила, аденина и некоторых других пуринов и пиримидинов [266]. Для разделения смеси некоторых аминокислот использована хроматография на бумаге, а также и ионообменные емолы (амберлит Ш-4В) [229, 238, 263, 271] для разделения основных аминокислот предложен пермутит [479]. [c.222]

Определение методом хроматографии на бумаге. Оля обнаружения используют комплексное соединение нингидрина с медью [121]. После разделения высушенную хроматограмму протягивают через смесь 90 мл 0,5%-ного раствора нингидрина в ацетоне, 5 мл воды и 5 мл ледяной уксусной кислоты и высушивают 15 мин при 90°С. Затем бумагу пропитывают раствором соли меди, для приготовления которого к 1 мл насыщенного раствора нитрата меди прибавляют 0,02 мл 65%-ной азотной кислоты и доводят ацетоном до 100 мл. Высушивают в течение 30 мин при комнатной температуре в темном месте. Пятна аминокислот вырезают, окрашенное вещество экстрагируют в пробирке 8 мл метилового спир- [c.174]

Цель работы разделение аминокислот при одновременном их присутствии в растворе методом распределительной хроматографии на бумаге с последующим их качественным и количественным определением. [c.109]

Качественное и количественное определение аминокислот проводят после их разделения методом хроматографии на бумаге. Разделение основано на различии в скорости перемещения по бумаге компонентов хроматографируемой смеси с растворителем. [c.109]

Качественное определение аминокислот методом распределительной хроматографии на бумаге. Цель работы — определить коэффициент движения лизина и метионина для индивидуальных веществ и для их смеси (с целью разделения их на хроматограмме). [c.528]

Радиоизотопный анализ производных жирных и желчной кислот, приготовленных с использованием и разделенных методом хроматографии на бумаге, осуществляли путем непосредственного измерения радиоактивности пятен хроматограммы [91, 94, 95] или путем приготовления из бумажной хроматограммы авторадиограммы и последующего измерения интенсивности хроматографических зон с помощью записывающего микрофотометра [92, 93]. Использовали и жидкостные сцинтилляционные счетчики в комбинации с жидкостной колоночной хроматографией [96]. При использовании жидкостного сцинтилляционного счетчика в комбинации с тонкослойной хроматографией чувствительность метода, в котором применяется для определения динитрофенильных производных аминокислот [97], возрастала в сто раз, достигая 1 пМ 98] при воспроизводимости результатов d=6%. Анализируя аналогичным методом смеси кислот известного состава, можно идентифицировать анализируемые кислоты и оценить их количества. Определенным преимуществом диазометана является отсутствие пространственных эффектов при проведении вышеуказанных реакций. [c.154]

Разновидностью распределительной хроматографии является хроматография на бумаге, широко используемая в биохимических лабораториях, в том числе клинических, для разделения пептидов, аминокислот и других веществ (рис. 1.4). В качестве стационарной фазы при этом служит вода, адсорбированная целлюлозными цепями фильтровальной бумаги. Образец помещают на одном конце бумажной полосы, этим же концом бумагу погружают в подходящую смесь органических растворителей (например, бутанол-уксусная кислота-вода в определенных соотношениях). При движении растворителя по бумаге благодаря силе капиллярности происходит разделение компонентов смеси. Проявленную хроматограмму высушивают, а местоположение каждого из разделяемых веществ определяют химическими или физико-химическими методами. [c.28]

В медицинских исследовательских лабораториях весьма необходимы простые и надежные микрометоды определения изменений в обмене веществ. Анализы следует проводить быстро и серийно. С зтой точки зрения оказался подходящим метод хроматографии на бумаге, нашедший применение в медицинских лабораториях сразу после того, как были успешно разделены смеси аминокислот. Ценным вспомогательным диагностическим средством при разделении ионогенных смесей оказался затем и электрофорез (ионофорез) на различных слоях носителей . Этот метод нашел широкое применение благодаря высокой эффективности процесса разделения белков. Для количественного расчета состава разделенных смесей, нанесенных в виде полос, используют регистрирующие фотоэлектрические приборы. [c.337]

Для разделения методом ХТС свободных аминокислот можно непосредственно воспользоваться растворителями, известными из хроматографии на бумаге, тогда как для разделения ДНФ-аминокислот они оказались либо совсем непригодными, либо применимыми весьма ограниченно. Определение ДНФ-аминокислот методом хроматографии на бумаге является весьма сложным процессом, поскольку наблюдается образование хвостов и величины Rf сильно зависят от нанесенного количества вещества и присутствия других ДНФ-аминокислот. Хорошим растворителем в хроматографии на бумаге оказалась толуольная система по Бизерте и Осте [45], м-бутиловый спирт — [c.416]

Для разделения элементов в аналитической химии, в частности при фотометрическом анализе, применяются различные хроматографические методы. Из них более прямое отношение к фотометрическому анализу имеет хроматографическое разделение на бумаге. Этот метод широко применяется, например, для анализа смеси редкоземельных элементов, причем после разделения выполняется. проявление и фотометрическое определение. Для последней цели обычно применяют групповой реактив (см. гл. 6, 10). Еще большее значение для анализа сложных смесей органических веществ имеет хроматография на бумаге. Этим методом обычно выполняется анализ смеси аминокислот. [c.164]

При построении калибровочного графика растворитель пропускают через бумагу столько раз, сколько это необходимо для четкого разделения аминокислот исследуемой пробы. После пропускания растворителя хроматограмму высушивают и проявляют, погружая на несколько секунд в 0,5%-ный раствор нингидрина (готовится смешиванием 95 частей 0,5%-ного раствора нингидрина в ацетоне, 1 части ледяной уксусной кислоты и 4 частей воды непосредственно перед определением), подсушивают в течение нескольких минут на воздухе и прогревают для развития окраски в затемненном сушильном шкафу в течение 15 мин при 60 °С. Концентрацию соответствующей аминокислоты определяют описанными ниже методами. [c.149]

При использовании денситометрического метода интенсивность окраски вещества в зоне измеряется непосредственно на хроматограмме. Впервые этот метод был использован для измерения концентрации аминокислот, разделенных на группы с помощью электрофореза, а позже — в хроматографии на бумаге для определения аминокислот, сахаров и стероидов. [c.79]

С помощью распределительной хроматографии легко осуществляется разделение аминокислот и определение их в-смеси. Метод заключается в том, что каплю смеси аминокислот или гидролизата белка наносят на полоску фильтровальной бумаги, конец которой опускают в подходящий органический растворитель. Растворитель насасывается полоской фильтровальной бумаги и увлекает за собой нанесенные на бумагу аминокислоты. Скорость перемещения аминокислот на бумаге зависит от химического строения аминокислот и от их способности растворяться в подвижном и неподвижном растворителе. В качестве подвижного растворителя употребляют, например, водонасыщенный фенол (или н. бутиловый спирт, амиловый спирт и др.). Неподвижным растворителем является вода, пары которой насыщают фильтровальную бумагу (внешне бумага остается сухой). Чем меньше растворимость аминокислот в воде и чем больше их растворимость в феноле, тем быстрее они движутся вслед за фронтом органического растворителя. [c.21]

В последнее время для разделения смесей аминокислот широко используют метод электрофореза на бумаге, при котором на полосы фильтровальной бумаги наносят смесь аминокислот, бумагу смачивают буферным раствором с определенным значением pH и пропускают через нее электрический ток. Через несколько часов вследствие различия ИЭТ аминокислот и, следовательно, разных скоростей и направлений их движения в электрическом поле смесь аминокислот разделяется на бумаге на индивидуальные аминокислоты, количество которых может быть определено тем или иным методом. В настоящее время электрофорез используется для разделения не только аминокислот, но и белков, нуклеиновых кислот, органических кислот и ряда других соединений. Благодаря тому что аминокислоты являются амфотерными электролитами, они могут давать соли одновременно как с кислотами, так и с основаниями [c.188]

Сисакян Н. М. и Безингер Э. Н. Разделение и определение аминокислот в вине методом хроматографии распределения на бумаге. ДАН СССР, 1949, 69, № 4, с. 573—576. Библ. с. 576. 8116 [c.306]

Хроматографию на бумаге в сочетании с применением органических реактивов широко используют для разделения близких по свойствам соединений аминокислот, пептидов, нуклеиновых кислот, углеводов. Кроме того, ее применяют для определения следов хлорорганических, фосфорорганических и других пестицидов в пищевых продуктах и в биологическом материале. Этим методом также разделяют пигменты листьев. [c.460]

С и с а к я н Н. М., Безингер Э. Н. Разделение и определение аминокислот в вине методом хроматографии распределения на бумаге. Докл. АН СССР , 69, 573, 1949. [c.184]

Разделение компонентов белкового гидролизата методами хроматографии основано на том, что у различных аминокислот неодинаковы коэффициенты распределения между водой и. растворителем, не смешивающимся с водой, но частично в ней растворяющимся. В качестве водной, или так называемой неподвижной фазы могут служить кизельгур, целлюлоза, силикагель и фильтровальная бумага, поры и капилляры которых содержат определенное количество воды. Поддерживающая среда может служить в качестве инертного носителя или играть известную роль в адсорбции веществ, подлежащих разделению. [c.43]

Ю. Б. Ф и J[ и п п о в и ч. Качественное определение аминокислот методом хроматографического разделения на бумаге. — Ученые записки МГПИ им. В. И. Ленина, 140, 1958. [c.118]

Метод хроматографии на бумаге впервые был применен для анализа смеси аминокислот (Мартин, Кондсен, Гордон, 1944 г.). В настоящее время известно большое количество методов, которые позволяют анализировать сложные смеси аминокислот. При этом используют различные растворители, различные методы проявления, одномерные и двухмерные хроматограммы и др. В данной работе предлагается один из наиболее простых методов разделения и определения смеси двух или трех аминокислот. [c.65]

За последний год предложен целый ряд методов количественного определения аминокислот, обнаруженных после разделения на бумаге. Существует метод [16] сравнения интенсивности окраски и размера обнаруженных пятен со шкалой стандартных пятен, полученных от хроматографии определенного количества стандартной аминокислоты на этой же полосе бумаги. Однако эти определег1ия дают только приблизительный результат. [c.404]

Высокоэффективным методом разделения является сочетание электрофореза на бумаге с обычной хроматографией. При этом сначала через влажную бумагу, на которую нанесена смесь, пропускают ток высокого напряжения, а затем смесь хроматографируют с помощью подходящего растворителя в направлении, перпендикулярном направлению электрофореза. В результате достигается разделение первоначальной смеси в двух измерениях. Применение такого метода к продуктам ферментативного расщепления белков позволяет получить двухмерную картину, которую называют пептидной картой. Каждый белок дает характерную для него при каждом конкретном способе расщепления картину. Локализацию отдельных компонентов во многих случаях определяют с помощью специфических красителей. При определении аминокислот и пептидов в качестве такого красителя используют, например, нингидрин. Если производится элюция адсорбированных компонентов, то удобнее всего устанавливать их присутствие в элюате спектрофотометрически. Вероятно, наиболее тонким методом разделения белков следует считать иммуноэлектрофорез, при котором эффект достигается за счет использования различий в двух свойствах электрофоретической подвижности и иммунологической специфичности. [c.220]

Проблемы, возникающие при количественном определении моносахаридов в присутствии большого количества аминокислот, обсуждаются в гл. 8 (том 1). В табл. приведены результаты определения содержания углеводных компонентов в препаратах а -кислого гликопротеипа, полученных из одного и того же источника разными методами. Обнаруженные расхождения, возможно, отчасти обусловлены истинными различиями между препаратами, однако, более вероятно, что они объясняются отличиями в использованных методах исследования. При изучении химической структуры -кислого гликопротеипа особый интерес представляет определение количественного соотношения маннозы и галактозы. Это соотношение варьирует от 1 1 до 1 2. Неопубликованные результаты опытов, проведенных в лаборатории автора доктором А. М. Клоссом, показали, что эти расхождения зависят только от применяемых методов. Сравнивались два метода разделение на смоле дауэкс-1 [311 и хроматография на бумаге с последующим окрашиванием фосфатом анилина и элюированием пятен. Оба метода дали правильные результаты при проверке их на стандартной смеси, но при изучении одного и того же гидролизата -кислого гликоиротеина было получено отношение маннозы к галактозе, равное 1 1 и 1 2. [c.80]

Хроматографический анализ органических веществ развивался попутно с хроматографией неорганических веществ. В 1935— 1936 гг. появились первые сообщения об успешном применении метода Цвета в анализе синтетических красителей. Из жидкофазных вариантов хроматографии наиболее широкое применение в органической и биологической химии получила бумажная хроматография. Это тонкий микрометод, позволяющий разделять смеси нескольких десятков компонентов на полоске пористой бумаги, которая выполняет роль хроматографической колонки. Хроматограмма получается в виде пятен, окраска которых соответствует природной окраске разделяемых компонентов смеси. При анализе бесцветных веществ пятна проявляют, опрыскивая бумагу реактивом, образующим с разделяемыми компонентами окрашенные соединения. Например, при определении аминокислотного состава белков после их гидролиза бумагу опрыскивают раствором нин-гидрина, в результате чего на поверхности бумаги появляются пятна розового цвета, соответствующие индивидуальным аминокислотам (см. рис. 1.2). Если разделяемые бесцветные вещества обладают способностью к флуоресценции, бумагу облучают ультрафиолетовыми лучами (кварцевой или ртутной лампой) и тогда хроматограмма становится видимой. Этот случай можно наблюдать при разделении смеси антрахинонов, пятна которых в ультра- [c.9]

Аминокислоты в растворе находятся в виде цвиттерионов. Их заряд, определяемый степенью диссоциации карбоксильных, аминогрупп и боковых радикалов, зависит от pH раствора. Используя метод электрофореза на бумаге, удается провести разделение определенных групп аминокислот. Сложные смеси аминокислот могут быть разделены с помощью электрофорезов, проводимых при разных значениях pH во взаимноперпендикулярных направлениях или комбинацией электрофореза и хроматографии. [c.137]

Гистидинсодержащие дипептиды определяют в безбелковом экстракте мышц после разделения их методами хроматографии на бумаге, в тонком слое силикагеля или ионообменной хроматографии на колонке (в автоматическом анализаторе аминокислот). Как и все первичные амины, дипептиды можно обнаружить по реакции с нингидрином, флуорескамином и с о-фталевым диальдегидом. Карнозин, кроме того, может быть определен по цветной реакции Паули с диазотиро-ванной сульфаниловой кислотой. [c.191]

Высокая чувствительность метода обратного изотопного разбавления с радиореагентом, а также селективность, которую обеспечивает применение индикаторного изотопа, позволяют определять микроколичества смесей первичных и вторичных аминов. Эти методы широко применяли в определениях различных аминокислот в биологических образцах [85—88]. В работе [86], в частности, описано использование этих методов для оценки содержания одиннадцати таких соединений в 1 мг белка. Метод с пипсилхлоридом применялся для анализа гистамина, причем в этом анализе проводилось четыре цикла перекристаллизации соответствующего производного с целью его очистки до получения постоянного значения удельной радиоактивности. После проведения этого анализа было предложено [89] применять данный метод для определения любого амина, который дает кристаллический замещенный д-иод-бензолсульфамид. Этим же методом оценивались микрограммные количества 2,4-диоксипиримидина и его 5-метильного производного [90]. Для разделения пипсильных производных в дополнение к бумажной хроматографии применялись жидкофазная колоночная хроматография [91] и тонкослойная хроматография [92]. Хроматографию на бумаге применяли также для оценки радиохимической чистоты реагента [93]. [c.310]

На основе нингидриновой реакции были разработаны методы количественного определения аминокислот, в частности метод распределительной хроматографии на бумаге, впервые внедренный в 1944 г. (А. Мартин и Р. Синдж). Эта же реакция используется благодаря своей высокой чувствительности в автоматическом анализаторе аминокислот. Впервые такой прибор сконструировали Д. Шпакман, С. Мур и У. Стейн (рис. 1.7). После разделения смеси аминокислот в колонках, заполненных специальными ионообменными смолами (сульфополистирольный катионит), ток элюента из колонки поступает в смеситель, туда же поступает раствор нингидрина интенсивность образующейся окраски автоматически измеряется на фотоэлектроколориметре и регистрируется самописцем. Этот метод нашел широкое применение в клинической практике при исследовании крови, мочи, спинномозговой жидкости. С его помощью за 2—3 ч можно получить полную картину качественного состава аминокислот в биологи- [c.42]

Через несколько часов, когда можно ожидать разделения аминокислот, бумагу вынимают из ванночки и растворитель удаляют высуи иванием. После этого для лучшего разделения аминокислот лист бумаги поворачивают на 90° и снова помещают в ванночку и по бумаге пропускают другой растворитель. После вторичного пропускания растворителя бумагу обрабатывают каким-либо реактивом, дающим окрашивание при взаимодействии с аминокислотами, чаще всего нингидрином или изатином. На бумаге появляются окрашенные пятна, соответствующие отдельным аминокислотам. По месту положения пятен и интенсивности их окраски судят о наличии и содержании в гидролизате белка тех или иных аминокислот. Фотография хроматограммы показана на рисунке 21. Метод распределительной хроматографии на бумаге позволяет быстро и точно определить содержание аминокислот. В последние годы хроматографические методы успешно применяются для разделения и определения сахаров, органических кислот и ряда других соединений. [c.218]

Определение различий в молекулах Г. производят путем комбинированного применения хроматографии и электрофореза иа бумаге для разделения нептидов, получаемых при непо1[ном ферментативном гидролизе Г. пептиды разных Г., положение к-рых на двухмерной хроматограмме не совпадает, выделяют, определяя затем последовательность аминокислот в этих отрезках (метод дактилограмм и.ди отпечатка пальцев ). Небольшие отклонения в строении белкового компонента Г. заметно сказываются на физич., физико-химич., химич. и биологич. свойствах Г. [c.419]

В связи с быстрым развитием химии белка и белкового обмена потребовались новые, точные методы определения аминокислот с затратой очень небольших количеств исследуемых объектов и времени. Метод распределительной хроматографии на колонке не всегда удовлетворял этим требованиям. Используемый инертный носитель, чаще всего силикагель, проявлял адсорбционные свойства, что оказывало неблагоприятное влияние на разделение аминокислот, а методика таких работ была очень трудоемкой. В 1943 г. А. Мартин, Р. Синдж, Р. Консден и А. Гордон использовали для анализа малых количеств аминокислот фильтровальную бумагу. В этом случае фильтровальная бумага явилась носителем неподвижной водной фазы. Для разделения смеси веществ они наносили на полосу фильтровальной бумаги маленькую каплю исследуемого раствора, на небольшом расстоянии от края. Затем каплю раствора подсушивали, и этот конец бумаги помещали в растворитель так, чтобы нанесенная капля была несколько выше поверхности растворителя. Растворитель (обычно органический растворитель смешанный с водой) под действием капиллярных сил поднимался вверх по полосе бумаги как только подвижная фаза подходила к месту нанесения смеси веществ, происходило распределение отдельных компонентов смеси мел ду подвижной и неподвижной фазами, основанное на различии их коэффициентов распределения. Все вещества, у которых величина коэффициентов распределения различалась хотя бы незначительно, образовывали отдельные зоны (пятна) на полоске бумаги за счет многократного повторения акта распределения дтежду двумя фазами. [c.79]

В СВЯЗИ с развитием химии белка потребовались новые, быстрые н точные методы определения аминокислот с использованием малых количеств исследуемого вещества. Для этих определений методика распределительной хроматографии на колонке оказалась слишком трудоемкой. На разделении аминокислот неблагоприятно сказывались адсорбционные свойства используемого инертного носителя, чаще всего силикагеля. В 1943 г. Мартин, Консден и Гордон использовали для анализа малых количеств аминокислот фильтровальную бумагу в качестве носителя неподвижной водной фазы, а в качестве подвижной фазы смесь органического растворителя с водой. Для разделения смеси веществ на полоску фильтровальной бумаги наносили маленькую каплю исследуемого раствора и этот конец полоски помещали в растворитель, так чтобы нанесенная капля была несколько выше поверхности растворителя. При этом отдельные компоненты смеси распределяются между подвижной и неподвижной фазами соответственно различию значений их коэффициентов распределения. Даже при незначительных различиях коэффициентов распределения разделяемые вещества образуют отдельные зоны (пятна) на полоске бумаги. [c.53]

Пролин может бы > количественно определен наряду с остальными аминокислотами после разделения их ка бумаге хроматографическим методом и проявления хроматограммы нингидрином. Определение основано на том, что желтое соединение пролина с нингидрином (колориметрирование которого невозможно) в сильно кислой среде переходит в красное, 1фичем [c.326]

Применение ионного обмена в аналитической химии началось уже давно. Но лишь в последнее время ионный обмен получил значительное развитие в связи с появлением многочисленных ионитов, значительно различающихся по своим свойствам. Так, гидратированный алюмосиликатный катионит (реактив Ллойда) широко применяется для удаления аммиака перед определением мочевины [173] и для апалитического разделения аминокислот [58]. Концентрирование растворов микроэлементов на таких катионитах, как алюмосиликаты [1] и фильтровальная бумага [114], широко используется уже на протяжении многих лет. Важное значение в аналитической практике имеет применение методов ионного обмена для изучения природы осадков в весовом анализе [294], при изучении механизма стеклянного электрода [145] и для выяснения источников ошибох при измерениях со стеклянным электродом в разбавленных небуферных растворах [145]. Ионным обменом объясняют также изменения, возникающие при хранении весьма разбавленных растворов в стеклянной посуд [26, 28, 478]. Эти применения имели, однако, в аналитической химии весьма небольшое значение по сравнению с их применением в настоящее время. Синтез ряда ионообменных смол, содержащих различные функциона,льные группы и в некоторых случаях отличающихся высоко чистотой ( для анализа ), значительно способствовал широкому примепепию иоп1 тов в аналитической химии. [c.120]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология