Пиридин как растворитель в хроматографии

Применяемые в хроматографии органические растворители (петролейный эфир, четыреххлористый углерод, циклогексан, сероуглерод, эфир, ацетон, бензол, толуол, хлороформ, спирты, пиридин и органические кислоты) можно расположить в ряд по их способности адсорбироваться в колонке. Жидкости, находящиеся в начале этого ряда, вытесняются жидкостями, находящимися ниже. Чтобы хорошо разделить смесь веществ (т. е. получить хорошую хроматограмму) для этих веществ и для данного адсорбента, следует подобрать подходящий растворитель. Он не должен адсорбироваться слишком сильно, так как в этом случае растворенные вещества беспрепятственно пройдут, через колонку, но он не должен также адсорбироваться слишком слабо, так как в этом случае все растворенные вещества скопятся на самом верху колонки и, несмотря на последующее приливание большого количества чистого растворителя, будут лишь незначительно продвигаться вниз. Наиболее подходящий растворитель с промежуточными свойствами должен обеспечивать такое [c.53]

После нанесения растворов на бумагу приступают к разделению сахаров в соответствующей смеси растворителей (н-бутанол — пиридин вода, 6 4 3 н-бута-нол — уксусная кислота — вода, 4 1 5). Хроматография нисходящая. Продолжительность разделения 2—3 суток. [c.230]

Как указывалось ранее, в гидролизатах, помимо нейтральных моносахаридов, часто присутствуют О-глюкуроновая и О-галакту-роновая кислоты. Хроматографией на бумаге с растворителями, применяемыми для разделения моносахаридов (как, например, этилацетат—пиридин—вода), уроновые кислоты не разделяются. В кислых растворителях (этилацетат—уксусная кислота—вода) значения Rf этих уроновых кислот очень близки. По этой причине не достигается на хроматограммах достаточно отчетливое разделение. [c.87]

При разделении смеси метилированных углеводов хроматографией на бумаге применяют системы растворителей н-бута-нол — этанол — вода (5 1 4), н-бутанол — этанол — вода — ЫНз (4 1 4 0,1), этилацетат — пиридин — вода (5 1 5) и др. Для первых двух систем растворителей принят восходящий поток, для [c.94]

Хорошее разделение можно получить при хроматографии в летучем буферном растворе пиридин — уксусная кислота pH 5, который готовят на деионизованной воде, смешивая 40 мл уксусной кислоты и 40 мл пиридина и доводя конечный объем до 10(50 мл. В этом буферном растворе в отличие от цитратного Тир и Фен меняются местами (фиг. 50), а аминокислоты в направлении от линии старта к фронту растворителя движутся в следующем порядке Арг, Гис, Лиз, Тир, Фен. [c.251]

Фильтровальную бумагу Ватман 1 смачивают крахмальным раствором и высушивают на воздухе. Для хроматографии используют три смеси растворителей гептан—пиридин (7 3) гептан— бутанол—муравьиная кислота (4 4 2) гептан—бутанол—муравьиная кислота (4 2 4), верхняя фаза. [c.286]

Следовательно, пиридин и хлороформ можно использовать как растворитель для эффективного разделения Fe и Са методом хроматографии на бумаге. [c.184]

Для установления оптимальных условий реакции проведены как при комнатной температуре, так и при нагревании в различных растворителях (абсолютном бензоле, эфире, пиридине) в присутствии акцепторов галоидводородов (триэтиламина, пиридина). Оказалось, что реакция заканчивается после четырехчасового нагревания. Ход реакции контролировался хроматографией в тонком слое. [c.68]

Проведено разделение щелочноземельных элементов методом хроматографии на бумаге в системе растворителей пиридин — этиловый спирт—1,5 н. уксусная кислота. [c.59]

На основе адсорбционной ТСХ удалось разделить ПС в системах, состоящих только из растворителей для этого полимера, обладающих различной адсорбционной активностью по отношению к силикагелю. На рис. УИ1.5 показано разделение ПС в системе циклогексан — бензол. Видно хорошее разделение полимеров с низкой и средней молекулярными массами и отсутствие эффективной хроматографии ПС с М 5>4-10 , что, безусловно, связано с малой скоростью адсорбционно-десорбционных процессов у высокомолекулярных полимеров в этих системах. Аналогичные результаты по разделению ПЭО по молекулярной массе получены с помощью адсорбционной ТСХ в системах пиридин — вода [11] и этиленгликоль — метанол на силикагеле и метанол — диметилформамид на окиси алюминия [41]. [c.289]

Наиболее распространенным ацилирующим реагентом является ангидрид соответствующей кислоты, реакцию проводят в пиридине, тетрагидрофуране или других растворителях основного характера, способных связывать образующиеся кислые продукты, что оказывает часто решающее влияние на выход продукта [74]. Реакцию проводят в сухой среде, чтобы избежать гидролиза образующихся производных. Затем реакционную смесь нагревают при 60 °С в течение 30—60 мин, чтобы выделить избыток растворителя и других летучих компонентов, и анализируют на газовом хроматографе. Для образования производных, детектируемых ЭЗД, используют ангидриды галогенпроизводных кислот [75]. [c.41]

Совершенно не ясно, каким образом вообще осуществляется взаимодействие между набухающими в воде гелями и ароматическими соединениями. Этот эффект можно подавить, вводя в элюент различные добавки. Создавая в элюенте высокую концентрацию роданида или мочевины, удается почти полностью нормализовать элюирование пикриновой кислоты и триптофана [52]. На сефадексе 0-25 в водно-спиртовой среде полифенолы ведут себя в соответствии с их молекулярным весом, ВТО время как в чистой воде они сильно задерживаются гелем [53]. Возможные активные центры геля не удается насытить путем добавления к элюенту ароматических соединений (например, 0,2 н. салицилата натрия) [42], однако в 1 М пиридине ди-нитрофенильные производные аминокислот появляются в элюате раньше, чем свободные аминокислоты. По-видимому, при хроматографировании в системе фенол — уксусная кислота — вода (1 1 1) гель уже не имеет сродства к ароматическим соединениям [54], Карнеги [55], работая на сефадексе 0-25 в этой системе (которая позволяет избежать побочных эффектов), сумел на ряде пептидов подтвердить обычную зависимость между объемами выхода и молекулярным весом (табл. 26). Он предполагает, что при молекулярном весе выше 400 имеет место собственно гель-хроматография, поскольку здесь уже не должен действовать эффект распределения [63]. Однако до сих пор все же не доказано, одинаков ли состав растворителя в гранулах геля и между гранулами. [c.130]

При помощи тонкослойной хроматографии на силикагеле в системе растворителей бензол — пиридин (85 15) были разделены изомерные оксибензойные кислоты [c.56]

Более перспективным методом концентрирования нефтепорфиринов представляется селективная экстракция их полярными растворителями. В качестве растворителей, используемых для экстракции, применяются этиловый спирт [597], ацетонитрил [816], пиридин [817], ДМФА [811]. Сравнительное исследование полноты извлечения металлопорфириновых комп. ексов этими растворителями [818] показало, что наиболее полное извлечение достигается при обработке нефти ДМФА. Полученный в результате экстракции концентрат требует дальнейшей очистки, для чего обычно используется метод колоночной хроматографии и препаративной ТСХ на окиси алюминия [802, 819]. [c.144]

В начале 1982 г. было опубликовано исследование, посвященное сопоставлению возможностей использования RP-8-, RP-18- и феппл-силикагелей для фракционирования трипсиновых пептидов в двух вариантах линейной градиентной элюции обычного градиента концентрации пропанола при pH 4 и ион-парной хроматографии с градиентом концентрации ацетопитрила. Были выбраны следующие комбинации растворителей при элюции пропанолом раствор А — 0,25 М пиридин в 0,9 М СН3СООН (pH 4) раствор В — 60%-ный раствор пропанола в растворе А. При ион-парной хроматографии использовали следующие комбинации раствор А — 0,09 %-ный водный раствор ТФУ раствор В — смесь ТФУ, воды и ацетопитрила в пропорции 0,09 9,91 90. В обоих случаях использовали линейный градиент (О—70%) раствора В в смеси с раствором А. [c.206]

При обнаружении стероидных алкалоидов методом бумажной хроматографии используются различные смеси растворителей ме-тнлэтилкетон, насыщенный водой -бутанол — уксусная кислота — вода (10 2 5) м-бутанол — пиридин — вода (10 2 Б) и др. Для обработки хро.матограмм чаще всего применяются реактив Драгендорфа (оранжевые пятна) или концентрированный хлороформный раствор треххлеристой сурьмы с последующим непро-должительньш нагреванием при Ю5 (кирпич но-крас ное окрашивание). [c.165]

При гидролизе 4-0-метилглюкуроноксиланов образуются D-кси-лоза, 4-0-метил- )-глюкуроновая кислота, нейтральные и кислые олигосахариды. Такие смеси разделяют на колонках с анионитом [131, 182], углем [184], порошкообразной целлюлозой [183, 185]. Более совершенное разделение компонентов достигается хроматографией на бумаге. Этим методом осуществляется также предварительная идентификация разделенных веществ. Для исследования продуктов гидролиза на ленты (1—2X48 ai) хроматографической бумаги наносят 0,02—0,05 мл гидролизата, содержащего 1—3% редуцирующих веществ, и разделяют его нисходящим потоком растворителя этилацетат—пиридин — вода (5 1 5), контролируя разделение проявлением одной из параллельных лент. После отделения моносахаридов участки хроматограмм, содержащие олигосахариды, отрезают и элюируют [c.129]

Для анализа электрофореграммы разрезают на отрезки по 2 см, полисахариды с полученных отрезков элюируют водой, элюаты гидролизуют и углеводный состав гидролизатов определяют хроматографией на бумаге с растворителем пиридин— этилацетат—вода (1 5 5). Состав углеводов на хроматограммах, соответствующих отрезкам —6 электрофореграмм (рис. 26), дает возможность представитв распределение на электрофореграммах 4-0-метилглюкуроноарабоксилана и галактуроноарабогалактана. Наличие только двух пиков на электрофореграмме свидетельствует об однородности разделенных полисахаридов. [c.177]

Гидролизаты легко- и трудногидролизуемых полисахаридов исследовались хроматографией иа узких (5X250 мм) лентах хроматографической бумаги с растворителем этилацетат—пиридин—вода (5 1 5). Количество углеводов определялось по соотношению площадей пиков, полученных при записи на денситометре и проявленных анилинфталатом исследуемых хроматограмм и хроматограмм с известным количеством моносахаридов. [c.326]

Для бумажной хроматографии используют две системы растворителей [5], а именно фенол, насыщенный водой, и бутиловый спирт — пропионовая кислота — вода (2 1 1,4). Радио-аутографичесг ое пятно соответствует пятну, образующемуся при обрызгивании бумаги 0,1 %-ным спиртовым раствором нингидрина. В работах Буша [8] были использованы в Kane tBe растворителей системы фенол — вода — аммиак [6] и пиридин — вода [7]. [c.172]

Раствор хлорангидрида кислоты в 0,5 мл сухого бензола обрабатывают 0,100 а (0,72 Л1М0ЛЯ) 2-аллил-4-окси-3-метилцикло-пентен-2-она-1 (примечание 11) и 0,075 г (0,95 жмоля) сухого пиридина в 1 мл бензола. Смесь выдерживают в течение ночи, переносят в центрифужную пробирку с небольшими порциями соляной кислоты (всего 1 мл) и растворителя (Skellysolve В) (всего 1,5 мл) и промывают водой при центрифугировании, причем для отделения растворителя используют пипетку. Неочищенный продукт реакции испаряют при температуре 35—40° (1 мм рт. ст.) выход 0,1674 г (93%) (примечание 12). Вещество очищают методом распределительной хроматографии между гексаном и нитрометаном на колонке с кремневой кислотой при давлении воздуха 0,2—0,25 ат. Элюат отбирают порциями по 5 мл вблизи ожидаемого раздела фракций (примечание 13) и испаряют продукт реакции содержится в 131—250 мл элюата. Выход 0,1329 г (74,5% в расчете на кислоту). [c.532]

Невозможно привести исчерпывающий перечень растворителей, которые использовались для разделения аминов методами хроматографии на бумаге или в тонком слое, но наиболее пригодными оказались следующие а) н-бутанол-уксусная кислота-вода (4 1 1 или 12 3 5) б) изопропанол-конц. NH3 -вода (8 1 1 или 20 I 2) в) трет-имкловъш спирт- 17%-ный водный метиламин (4 1) г) в ио )-бутанол -пиридин-уксусная кислота-вода (604 10 41 100) д) этанол вода-КНз (18 1 1) е) метанол-вода-пиридин (20 5 1) ж) и/>< и-бутанол-вода-метилэтилкетон-диэтиламин (10 10 5 1). [c.382]

Эфирорастворимые ДНФ-аминокислоты также могут быть разделены с помощью двумерной хроматографии на силикагеле в следующих системах растворителей 1) толуол — пиридин — эти-ленхлоргидрин — 0,8 н. ЫН ОН (100 30 60 60), верхняя фаза используется в качестве элюента при хроматографии, нижняя — для предварительной обработки слоя носителя 2) хлороформ — бензиловый спирт — уксусная кислота (70 30 3) 3) бензол — -пиридин — уксусная кислота (80 20 2) 4) хлороформ — метанол— уксусная кислота (95 5 1). [c.236]

Очень чувствительным методом идентификации аминокислот является тонкослойная хроматография их диметиламинонафталин-5-сульфонильных производных (гл. ХП1). Для фракционирования их на силикагеле можно, например, воспользоваться следующими системами растворителей хлороформ — бензиловый спирт — уксусная кислота (100 30 3) бензол — пиридин — уксусная кислота (80 20 2) 2-бутанон — пропионовая кислота — вода (15 5 6). [c.237]

Тонкослойная хроматография успешно применяется для идентификации ДНФ-аминокислот. По сравнению с хроматографией на бумаге этот метод более чувствителен и требует меньших затрат времени. Чаще всего смеси разделяют в силикагеле в следующих системах растворителей [2] а) толуол — пиридин — этиленхлор-гидрин—аммиак (0,8 М) (100 30 60 60) эта система гетероген-на, верхняя фаза используется для хроматографии, нижняя — для уравновешивания адсорбента б) хлороформ—бензиловый спирт— уксусная кислота (70 30 3) в) бензол — пиридин — уксусная кислота (80 20 2) г) хлороформ—метанол—уксусная кислота (95 5 1). Для идентификации достаточно примерно 0,2—0,5 мкг ДНФ-аминокислоты. Распределение ДНФ-аминокислот при двумерной хроматографии в различных системах растворителей показано на фиг. 61. [c.270]

Агрегатное состояние и растворимость моносахаридов и их производных определяются, в первую очередь, наличием в их молекулах большого числа сильнополярных гидроксильных групп, способных к образованию водородных связей. Поэтому подавляющее большинство моносахаридов представляет собой нелетучие вещества, легко растворимые в воде, диметилформамиде или диметилсульфоксиде, умеренно растворимые в низших спиртах, пиридине и уксусной кислоте и практически нерастворимые в таких обычных органических растворителях, как эфир, бензол, хлороформ, диоксан, тетрагидрофуран, этилацетат и т. д. Однако производные моносахаридов, в которых гидроксильные группы замещены (метиловые эфиры, ацетаты, триметилсилилпроизводные, некоторые алкил-иденовые производные), достаточно летучи, и их можно очищать перегонкой или возгонкой в вакууме. Для анализа этих производных может быть применена газо-жидкостная хроматография. [c.49]

Часто требуется несколько видоизменить процедуры силилирования. Многие соединения не успевают полностью силилироваться за 5 мин (например, из-за пространственной затрудненности гидроксильной группы) в этих случаях приходится увеличивать продолжительность реакции. В таких случаях можно через определенные интервалы времени отбирать пробы реакционной смеси, вводить их в газовый хроматограф и отмечать пробу, для которой хроматографический пик целевого соединения максимален. Время, прошедшее с момента начала реакции до момента отбора отмеченной пробы, и принимается за необходимую продолжительность реакции. При анализе кетонов могут возникнуть трудности, связанные с тем, что кетоны частично взаимодействуют с реагентом с образованием ТМС-эфиров в енольной форме. Поэтому при анализе стероидов [53] предлагалось перед силилированием превращать их в метоксимные производные [52], В реакциях силилирования широко используют пиридин, поскольку он является прекрасным растворителем и действует как акцептор НС1 в реакциях с использованием хлорсиланов. Кроме пиридина используют и такие растворители, как диметилсульфоксид, диметилформамид, тетра-гидрофуран и ацетонитрил. Иногда, особенно при анализе малых проб с малой концентрацией определяемых соединений, реакцию ведут без использования растворителя. Всегда желательно избегать присутствия влаги в некоторых случаях это даже необходимо, так как многие ТМС-производные легко гидролизуются водой, причем происходящие в результате этого потери производных могут сделать невозможным количественный анализ и вызвать появление ложных хроматографических пиков. [c.50]

ПАР и ПАН-2 использованы для обнаружения Сс1, Си, РЬ и 2п [877] при хроматографическом разделении на бумаге, ПАР и ПАН-2 — для обнаружения В1, Сё, Со, Си, Мп, N1, РЬ, У(У), и(У1) [736] и 2п (ПАН-2) [658] при их разделении методом тонкослойной хроматографии. При анализе воды и лекарственных препаратов ионы Сё, Со, Си, Hg, N1, РЬ и 2п разделяют на катионообменных бумагах Амберлит 5А-2 или У А-2 , а затем обнаруживают при помощи ПАН-2 или ПАР [97]. Фуимото [637] отмечал, что сорбирование ионов смолами, а затем обнаружение при помощи ПАН-2 или ПАР понижает предел обнаружения В], Hg(И), N1, Рс1, Т1(П1) и У(1У, V) до рО < 8,7, в то время как без сорбции рО = 6,5—7,0 рВ — отрицательное значение логарифма предельного разбавления). Пиридиновые азосоединения широко применяются в качестве проявителей в тонкослойной хроматографии. Используют пластинки с гипофосфитом циркония [704] (разделяют и обнаруживают с помощью ПАН-2 лантан и иттрий), силикагелем [879] (разделяют и обнаруживают Со, Си, N1 с помощью ПАН-2), с целлюлозой МЫ-ЗОО-НК и силикагелем [736] (разделяют В , Сс1, Со, Си, Мп, N1, РЬ, У(У) и и(У1), подвижный растворитель СН3СОСН3—1-СЭН7ОН—СНзСООН—НС —НаО, проявитель — ПАН-2 или ПАР). На пластинках Силуфол на основе силикагеля [646] разделяют Со, Си, Ре, N1 и затем обнаруживают с помощью ПАН-2. Метод применяют для определения элементов в нитратах бария и стронция, хлоридах кальция, аммония и гидрокарбонате аммония. На целлюлозе МЫ-ЗОО-НК, пропитанной хлороформным раствором анионообменника — хлоргидрата Прайамина 1М-Т, отделяют цинк и обнаруживают его реагентом ПАН-2 [658]. Разработан метод обнаружения РО4 , В1, 5Ь, Н 2,6-диамино-З-фенилазо-пиридином [687]. [c.184]

Качество полученных азотолов характеризуют бумажной хроматографией. Для этого хроматографическую бумагу сначала обрабатывают 10 /о-ным раствором 1-бромнафталина в хлороформе. После того как растворитель испарится, наносят микрокаплю 0,5— 1 %-ного испытуемого раствора арилида в 50%-ном водном растворе пиридина или бензола. Элюирование ведут 1-бромнафталином, насыщенным 80%-ной уксусной кислотой. Сушат хроматограмму иа воздухе при комнатной температуре, а просматривают при ультрафиолетовом освещении или проявляют О, 1%-ным раствором 1-диазо-2-хлор-4-нитробензолом, с которым азотолы дают красное окрашивание. Проявление можно вести также и другими диазосоединениямн. [c.103]

По разделению методом хроматографии па бумаге часто встречающихся в растительном царстве смесей тритерпенов имеется сравнительно мало работ [77]. Чеше с сотрудниками подробно изучили методом ХТС тритерпе-новые кислоты и ряд нейтральных тритерпеновых производных [77]. Используя уже простейшие смеси растворителей, например бензол и метилеихлорид, получают в случае нейтральных тритерпеноидов очень хорошее разделение на слоях силикагеля Г. Для разделения тритерпеновых кислот следует, по-видимому, применять более полярные растворители, например смесь диизопропиловый эфир — ацетон (75 30). В случае некоторых кислот имеет место образование хвоста, которое в большинстве случаев можно устранить добавкой пиридина или, лучше, диэтиламипа. [c.202]

Разделение субстантивных красителей для целлюлозы и шерсти, согласно Меккелю и сотрудникам [24], можно осуществить на щелочных слоях силикагеля Г и окиси алюминия Г, как это впервые было предложено Шталем [51 ]. Для приготовления массы адсорбент смешивают с равным количеством 2,5%-ного раствора карбоната натрия вместо воды. Растворителем служит свежеприготовленная смесь бутилацетат — пиридин — вода (50 -Ь 45 -Ь + 25). На щелочных слоях силикагеля Г разделение более четкое, чем на слоях окиси алюминия Г. Минимально определяемое количество примерна в 10 раз меньше, чем в случае применявшегося до сих пор метода хроматографии на бумаге. Исследуемые красители (например, сириусы, палатины, бен-заминовые красители) состоят в большинстве случаев из нескольких различно окрашенных компонентов. [c.350]

Дульцит, маннит и сорбит удовлетворительно разделены только Вальди [9] методом бумажной хроматографии. Маннит отделяют от сорбита и дульцита на бумаге 8 < 8 2043Ь, пропитанной хлористым калием, в течение 50 час растворитель этилацетат — пиридин — вода (60+30+10). Дульцит от маннита и сорбита отделяют на непропитанной бумаге проточным методом (48 час), исполь-ауя смесь этилацетат — пиридин — вода (14+5+1). Слой мелкозернистой целлюлозы для этой цели пока еще не применяли. [c.458]

Во многих случаях гораздо более удобным и столь же эффективным является метод разделения фаз. Водный раствор неионогенного ПАВ (обычно приблизительно 20%-ный) помещают в делительную воронку,нагревают выше точки помутнения, дают отстояться до разделения фаз и удаляют водную фазу. Оставшуюся жидкость, обогащенную ПАВ, снова растворяют в воде и этот процесс повторяют несколько раз, воспроизводимую хроматограмму самого ПАВ, очень важно правильно выбрать проявляющий растворитель и регулировать температуру. Накагава и Наката [79 ] рекомендуют применять метод всплывающего слоя с использованием в качестве растворителя жидкости, образующейся при смешении и встряхивании н-бутанола, пиридина и воды (в объемном отношении 5 2 5). Эти авторы провели хроматографирование 26 типов продажных неионогенных ПАВ при 0° (в холодильнике). Следы ПАВ и сопровождающего их этиленгликоля становились видимыми после обработки модифицированным реактивом Драгендорфа и I2 — амилозы. В качестве примера установленной ими зависимости между Rf ж значениями ГОБ на рис. 73 приведены соответствующие кривые. Алифатические спирты нормального строения при длине цепи не более 14 углеродных атомов, а также MOHO-, ДИ-, три- и до тетраэтиленгликолей моншо определять с помощью газо-жидкостной хроматографии. Например на хроматограмме продажного полиоксиэтилендодецилового эфира имеется такой же пик, как и у додеканола [92]. Этот пик исчезает, если [c.190]

Триметилсилиловые производные [375] получают по следующей методике (см. также разд. 11.2.1.1.2.2). К 5—10 мг метиловых эфиров оксикислот добавляют 0,5 мл пиридина, 100 мкл гексаметил-дисилазана и 40 мкл триметилхлорсилана. Раствор встряхивают 60 с, фильтруют через пористый стеклянный фильтр (удаление образовавшегося хлорида аммония) и растворитель отгоняют в вакууме. Остаток разбавляют хлороформом и подают на газовый хроматограф. По данным работы [375], превращение метилового эфира 12-окси- стеариновой кислоты в трифторацетатные и триметилсилиловые производные является количественным, превращение метилового эфира рининолевой кислоты сопровождается некоторым разложением. Это следует принять во внимание при введении поправочного коэффициента в расчет количественного состава по хроматограмме. [c.166]

Теория. Механизм хроматографии на бумаге явился предметом длительной дискуссии. Консден, Гордон и Мартин рассматривали хроматографию на бумаге как простую форму жидкостной распределительной хроматографии, в которой фильтровальная бумага является инертным носителем неподвижной водной фазы. Позже авторы сами раскритиковали эту точку зрения, поскольку во многих случаях разделение достигается при использовании водорастворимых растворителей — этанола и пропано-ла, ацетона, пиридина или даже чистой воды. Однако Мартин пришел к выводу, что удерживаемая целлюлозой вода скорее сравнима с концентрированным раствором глюкозы или полисахаридов, чем с водой, насыщенной органической фазой. Аналогичным образом Гейнс и Ишервуд рассматривают неподвижную фазу как комплекс воды с целлюлозой. Этот вопрос был критически проанализирован Муром и Стейно.м По-видимому, в хроматографии на бумаге имеют значение как адсорбция, так и процессы распределения, во всяком случае Штамм и Цолин-гер определенно установили это в случае азокрасителей. [c.562]

На силикагеле удалось отделить бензойную кислоту от ее метилированных производных — толуиловых кислот [83]. В качестве элюирующего раствора использовали бензол — пиридин (85 15) хроматография восходящая. После разделения кислот избыток растворителя удаляли в течение 1 ч при 115°С. Для проявления пятен пластинки обрабатывали 1%-ным раствором бромкрезо-лового зеленого в 90%-ном этаноле. Значения Кст этих кислот (по отношению к бензойной кислоте, подвижность которой принята за единицу) приведены ниже [c.56]

Эффективное разделение аминокислот в тонких слоях может быть достигнуто путем сочетания хроматографии и электрофореза [184]. Сорбент — целлюлоза MN-300 с толщиной слоя 0,25 мм, размер пластинок 20X40 см. В одном направлении по короткой стороне пластинки проводили нисходящую хроматографию в системе растворителей пиридин — этанол — вода (2 2 1) в течение 7,5 ч (за ходом хроматографии следили по передвижению пятна красителя — бриллиантового черного). После удаления растворителя слой сорбента пропитывали 0,025 М раствором буры и проводили электрофорез в перпендикулярном направлении при градиенте напряжения 10 В/см в течение 3 ч. [c.114]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология