Сахароза, восстановление

Реакция восстановления. Берут 3 микрохимические пробирки, в первую из них наливают 3 капли раствора мальтозы, во вторую — столько же раствора лактозы, а в третью — сахарозы. С содержимым каждой пробирки проделывают реакцию Троммера. Для этого добавляют в каждую пробирку по 1 капле раствора сульфата меди и по 2 капли раствора едкого натра. Нагревают пробирки и отмечают результаты. В первой и второй пробирках, где находились дисахариды мальтоза и лактоза, произошло восстановление меди (появилось желтое или красное окрашивание). В третьей пробирке, где налит раствор сахарозы, восстановления нет. [c.17]

Катализаторы (N1 30%, Си 5% N1 30%, Си 10% N1 16%, Си 10%) готовились осаждением карбонатов путем предварительной пропитки диатомита 10%-ным раствором углекислого натрия и последующей обработкой 10%-ными растворами сернокислых солей никеля, меди с последующим восстановлением в токе водорода при 350 °С. Уменьшение времени восстановления катализатора с 20 до 10 ч практически мало сказывалось на активности катализатора содержание глицерина в гидрогенизате не менялось, содержание гликолей возрастало с 34% (20 ч) до 44% к сухим веществам (10 ч). Катализатор, выгруженный в токе азота и углекислого газа, дает практически одинаковые результаты. Уменьшение скорости подачи водорода с 12 до 6 т /не сказывается на активности катализатора. При восстановлении шихты катализатора в течение 20 ч получен катализатор, расщепляющий углевод с содержанием в катализате высших полиолов 24%, глицерина 28%, гликолей 30% к сухим веществам. При гидрогенолизе 10%)-ного раствора сахарозы в течение 153 ч непрерывной работы получен гидрогенизат с содержанием глицерина 29%, глико-лей 34%, высших полиолов 18% к сухим веществам. [c.24]

Окисление сахарозы серной кислотой с образованием СОг, ЗОг и НгО. Напишите уравнения окисления и восстановления. [c.287]

Чистоту препарата определяют по отсутствию декстрина и сахарозы с помощью жидкости Фелинга после предварительного гидролиза (не должно происходить восстановления последней). [c.531]

Содержащиеся в пищевых продуктах жиры и углеводы служат основными источниками энергии. Чистые жиры обладают калорийностью (теплотой сгорания) 37,6 кДж-г-, чистые углеводы (сахар) имеют калорийность около 17 кДж-г (крахмал—17,5, сахароза—16,5 и глюкоза— 15,6). Калорийность пищевых продуктов определяют при помощи калориметрической бомбы, как описано в приложении VI. Третьей основной составной частью пищевых продуктов являются белки, необходимые главным образом для обеспечения роста и восстановления тканей. Взрослому человеку среднего роста необходимо получать ежедневно около 50 г белков. Обычно же человек потребляет несколько больше— 80 г калорийность этого количества составляет примерно 1400 кДж, поскольку теплота сгорания белка равна около 18 кДж-г . Таким образом, за счет жиров и углеводов человек должен получать около 10 600 кДж из 12 000 кДж, необходимых ему ежедневно. Обычно же человек за счет жиров получает около одной трети от общего количества необходимой энергии (100 г дает 3760 кДж), а за счет углеводов около 60%. Люди, выполняющие очень тяжелую физическую работу, например лесорубы или исследователи Арктики, нуждающиеся в усиленном питании, могут повысить суточное потребление жиров до 250 г жиры — более концентрированный источник энергии, чем углеводы. [c.406]

Конечно, для данной цели может быть также использована сахароза при раздельном процессе гидролиза и гидрирования с применением более дешевого катализатора (например, никелевого). Однако этот вопрос требует специального исследования. В настоящее время на витаминных заводах О-сорбит получают восстановлением Б-глюкозы путем гидрирования последней в присутствии катализатора. [c.245]

Задача 25.10. к-Пропиловый эфир 2-амино-4-нитрофенола — одно из самых сладких веществ, примерно в 5000 раз слаще обычного сахара — сахарозы. Это вещество можно получить из динитропроизводного восстановлением бисульфидом аммония. Приведите схему синтеза этого вещества, исходя из бензола или толуола и любых алифатических реагентов. [c.764]

Биосинтез начинается с фотосинтеза [1]. Вся жизнь на Земле зависит от способности некоторых организмов (зеленых растений, водорослей и фотосинтезирующих бактерий), содержащих характерные фотосинтезирующие пигменты, использовать энергию солнечной радиации для синтеза органических молекул из неорганических веществ — диоксида углерода, азота и серы. Продукты фотосинтеза служат затем не только исходными веществами, но и источником химической энергии для всех последующих биосинтетических реакций. Обычно принято описывать фотосинтез только как процесс образования углеводов в некоторых случаях основными продуктами фотосинтеза, действительно, являются исключительно крахмал, целлюлоза и сахароза, однако в других организмах на синтез углеводов идет, быть может, всего лишь третья часть углерода, связываемого и восстанавливаемого в процессе фотосинтеза. При ближайшем рассмотрении оказывается, что нельзя провести четкую границу между образованием продуктов фотосинтеза и другими биосинтетическими реакциями в клетке, в которых могут участвовать промежуточные вещества фотосинтетического цикла восстановления углерода. [c.396]

Химический метод определения сахарозы (по Сокслету). В основе этого метода лежит расщепление сахарозы иа глюкозу и фруктозу и восстановление последними ионов Си " до Си " в щелочной среде. Данный метод отличается от метода Бертрана тем, что в нем определенный объем реактива Фелинга титруют непосредственно вытяжкой, содержащей редуцирующий сахар. Индикатором является метиленовая синь, которая к концу титрования восстанавливается сахаром в щелочной среде в бесцветное лейкосоединение. По обесцвечиванию индикатора судят о конце титрования. [c.154]

Можно фотометрировать окрашенный в светло-желтый цвет раствор золя металлического серебра, образующийся после восстановления избытком сахарозы при pH 11,2 [956], тиосульфатом натрия [1020] и тиосульфатом в присутствии желатина [1215]. Следы ионов меди стабилизируют устойчивость золя серебра, полученного восстановлением окисью углерода из щелочных раство- [c.106]

Из водных растворов она выделяется в виде кристаллов с температурой плавления в пределах 145—148°. Сладость ксилозы составляет примерно 50% сладости сахарозы. Организмом человека она практически не усваивается. Эта особенность позволяет использовать ее в качестве сладкого вещества для больных диабетом. Организм травоядных животных усваивает ксилозу полностью. Она восстанавливает Фелингову жидкость приблизительно в такой же степени, как и глюкоза. Благодаря этому для количественного определения ксилозы в водных растворах обычно применяют методы восстановления меди, используемые при анализах глюкозных растворов. [c.364]

Восстановление углеводов с образованием, например из сахарозы, пропиленгликоля и глицерина [c.159]

Культуральные и физиологические признаки характер роста на мясо-пептонном бульоне, рост на косом мясо-пептонном агаре и специальном агаре, рост на мясо-пептонной желатине при посеве уколом на молочных и картофельных средах способность образовывать индол тип колоний (окраска, контуры, строение края и др.) отнощение бактерий к различным источникам углерода (глюкозе, лактозе, мальтозе, сахарозе, манниту, крахмалу, фенолу, различным альдегидам, спиртам и другим органическим соединениям), к различным источникам азота (пептону, аспарагину, мочевине, азоту аммонийному, нитратному) определяется также денитрифицирующая активность (восстановление нитратов до нитритов или молекулярного азота) отнощение к кислороду. [c.66]

Описываемая реакция была рассмотрена выше (см. опыт 60). Редуцирующие сахара, как альдозы, тащ и кетозы, легко окисляются окисью серебра в щелочном растворе. Сахароза окисляется этим реактивом лишь после инверсии (см. опыт 135). Восстановление серебра сахарами используется при изготовлении зеркал. [c.194]

Иммобилизованные клетки микроорганизмов применяют для биотрансформации органических соединений, разделения рацемических смесей, гидролиза ряда сложных эфиров, инверсии сахарозы, восстановления и гидроксилирования стероидов. Иммобилизованные хроматофорь используют в лабораторных установках для синтеза АТФ, а пурпурные мембраны — для создания искусственных фотоэлектрических преобразователей — аналогов солнечных батарей. Разрабатывается реактор на основе иммобилизованных клеток дрожжей для получения этанола из мелассы, в котором дрожжи сохраняли бы способность к спиртовому брожению в течение 1800 ч. Из более чем 2000 известных в настоящее время ферментов иммобилизована и используется для целей инженерной энзимологии примерно десятая часть (преимущественно оксидоредуктазы, гидролазы и трансферазы). [c.93]

Другие физиологические признаки (коагуляция и пептони-зация молока, разжижение желатины) вследствие неустойчивости к малой специфичности по решению Международного таксономического комитета были исключены из рекомендации для описания видов актиномицетов (Преображенская, 1966). Высказаны сомнения (Preobrazhenskaya, 1970) насчет ценности для систематики таких признаков как гидролиз крахмала,, инверсия сахарозы, восстановление иптратов, рост на клетчатке. [c.117]

Сорбит (D-глюцит) впервые обнаружен в 1872 г. в свежем соке ягод рябины. Широко распространен в природе — найден во фруктах (яблоки, слива, груша, вишня, финики, персики, абрикосы и др.), в красных морских водорослях. Раньше сорбит получали в промышленности электролитическим восстановлением глюкозы в настоящее время способ заменен каталитическим гидрированием глюкозы под давлением. Химическое восстановление глюкозы в сорбит осуществлено амальгамой натрия, а та.кже с помощью циклогексанола или тетрагидрофурилового спирта в присутствии никеля Ренея. Сорбит наряду с маннитом образуется при гидрировании фруктозы, инвертированного сахара и при гидролитическом гидрировании сахарозы. Сорбит может быть получен гидролитическим гидрированием крахмала и целлюлозы [12], кроме того, при восстановлении ла/ктонов О-глюкоиовой кислоты, а та,кже по реакции Канниццаро (2 молекулы глюкозы в присутствии щелочи и катализатора гидрирования диспропорциониру-ются в сорбит и глюконовую кислоту [13]). [c.12]

Пищевая промышленность широко использует спирты, получаемые восстановлением углеводов. Если принять сладость сахарозы за 100, то сладость эритрита оценивают в 238, -арабита — в 100, маннита — в 57, дульцита — в 74 [4]. Относительная сладость растворов полиолов зависит от их концентрации в растворе Камме-рер [5] приводит следующие данные о сладости растворов ксилита и сорбита в сравнении с растворами сахарозы и фруктозы (табл. 6.1). [c.177]

С,Н120в — самый распространенный моносахарид (углевод). Встречается в свободном состоянии особенно много ее в еиноградном соке, откуда другое название Г.— виноградный сахар. Г. входит в состав молекул крахмала, целлюлозы, декстрина, гликогена, мальтозы, сахарозы и многих других ди- и полисахаридов, из которых Г. получают как конечный продукт гидролиза. В печени человека из Г. синтезируется гликоген, в промышленности Г. получают гидролизом крахмала или клетчатки. При восстановлении Г. образуется шестиатомный спирт сорбит. Г. легко окисляется, дает реакцию серебряного зеркала. Г. широко применяется в медицине как вещество, легко усваивающееся организмом, при сердечных заболеваниях, шоковом состоянии, после операций. Г. [c.78]

Согласно современным представлениям, фотохимическая стадия Ф. заключается в поглощении хлорофиллом кванта света с переходом хлорофилла в восстановленное состояние вследствие присоединения к нему электрона или водорода из какого-либо восстановителя. Восстановленный хлорофилл с помощью нескольких последовательно действующих ферментов передает электрон или водород, а тем самым и поглощенную энергию на восстановление углекислоты. Что касается химизма фотосинтетиче-ского превращения углерода, то согласно современному представлению первичная фиксация СО2 происходит на углеводе, содержащем пять атомов углерода,— рибулозодифосфате, который при этом распадается с образованием фосфоглицериновой кислоты. Последняя восстанавливается до фосфоглицериново-го альдегида, который конденсируется с фосфодиоксиацетоном и образует фруктозодифосфат, а затем свободные сахара — гексозы, сахарозы и крахмал — в процессе, обратном гликолитиче-скому распаду. Очень важно, что растения могут осуществлять Ф. не только при естественном солнечном свете, но и при искусственном освещении, что дает возможность выращивать растения в разное время года. [c.269]

Возьмите две пробирки. Поместите в первую пробирку 1 каплю 1%-ного раствора сахарозы (25), добавьте I каплю 2 и. НС1 (28) и 6 капель воды (1). Нагрейте над пламенем горелки в течение 0,5—1 мин. Держите пробирку как можно более наклонно и все время встряхивайте ее, чтобы раствор не выбросило. Отлейте половину раствора во вторую пробирку и добавьте в нее 6 капель 2 н. NaOH (2) и 4—5 капель воды, чтобы высота слоя жидкости была 18—20 мм. Едкой щелочи добавляют с избытком, чтобы нейтрализовать кислоту, взятую для гидролиза, а также создать необходимую для реакции восстановления щелочную среду. [c.87]

Получение и применение. М. получают кислотным гидролизом полисахарвдов (напр., D-глюкозу-из крахмала, D-ксилозу-из богатых ксиланами отходов переработки с.-х. растений и древесины). Смесь глюкозы с фруктозой получают гидролизом сахарозы и используют в пшц. пром-сти. D-Глюкоза находит применение в медицине. Восстановление D-глюкозы в D-сорбит и D-ксилозы в ксилит осуществляют в пром. масштабах водородом над никелевым катализатором. Е>-Сорбит служит исходным соед. в синтезе аскорбиновой к-ты (см. Витамин С) и наряду с ксилитом используется как обладающий сладким вкусом заменитель сахарозы при заболевании диабетом. Разнообразные М. часто служат удобными хиральными исходными в-вами в синтезе сложных прир. соед. неуглеводной природы. [c.140]

Сладкий вкус этого соекинеиия (в 500—1000 раз интенсивнее-сладкого вкуса сахарозы) был открыт случайно при синтезе лизергиновой кислоты [137]. При этом 3-формилиндол конденсировали с этиловым эфиром 3.4-дегидро-3 гидрокси-1-метилпиперидинкарбоновой кислоты с последующим восстановлением промежуточного про, 1укта (гидрирование на платиновом катализаторе), дегидратацией и гидролизом конечного эфира (схема 3.24), [c.112]

Характеристика продукции, сырья и полуфабрикатов. Сахар — практически чистая сахароза (СиНгзОц), обладающая сладким вкусом, легко и полностью усваиваемая организмом, способствующая быстрому восстановлению затраченной энергии. Сахароза —- это дисахарид, который под действием кислоты или фермента расщепляется на глюкозу и фруктозу (инвертный сахар). Сахароза может находиться в двух состояниях кристаллическом и аморфном. По химической природе сахар является слабой многоосновной кислотой, дающей с оксидами щелочных и щелочноземельных металлов соединения — сахараты. [c.59]

Раствор сахарата меди, полученный в опыте 70, осторожно нагрей- те над пламенем микрогорелки так, чтобы нагревалась только верхняя часть раствора, а нижняя оставалась холодной для контроля. Нагре- вайте только до кипения. Как можно было ранее убедиться (см. оп" . 63), глюкоза при этих условиях давала отчетливую реакцию восстановления (проба Троммера положительная). Сахароза же в этих условиях не дает реакции восстановления, что указывает на отсутствие свободной альдегидной группы. Формула строения сахарозы вполне согласуется с этим фактом, доказывающим, что эфирная связь между глюкозой и фруктозой образована действи-j тельно за счет полуацетального гидроксила глюкозы, который может -давать альдегидную группу. [c.112]

Основной путь катаболизма углеводов включает в себя гликолиз моносахаридов - О-глюкозы и В-фруктозы, источниками которых в растениях служат сахароза и крахмал. Гликолизом называют расщепление молекулы гексозы на два Сз-фрагмента (схема 11.26). В итоге образуются две молекулы пировиноградной кислоты, а выделяющаяся энергия запасается в двух молекулах АТФ, синтез которых произошел в результате так называемого субстратного фосфорилирования молекул АДФ. Для регенерирования НАД, участвующего в гликолизе, молекулы его восстановленной формы должны отдать полученные от субстрата окисления электрон и протон. В роли их акцептора в обычных для растений аэробных условиях выступает молекулярный кислород. Выделяющаяся при переносе электронов от НАДН к О2 энергия также используется для фосфорилирования АДФ, которое называют окислительным фосфорилирова-нием. Это дает дополнительно еще 4 молекулы АТФ. [c.338]

Воду, сахар и дрожжи помещают в 5-л колБу, снаБженную капельной воронкой и соединенную со счетчиком пузырьков и, когда начнется энергичное брожение, из воронки медленно ири сильном перемешивании добавляют кетон, который, если это нужно, предварительно растворяют в небольшом количестве спирта. Часто и энергично взбалтывая, что совершенно необходимо при восстановлении высших кетонов, смсси дают стоять при комнатной температуре и, когда брожение ослабеет, что обычно происходит через 3—б суток, колбу ставят в термостат, нагретый до 37 . Когда весь сахар перебродит, что узнают по отрицательной пробе иа углеводы с фелинговой или остовской жидкостью, к смсси добавляют еще 200 г дрожжей и 200 г сахарозы. [c.81]

Фитохимическое восстановление а-дикетонов при помощи дрожжей (см. Элиминирование карбонильной группы и т. II, главу Восстановление ) протекает очень легко. Диацотил восстанавливается в /-2,3-бутиленгликоль с выходом около 35% теоретического количества. Реакцию ведут так же, как и при восстановлении альдегидов, монокетонов, нитросоединеннй и т. д., т. е. прибавляют диацетил к энергично бродящему раствору сахарозы. Образовавшийся бутандиол отгоняют из перебродившей жидкости с паром в токе углекислоты и затем очии ают тщательной фракциопировкой. [c.94]

Молибдат аммония. Реагент 20 мл 10%-ного раствора молибдата аммония смешивают с 3 мл НС1, затем добавляют 5 г NH4 I. Бумагу опрыскивают этим реагентом. Любой неорганический фосфат или легко гидролизуемый органический фосфат сразу же дает желтые пятна. Прогревают при 75 °С в течение 15 мин. Восстанавливающие вещества дают синие пятна на белом фоне в результате восстановления молибдата до молибденового синего. Для глюкозы чувствительность 2 мкг. Кетозы гораздо легче определяются, чем альдозы. Сахароза также дает положительную реакцию. [c.399]

Пример расчета. Для определения суммарной активности ферментов была взята навеска муки (5,39 г) и приготовлено 100 мл болтушки. Из данного объема отобрано 5 мл фильтрата, который дополнительно разбавлен еще до 100 мл. Из последнего раствора для опыта взято 5 мл, что соответствует количеству ферментов, содержащихся в 0,0135 г муки. На титрование в рабочем опыте (среднее из двух определений) пошло 17,85 мл 0,05 н. раствора КМПО4 с поправкой 0,9789, в контрольном — 0,69 мл. Количество восстановленной меди вычисляют по формуле (см. Определение активности сахарозы ) [c.99]

Ферментативная активность. При изучении биохимических особенностей культуры определяют активность протеиназ по разжижению желатины (скорость и характер разжижения при уколе столбика желатины, рис. 12) свертывание и пептонизацию молока (отмечается кислотное свертывание по покраснению синей лакмусовой бумаги с образованием устойчивого сгустка и коагуляции с последующей пептонизацией), а также пептонизацию без предварительного свертывания и скорость изменения молока активность амилазы по величине зоны гидролиза крахмала (проба с раствором Люголя на 3—4-е сутки посева культуры штрихом на крахмалоаммиачном агаре) активность целлюлозы по степени распада клетчатки на среде Гетчинсона активность р-фруктофуранозидазы (инвертазы) по гидролизу сахарозы (с помощью реактива Фелинга ) активность уреа-зы по накоплению аммиака (используется реактив Нес-слера), нитратредуктазы по восстановлению нитрата (на среде Гильтая) до нитрита (нитрит проверяют в кислой среде реактивом цинк-йод-крахмалом). [c.82]

Арван и Теренин [2] показали, что формамид, пиридин и сахароза сенсибилизируют фотохимическое восстановление тиазиновых красителей. Ими показано, что сенсибилизирующее воздействие оказывают люминесци-рующие красители, в частности сафранин Т, акридиновый оранжевый, акридиновый желтый и др. Вейсс [411] установил, что фотохимическое поведение флуоресцирующих красителей аналогично фотохимическому поведению ypana(VI). Кроме урана(У1) фотохимическое окисление железа(П), иодидов, сульфитов и арсенитов сенсибилизируют также эозин, сафранин, метиленовый голубой, флуоресцеин. Многие из этих реакций можно использовать для разработки фотокинетических методов определения участвующих в них веществ. [c.97]

Для количественного анализа смеси сахаров нами разработан боргидридно-ноляриметрический метод. Этот метод можно использовать, например, для анализа смесей сахарозы и глюкозы. Не имея альдегидной группы, сахароза не реагирует с боргидри-дом натрия или калия, таким образом, ее оптическое вращение в процессе обработки этим реактивом не меняется. Глюкоза же под действием боргидрида восстанавливается в сорбит, оптическое вращение которого практически равно нулю. Таким образом, оптическое вращение смеси до восстановления равно сумме вращений сахарозы и глюкозы, а оптическое вращение после восстановления создается только сахарозой. Два измерения вращения (до и после обработки боргидридом) дают необходимые данные для расчета состава смеси. Несколько по-иному строится анализ смеси глюкозы и фруктозы. Здесь оба сахара способны восстанавливаться боргидридом. Восстановление должно быть проведено в его количественном варианте оно позволяет определить сумму сахаров. Соотношение глюкозы и фруктозы в смеси определяется по величине вращения. Относительная ошибка в этих определениях 1 — 3%. [c.319]

Косвенный атомно-абсорбционный метод определения миллиграммовых количеств иода в органических соединениях основан на его осаждении в виде иодида серебра и определении количества осажденного серебра. В микростакан помещают навеску пробы, содержащей около 50 мг иода, 3 г пероксида натрия, 250 мг нитрата калия и 100 мг сахарозы, переносят в микробомбу и нагревают на микрогрелке. Полученную массу растворяют в 50—60 мл воды, кипятят до разложения образованного пероксида водорода, раствор переводят в мерную колбу вместимостью 100 мл и доливают воду до метки. К 10 мл раствора добавляют серную и азотную кислоты до окрашивания метилового оранжевого в розовый цвет, для восстановления Юз до 1 добавляют 10 мг сульфата гидразина и выдерживают 15 мин на кипящей водяной бане. Иод осаждают избытком 0,005 Л1 раствора нитрата серебра, осадок отфильтровывают на фильтре синяя лента, промывают водой, сразу растворяют в 10%-ном растворе иодида калия, доводят объем раствора водой до 100 мл, разбавляют еще в 10 раз 10%-ным раствором иодида калия и измеряют абсорбционный сигнал серебра по линии [c.261]

Ход работы. С 5—10%-ным раствором сахарозы сделать пробы Подобедова — Молиша и Селиванова. Затем раствор сахарозы нагреть с- реактивом Фелинга. Восстановления при этом не наблюдается. 5—10 мл раствора сахарозы нагреть несколькими каплями 10%-ной серной кислоты. По охлаждении жидкость осторожно нейтрализовать, разделить на две части и с полученным гидролизатом сделать пробы Фелинга и Барфёда. Результат проб положительный, что указывает на образование в результате гидролиза моносахаридов. [c.92]

Гидролиз сахарозы даст О-глюкозу и О-фруктозу. Сама сахароза не восстанавливает при нагревании реактивы Фелинга и Барфёда, а продукты ее гидролиза восстанавливают (см. работы 45 и 46), и по реакции восстановления можно судить о наличии процесса гидролиза. [c.93]

В две пробирки поместить по 1 мл полученного раствора фермента, добавить по 5 мл 1%-ного раствора сахарозы и поставить в термостат при 38° С. Параллельно поставить такой же опыт с 1 мл прокипяченного раствора фермента. Через 15—20 мин к содержимому первой пробирки добавить равный объем реак- тива Фелинга, а во вторую — реактива Берфёда и нагреть до-кипения. Образование красного осадка закиси меди указывает на присутствие/)-глюкозы и >-фруктозы, получившихся в результате гидролиза сахарозы. В контрольном опыте восстановления нет. [c.93]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология