Хроматография высших сахаров

Международные центры торговли мелассой расположены в г. Новый Орлеан (штат Луизиана, США). Цены на нее обычно определяются по франко-борту (f.o.b.) Новый Орлеан за тонну с плотностью 79,5° по Бриксу и общим содержанием сахаров в пересчет на инвертный сахар около 45%. С появлением жидкостной хроматографии высокого разрешения стало возможным проводить анализ мелассы на содержание сахарозы, глюкозы и фруктозы. В настоящее время торговцы мелассой в Новом Орлеане заключают контракты на поставку мелассы предприятиям, осуществляющим дистилляцию, по фактическому содержанию сахаров, а не в пересчете на инвертный сахар, ходя приемлемы оба вида анализов [5]. [c.340]

Пентозы и гексозы являются нелетучими, и при сильном нагревании они фактически обугливаются. Если, однако, все их гидроксильные группы заместить метоксильнЫми, они будут элюироваться из хроматографических колонок примерно за 20—60 мин при температуре 150° без термического разложения. В области газовой хроматографии производных сахаров проведено сравнительно мало работ, но эта область является весьма привлекательной для будущих исследователей вследствие большого числа возможных изомеров, а также благодаря высокой разделительной способности метода. [c.549]

Преимуществом колоночной хроматографии является возможность количественного фракционирования больших количеств веществ без превращения их в какие-либо производные. Однако хорошее разделение часто возможно лишь при малых скоростях элюирования, поэтому были разработаны новые виды колоночной хроматографии. Методы аффинной и адсорбционной хроматографии основаны на избирательной адсорбции молекул на нерастворимом адсорбенте, который содержит группы (молекулы), специфически взаимодействующие с молекулами подлежащих очистке соединений, например ингибиторы (для очистки ферментов) или антитела (для очистки антигенов) в настоящее время эти методы нашли широкое применение и для разделения углеводов. Невзаимодействующие с адсорбентом примеси удаляются, а связанный с адсорбентом сахар затем десорбируют способом, не приводящим к его разрушению. Десорбцию можно осуществить, изменяя pH, ионную силу среды или применяя соответствующий ингибитор взаимодействия, удерживающего вещество на адсорбенте. Для разделения ряда полисахаридов были использованы иммобилизованные формы (см. разд. 26.3.7.6) конканавалина А [40], являющегося фитогемагглютинином (лектином), который специфически взаимодействует с разветвленными полисахаридами определенного строения в настоящее время применяют и другие иммобилизованные фитогемагглютинины. Колоночная хроматография на носителях, покрытых полиароматическими соединениями [41], также находит применение для разделения полисахаридов. Благодаря достижениям в производстве носителей для жидкостной хроматографии под высоким давлением можно осуществить хроматографическое разделение быстро и избирательно описаны методы фракционирования небольших олигосахаридов, продолжающегося менее 1 ч [42]. [c.224]

Отработанные сульфитные щелока можно использовать непосредственно Б разбавленном или концентрированном состоянии, а также в виде сухого остатка. Для многих целей предпочитают получать очищенные продукты — выделенные лигносульфоновые кислоты или чаще их соли. Для очистки от сопутствующих веществ применяют несколько способов. Углеводы удаляют с помощью процессов брожения (см. 18.5), после чего остаются сравнительно чистые лигносульфонаты. Для получения лигносульфонатов кальция, не содержащих сахаров, с высоким выходом (90—95 %) используют двухступенчатый процесс Говарда—осаждение лигносульфонатов известью [96, 1361. Сахара и другие низкомолекулярные вещества сульфитных щелоков можно удалять ионообменной хроматографией [53, 137], гель-проникающей хроматографией [103], ультрафильтрацией [151 или электродиализом [39]. [c.419]

Ионообменники могут быть выполнены как на основе силикагеля, так и на полимерной основе. Механизм разделения в ион-эксклюзионной хроматографии определяется эксклюзией по Доннану, стерической эксклюзией и сорбционными процессами [3]. В этом методе в качестве ионообменника используется сульфированный полистирольный материал высокой емкости. Ион-эксклюзионная хроматография применяется для разделения слабых неорганических и органических кислот. Сильные кислоты не удерживаются и элюируют неразделенными, как несорбируемые компоненты. В комбинации с подходящими методами детектирования этот метод может применяться для разделения и определения аминокислот, спиртов, альдегидов и сахаров. [c.326]

Гликозиды метилированных сахаров, благодаря летучести в высоком вакууме, используются для газожидкостной хроматографии и масс-спектрометрии. Неуглеводная часть молекулы, т. е. группа, замещающая протон гидроксильной группы, называется агликоном. [c.229]

Обзор по любому аспекту газожидкостной хроматографии (ГЖХ) значительно обогащается, если ему предшествует относительно короткая история предмета. В 1950 г. подобный обзор был бы совсем коротким. Он содержал бы единственную ссылку на утверждение Мартина и Синга, относящееся к 1941 г. Подвижная фаза не обязательно должна быть жидкостью, она может быть и паром... Можно, следовательно, осуществлять очень тонкие разделения летучих веществ в колонке, в которой сквозь слой геля, пропитанного нелетучим растворителем, течет постоянный поток газа... [1]. В 50-х годах произошло значительное развитие теории, методов и применений ГЖХ. Однако в статье, написанной в 1960 г., кроме того факта, что методы ГЖХ нашли широкое признание в анализе жирных кислот (и в гораздо меньшей степени при определении метилированных сахаров), содержалось бы относительно мало информации, которая могла бы возбудить повышенный интерес любого химика, кроме восприимчивых ко всему новому и полных воображения биохимика и химика-фармацевта . Оказалось, что больше всего усилий в развитии метода было приложено в области анализа углеводородов. Именно в 1960 г. была впервые продемонстрирована возможность успешного применения ГЖХ для анализа биологически активных соединений с большим молекулярным весом. Оказалось, что методы, созданные для анализа стероидов [3], применимы и для анализа алкалоидов [4]. Вследствие этого в течение последующих нескольких лет колонки с сорбентами, с небольшим содержанием высокотемпературной неподвижной фазы на дезактивированных носителях, а также с ионизационными детекторами высокой чувствительности применили для разделения большого числа разнообразных природных и синтетических веществ, представляющих интерес с точки зрения биологии. Среди исследованных веществ были аминокислоты, ароматические кислоты, витамины, растворимые в жирах и маслах, сахара, биогенные амины, различные лекарственные препараты и другие [5]. В последнее время благодаря применению реагентов, которые позволяют полу- [c.282]

Возможность применения высокоэффективных хиральных неподвижных фаз при количественном расщеплении кислот, сахар< , аминов, спиртов и родственных классов соединений может в будущем привести к возрастанию роли газовой хроматографии в точном определении высокой э. ч. (95% < э. ч. < 99,9%) продуктов, получаемых в ходе асимметрического синтеза, в ходе кинетических расщеплений или в ферментативных реакциях. [c.90]

Для разделения полученных после гидролиза или метанолиза метиловых эфиров моносахаридов ли их метилгликозидов применяют различные виды хроматографии распределительную хроматографию на бумаге и колонках с целлюлозой, тонкослойную хроматографию на силикагеле. Высокой разрешающей способностью при использовании небольших количеств веществ обладает га зо-жидкости а я хроматография. Перед анализом смесь, содержащую метиловые эфиры моносахаридов, дополнительно ацетилируют или метилируют для повышения летучести производных моносахаридов. Этим методом удается разделить не только метилированные сахара, но и а- и р-аномеры. [c.82]

Важнейшей областью применения электрофореза является анализ биоколлоидов, например анализ смесей белков в клиническом анализе. Белки, как амфотерные полиэлектролиты, обладают собственными зарядами, зависящим от pH среды. Регулируя значение pH, можно в широких пределах менять их подвижность и даже изменить направление движения в процессе электрофореза. Для каждого белка при определенном значении pH общее число положительных зарядов равно общему числу отрицательных зарядов. Эта изоэлектрическая точка, при которой отсутствует движение частиц, является характерной величиной для определенного белка. Растворимость белка в этой точке минимальна. Подбирая соответствующие буферные растворы для установления определенной скорости движения и растворимости веществ, можно приспособить процессы электрофореза для решения разных проблем разделения веществ. Таким образом, электрофорез превосходит метод бумажной хроматографии. Кроме того, при помощи электрофореза, особенно при высоком напряжении, можно проводить разделение неионогенных веществ (например, сахар в виде боратного комплекса) [79]. Методом электрофореза можно также определять изоэлектрические точки амфотерных веществ или заряды коллоидных частиц (по направлению движения). [c.387]

Анализ смеси ТМС-производных сахаров, которые элюируются при высоких температурах, рекомендуется проводить на двухколоночном газовом хроматографе с пламенно-ионизационным детектором. Самописец должен быть снабжен интегратором. [c.10]

Смолы, применяемые в распределительной хроматографии, представляют собой сильноосновные аниониты или сильнокислые катиониты, основу которых составляет сополимер стирола и дивинилбензола (например, дауэкс Х-8). В аналитических колонках, диаметр которых равен 2—6 мм, а скорости элюирования высокие (8—20 мл-см - мин ), рекомендуется использовать мелкозернистые смолы с размером частиц 8—13 или 10—15 мкм. Для препаративного разделения сахаров на широких колонках (диаметр 12—25 мм) и при меньшей скорости элюирования (1—5 мл-см -мин- ) можно применять более грубые смолы. [c.60]

Определение структуры гликопротеинов требует (как и в случае других молекул) их предварительной очистки, которая может быть достигнута с помощью методов, обычно применяемых для белка. Для очистки некоторых гликопротеинов оказалось весьма плодотворным также применение аффинных колонок с лектинами (см. ниже). Углеводный состав гликопротеинов определяли после кислотного гидролиза при помощи газожидкостной хроматографии—масс-спектрометрии (ГЖХ—МС). Для изучения детальной структуры олигосахаридных цепей было опробовано множество различных методов. Наиболее эффективной оказалась комбинация ГЖХ—МС и ЯМР-спектрометрии с высоким разрешением. Особенности связей между сахарами в гликопротеинах (рассмотрение которых не входит в задачу данной главы) имеют фундаментальное значение для структуры и функций этих молекул. [c.300]

Общее содержание сахаров измеряют по методу Лейна-Эйнона Lane-Eynon), принятому в качестве стандартного теста на содержание сахаров в мелассе. Для оценки содержания сбраживаемых сахаров (сахарозы, фруктозы и глюкозы) все чаще применяется жидкостная хроматография высокого разрещения HPL ). Плотность по Бриксу измеряют с помощью ареометра Брикса в водном растворе мелассы (1 1). Корреляция между плотностью и содержанием сахара в мелассе низка из-за высокой концентрации несбраживаемых растворенных сухих веществ. [c.355]

Из сорбентов, указанных в разд. 7.2.1, только силикагель обладает механической прочностью, обеспечивающей возможность проведения хроматографии при высоких давлениях, характерных для современной ВЭЖХ. Действительно, этот материал является в высшей степени подходящим носителем для ВЭЖХ по ряду причин [9], и в настоящее время подавляющее большинство подобного рода разделений проводится на колонках с тон-коизмельченным силикагелем или его производными подходящей полярности, полученными в результате химической модификации силикагеля. Хроматография углеводов не составляет исключения. Высокая полярность немодифицированного силикагеля препятствует его применению в хроматографии незамещенных сахаров, однако химическая обработка поверхности силикагеля позволяет получить производные, отвечающие всем требованиям ВЭЖХ свободных углеводов. Разработка сорбентов, в которых подходящая для распределительной хроматографии сахаров фаза присоединена к тонкоизмельченному силикагелю, устраняет необходимость получения производных, за исключением тех случаев, когда эта процедура имеет несомненные преимущества (см. разд. 7.2.2.1). Такого рода сорбенты в настоящее время широко используются при анализе углеводов. [c.7]

Подбор подходящего растворителя очень важен при хроматографии на бумаге. Для разделения на бумаге растворитель должен до некоторой степени смешиваться с водой, поскольку фронт образуется при адсорбции воды бумагой в процессе продвижения растворителя. Однако использование большого количества воды нежелательно, а применение чрезмерно насыщенных водой органических растворителей может привести к получению плохих хроматограмм. Как правило, растворитель не должен содержать более 10—20 вес.% воды. С другой стороны, имеются растворители, смешивающиеся с водой в любых отношениях, в которых процентное содержание воды может быть выше например, были использованы изопропаноловые смеси, содержащие до 40—50% воды. Растворители с низким давлением пара неудовлетворительны, потому что могут мешать окраске хроматограммы или способствовать распространению растворенных веществ на большую площадь, что приводит к образованию плохих хроматограмм. Коллидин, например, нельзя употреблять с йодоплатиновым индикатором для метионина, потому что, даже если прогреть хроматограмму в течение 1 часа при 120°, следы коллидина, остающиеся на бумаге, обесцвечивают индикатор. Растворители с высоким давлением пара следует употреблять с осторожностью, так как они чувствительны к колебаниям температуры и имеют тенденцию к испарению с бумаги или к конденсации на бумаге, что вызывает фазовые нарушения, если температура тщательно не регулируется. Растворитель не должен быть обязательно однородным веществом. Например, при хроматографии различных сахаров хорошими растворителями являются смесь бутанола с уксусной кислотой и смесь этилацетата с пиридином, насыщенная водой. В табл. 25 приведены некоторые растворители и индикаторы, использующиеся для некоторых типов органических соединений. Более подробную сводку можно найти в литературе [39]. [c.362]

Применение газожидкостной хроматографии для анализа углеводов некоторое время было ограничено трудностями, связанными с приготовлением летучих производных углеводов. Сами углеводы чаще всего являются нелетучими, разлагающимися при нагревании веществами и непосредственное их разделение газожидкостной хроматографией невозможно. Поэтому для анализа углеводов применяют главным образом их О-метиловые эфиры или ацетилиро-ванные производные [82—84]. Особенно широкое применение в химии углеводов получили 0-триметилсилилпроизводные сахаров вследствие их простого и быстрого синтеза с 100%-ным выходом и устойчивости при высоких температурах [33, 85—93]. [c.81]

II. Устойчив при pH = 1- 8, ВЭТТ до 0,1 мм, 12. Среднеполярный сорбент, пригоден для разделения неполярных и полярных веществ (соответственно методами распределительной хроматографии нормальной или с обращенными фазами), ВЭТТ до 0,1 мм. 13. Для разделения сильнополярных веществ, ВЭТТ до 0,1 мм. Устойчив в области pH от 2 до 8—9, в кислых средах проявляет анионообменные свойства с обменной емкостью 0,3—0,4 мг-экв/г. Сорбент не пригоден для хроматографий перекисей и веществ с карбонильными группами (аминогруппы окисляются первыми и образуют шиффовы основания со вторыми). 14. Для разделения сахаров и полиоксисоединений (возможно, подобен сорбенту № 13), ВЭТТ до 0,5 мм. В сильнокислой и сильнощелочной средах неустойчив. 18. Рекомендуется для разделения биологически активных веществ. 19. Селективен к арои атическим и нитросоединениям. 24 —28. Поставляются только в колонках. 26. Устойчив при pH = 2- 9. 31. ВЭТТ до 0,06 мм. 33. Термостойкость 70 °С. 34—39. Поверхность пористого стекла со средним диаметром пор от 4 (№ 34) до 250 (] Го 39) нм покрыта мономолекулярным (тофциной 1,8 нм) слоем углевода. Удельный объем пор (в см г) не менее 0,1 (№ 34), 0,4 (№ 35), 1,0 (№ 36, 37), 1,2 (№ 38), 1,5 (№ 39). 40. На основе стекла со средним диаметром пор 55 нм. 41, 42. Хелатные сорбенты С высокой специфичностью к неорганическим ионам. Приготовлены на основе аминированного пористого стекла с диаметром пор 55 нм для закрепления лиганда на стекле использована реакция диазотирования. Сорбент № 41 применяют для концентрирования и разделения Со, N1, Си, Ре, А1, 2г, Т1, V и других металлов. 44—48. Содержание привитой фазы 10—40 мкмоль/см , емкость поглощения белков до 10 мг/см . Поставляют в 50%-ной водной суспензии с антисептиком (1% толуола). 49—52. Предназначены для разделение полиароматических (№ 49) и галогенированных (№ 50) соединений, эфиров нитроцеллюлозы (№ 51) и биогенных веществ (№ 52). 57—58. Устойчивы при pH = 2- 9. 59, 60. Содержание привитых фаз около 40 мкмоль/см . [c.214]

Примечания. Тип бумаги Ц — целлюлозная (см. разд. 122), С — стекловолокнистая (см. разд. 125). 1—4. Стекловолокнистая бумага приготовлена без добавок свяаующего, отличается высокой скоростью движения растворителя и допускает проявление хроматограмм с помощью серной кислоты при нагревании до 200—300 °С. Бумага № 1 — с небольшим содержанием сорбента, рекомендована для хроматографии липидов и других неполярных соединений. Содержание сорбента в бумагах № 2—4 значительно больше, причем в направлении к одному краю листа pH немного возрастает. Рекомендованы для разделения полярных веществ сахаров, аминокислот, витаминов. Сорт бумаги № 4 предназначен для идентификации наркотиков. 6. Для препаративных работ. 8.9. Время капиллярного поднятия воды на 75 мм —22 и 15 мин (№ 8 и 9), бензола на 115 им — 30 мин. Средний диаметр пор силикагеля 11 нм. 11, 12. Бумаги соответственно аналитического и технического сортов. [c.247]

В простых и сложных триметилсилиловых эфирах нет взаимодействия за счет водородных связей, что имеет место в спиртах и карбоновых кислотах. Так, несмотря на возрастание молекулярной массы при образовании силилового эфира из спирта (или кислоты) не всегда происходит возрастание температуры кипения. Например, низшие спирты — метанол и этанол (но не пропанол и высшие гомологи), а также низшие кислоты — уксусная, про-пионовая и масляная — все имеют более высокие точки кипения, чем их триметилсилиловые эфиры. Еще более ярко это проявляется в случае диолов и полиолов, среди которых даже гексаметилен-глйколь имеет более высокую температуру кипения (на 15°С), чем его бис(триметилсилиловый) эфир. Различие для глицерина еще выше (на 60 °С), а для глюкозы оно настолько велико, что возможна перегонка пентакис (триметилсилилового) эфира (т. кип. 117°С при 0,1 мм рт. ст.). Таким образом, силиловые простые и сложные эфиры, в особенности таких соединений, как сахара, пептиды, полигидроксистероиды и антибиотики, почти всегда более удобны для газо-жидкостной хроматографии, чем свободные гидроксисоединения. Повышенная летучесть силильных производных используется также в масс-спектрометрии (где пики М+— 15 обычно сильны, а пики очень слабы). Наконец, силильные производные лучше растворимы в органических растворителях — факт, облегчающий проведение многих реакций даже в fex случаях, когда силильные группы непосредственно не участвуют в реакции. [c.113]

Препараты фермента были получены путем гомогенизирования свежих или лиофильно высушенных тканей с вероналовым или трис-буфером и последующего центрифугирования при 3000 g. Особенностью этих препаратов являлось высокое содержание в них сахаров и неорганического фосфата, что характерно как для проводящих, так и для паренхимных тканей. Поэтому определение активности гексокиназы по убыли глюкозы в опытной смеси или по убыли суммы легкогидролизуемого фосфата АТФ неорганического фосфата оказалось невозможным. Мы определяли действие гексокиназы непосредственно по количеству образующегося в течение опыта глюкозо-6-фосфата (и фруктозо-6-фосфата). Гексозомонофосфаты были выделены из опытной смеси путем фракционирования по Умб-рейту. Их количественное определение производили с помощью хроматографии на бумаге. Пятна глюкозо-6-фосфата и фруктозо-6-фосфата были элюированы с бумаги, и фосфорные эфиры определены по их сахарному компоненту с антроном [18]. [c.249]

Ионообменная хроматография широко применяется в агрохимическом анализе. С ее помощью в лабораторных условиях получают дистиллированную оду высокой степени чи тoтыJ про одят разделение аминокислот, сахаров, карбоновых кислот ее также используют для изучения явлений поглощения в почвах, процессов питания растений и запасов питательных веществ, находящихся в усвояемом для сельскохозяйственных культур состоянии в почве. [c.351]

Пуриновые и пиримидиновые компоненты нуклеозидов обусловливают ультрафиолетовое поглощение этих соединений. Природа этого поглощения зависит от природы заместителей в основании и от pH раствора, так как ионизация основания или его заместителей влияет не только на таутомерные превращения, но и на возможность резонанса. Кажущиеся значения р/С (включая рК сахара) могут быть легко определены с помощью как спектрофотометрических методов, так и титрования [160]. Поскольку таутомерная форма обусловливается окружающей средой и каждая форма представляет собой набор многих резонансных структур, характеристика с помощью обычных методов оказывается до некоторой степени ошибочной. Физические свойства нуклеозидов свидетельствуют о значительном вкладе цвиттерионных структур, в частности в циклонуклеозидах, таких, как 0 ,5 -циклотимидин. Этому соединению на основании его растворимости, более высокой по сравнению с тимидином температуры разложения (но не температуры плавления), а также данных хроматографии на бумаге и поведения при электрофорезе следует приписать структуру I, но не П (см. стр. 52). [c.51]

Метилированные сахара устойчивы к кислотам и щелочам. Гликозиды метилированных сахаров благодаря летучести в высоком вакууме уже использовались для фракционирования и определения строения углеводов. В настоящее время они используются для газб-жидкост-ной хроматографии и масс-спектрометрии. [c.139]

Культуру грибка отфильтровывают и 50 мл фильтрата смешивают с 100 мл раствора, содержащего 15 з мальтозы и 15 мл буферного раствора Мак-Ильвейна с pH 4,5 [14]. Продажную мальтозу предварительно перекристаллизовывают из водного метанола по методике, описанной ниже для панозы. Добавляют несколько капель толуола и смесь выдерживают 72 час при 50°. Высокая температура инкубации, например 50°, способствует уменьшению бактериальных загрязнений и более быстрому превращению. Процесс трансгликозилирования контролируют с помощью хроматографии на бумаге в системе к-бутанол — пиридин — вода, взятых в соотношении 6 4 3 (по объему) [15]. Восстанавливающие сахара обнаруживают проявляющим реагентом, содержащим 0,5 г 3,5-динитро-салицилата натрия и 4,5 з едкого натра в 100 мл воды, с носледуютцим нагреванием сухой полоски бумаги в течение 10 мин при 100°. Интенсивность пятна мальтозы падает приблизительно до одной трети ее первоначальной величины через 72 час, в то время как интенсивность пятен D-глюкозы и пятна панозы (подвижность последнего приблизительно вдвое меньше подвижности пятна мальтозы) почти достигает интенсивности пятна мальтозы. Ферментативную реакцию прерывают, нагревая реакционную смесь 10 мин на кипящей водяной бане. Очень важно остановить реакцию на желаемой стадии, так как д.чительная инкубация приводит к гидролизу панозы и, следовательно, к низкому ее выходу. [c.248]

Ионообменную хроматографию на колонках со смолами в боратной форме применяли для разделения и анализа не только сахаров, но и полиолов [84, 85]. Для этой цели использовали такую же хроматографическую систему [85], как и в случае разделения сахаров [78], но хроматографию проводили при более высокой температуре колонки (75 °С) и при большей скорости подачи буферов (70 мл/ч). Это обеспечивало разделение смеси, содержащей этиленгликоль, пять полиолов и два аминодезокси-полиола, за 4 ч [78]. С помощью анионообменной хроматографии в боратных буферах был успешно разделен ряд производных углеводов, в том числе несколько метилгликозидов [80], а также метиловые эфиры п-ксилозы, о-глюкозы и о-маннозы [c.23]

Первое сообщение об использовании ТСХ для изучения сахаров появилось в 1961 г. [404]. В настоящее время этот метод находит широкое применение для идентификации и разделения углеводов всех типов. ТСХ отличают более высокая чувствительность и скорость разделения, чем при хроматографии на бумаге. Прекрасный обзор наиболее важных работ, посвященных различным аспектам применения ТСХ в области химии углеводов, опубликован в 1976 г. [405]. Практические вопросы качественного и количественного анализа, а также препаративного ТСХ-разделения углеводов подробно рассмотрены в трех статьях Уинга и БеМиллера [406]. [c.64]

Более интересный способ применения этого адсорбента получил название хроматография верхом на лиганде ( piggyba k hromatography ) [124]. В этом случае колонку уравновешивают лигандом, содержащим гидроксильные группы, например сахаром или рибонуклеотидом, таким, как АТР или NAD. При этом лиганд с высокой плотностью, но очень непрочно (обратимо) адсорбируется на колонке [величина mt в уравнении (4.5) приближается к 10 Ml, После этого образец наносят на колонку, и фермент, связавшись с лигандом, удерживается на ней. Поскольку связь между адсорбентом и лигандом обратима, определенная часть лиганда в каждый момент времени перемещается вниз по колонке и фермент, сидящий верхом на лиганде, движется вместе с ним. Перемещение лиганда иногда бывает настолько медленным, что для элюции фермента может потребоваться его избыток (или же другой лиганд). [c.190]

Если тонкослойная хроматография используется в первую очередь для аминокислот, сахаров, олигосахаров, липидов, стероидов и других небольших молекул, тонкослойная гель-хроматография применяется для белков, пептидов, нуклеиновых кислот, нуклеотидов и других гидрофильных веществ с высокой молекулярной массой. [c.206]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология