Фиксация гелей

Таким образом, достоинством гелей на основе СПС при правильном подборе состава композиции является низкая подвижность, высокий начальный градиент давления, вязкоупругие свойства геля, определяющие уровни фильтрационных сопротивлений в зоне фиксации геля. [c.99]

По П. А. Ребиндеру, стабилизующее действие гелеобразных адсорбционных слоев стабилизатора обусловливается тем, что высоковязкая прослойка между частицами не успевает выдавиться за время столкновения частиц дисперсной фазы в результате броуновского движения или в потоке. В известных условиях стабилизация дисперсных систем адсорбционно-сольватными слоями, обладающими упругостью и механической прочностью, может безгранично повышать устойчивость системы вплоть до полной фиксации ее частиц. Примером этому может служить отвердевание жидких прослоек между воздушными пузырьками пены в результате геле-образования или полимеризационных процессов. П. А. Ребиндер отмечает, что образования структурно-механического барьера достаточно для стабилизации только тогда, когда на наружной границе адсорбционного слоя поверхностная энергия мала и не резко возрастает на подступах к частице. При наличии хотя и структурированной, но не лиофильной, а лиофобной оболочки все же может происходить слипание частиц путем сцепления оболочек наружными поверхностями. Такого рода явления можно наблюдать при флотации в результате адсорбции поверхностно-активных веществ полярными группами на поверхности гидрофильных твердых частиц. Направленные в водную среду углеводородные цепи связываются друг с другом своеобразной местной коалесценцией гидрофобных оболочек. [c.284]

Стабилизация, обусловленная особыми структурно-механическими свойствами адсорбционных слоев, может привести к практически безграничному увеличению стабильности дисперсных систем, вплоть до полной их фиксации, образования сплошных пространственных структур — гелей (см. гл. XIV). [c.251]

Широкое распространение в настоящее время получил так называемый зональный электрофорез — электрофорез на твердом носителе (на бумажных полосах, агаре, крахмале, акриламиде), пропитанном буферным раствором с нужным значением pH. Положение белков на бумаге или геле определяют путем фиксации и последующего окрашивания их тем или иным красителем (обычно бромфеноловым синим, ами-довым черным или кумасси синим). Количество белка в каждой фракции можно ориентировочно определять по интенсивности окраски связанного красителя. Такое определение не дает строго количественного соотношения белковых фракций, так как количество красителя, связываемого различными белками, неодинаково. [c.89]

Электрофорез белков в пластине полиакриламидного геля имеет ряд преимуществ по сравнению с электрофорезом в трубочках. Использование тонких пластин облегчает эффективное отведение тепла при электрофорезе. Процесс фиксации, прокраски и отмывания занимает значительно меньше времени. Использование одной пластины позволяет [c.97]

Позже опыты такого же типа мы повторили с растворами заведомо атактического полиметилметакрилата и получили те же результаты, хотя природа образующегося геля была, разумеется, иной (вопрос о том, какой именно, требует специального рассмотрения и мы к нему скоро вернемся). При этом наблюдался другой драматический эффект ориентационная катастрофа II. Если образовавшуюся слегка набухшую в растворителе нить ПММА закрепить в зажимах установки для изометрического нагрева, она в определенный момент исчезает , взрываясь и превращаясь в мелкую пыль. Ясно, что это связано с аморфностью ПММА и невозможностью фиксации ориентированного состояния кристаллизацией. Накопленные в процессе перехода струя — волокно внутренние напряжения не могут рассосаться (при кристаллизации происходит сброс избыточной энергии) и попросту разрывают волоконце на мелкие осколки. [c.383]

Столбик геля помещают в пробирку с красителем на 10 мин для окрашивания и фиксации белковых полос, при этом окрашивается и гель. Затем краситель сливают в склянку, а гель заливают 7 %-ным раствором уксусной кислоты для отмывки от избытка красителя. Пробирки оставляют на сутки, при этом не коль ко раз заменяют [c.35]

Уплотнительные поверхности типа шип-паз (рис, 2.23 в) используются для плоских неметаллических, комбинированных и металлических прокладок в аппаратуре с рабочим давлением до 6,3 МПа, Соединения с такой уплотнительной поверхностью обеспечивают надежную герметичность и применяются для сред с высокой проникающей способностью (сжиженные газы, гелий, аммиак и др.). Фланцевые соединения с уплотнительными поверхностями типа выступ-впадина или шип-паз , расположенные в горизонтальной плоскости или с некоторым наклоном к ней, следует выполнять так, чтобы фланцы с впадиной или с пазом были нижними. Это облегчает фиксацию прокладок. [c.61]

Первый член в этой формуле учитывает вклад химических узлов, второй — топологических. Смысл второго члена совершенно ясен потенциальное число зацеплений, умноженное на вероятность их фиксации. Вид его не зависит от функциональности химических узлов. Вообще говоря, вид первого члена зависит от способа выражения числа активных цепей сетки, что обсуждалось в 2. Так, если считать, что активными являются только те, которые присоединены к гелю не менее чем тремя различными путями, то, согласно Флори [5], [c.141]

Причины фиксации могут быть различными в каждом конкретном случае. Чаще всего необратимость процесса адсорбции коллоидных загрязнений воды на гидроокисях алюминия и железа обусловлена особого рода поверхностными соединениями — лаками. В момент образования золи А1(0Н)з и Ре(ОН)з обладают наибольшей адсорбционной активностью. По мере перехода их в гель и уплотнения гелей общая поверхность частиц уменьшается, что приводит к значительному снижению их адсорбционной емкости. В табл. 22 показано влияние времени созревания гелей А1(0Н)з и Ре(ОН)з на адсорбцию красителей [36]. [c.145]

Адсорбция вообще понимается как обогащение веществом на границе фаз, что особенно касается фиксации материала на внутренней поверхности коллоидного геля. Поэтому явления адсорбции характеризуются градиентом концентраций на граничных поверхностях дисперсоидов в отличие от молекулярных растворов. Разумеется, структура адсорбирующего геля особенно опре- [c.303]

Устройство состоит из корпуса 2, в котором на днище укреплен стакан 4 и установлена обечайка / так, что образуется кольцевой зазор 3, служащий рабочим пространством для носителя. Под обечайкой 1 расположен подвижный элемент 5 в виде фланца для фиксации носителя в зазоре 3. Фланец можно закрепить на вертикальных штырях, перемещаемых винтом. Аппарат снабжен патрубком для подачи носителя 13, а также патрубками для подачи растворов биополимеров Пи буферного раствора 6 я 7, патрубками для вывода последнего 12 и 10, электродами 8 н9. Обечайка 1 выполнена из отдельных секторов 15. С внешней стороны патрубка 13 установлено несколько пар магнитов 14. Создаваемое внутри патрубка 13 магнитное поле способствует интенсификации перемешивания раствора, влияющего впоследствии на структуру получаемого геля. [c.66]

Фиксация белков в геле [c.326]

Это наблюдение приводит к выводу, что прохождение тока вызывает пе только движение ионов водорода, но и создает такую ориентацию структурных элементов геля, которая облегчает движение иона, позволяя ему двигаться скорее. Упорядочение ориентации выражено тем больше, чем больше приложенная разность потенциалов, причем при выключении тока или при уменьшении напряжения структура опять переходит в новое состояние с ориентацией менее благоприятной для движения Н+. Непосредственной причиной такой ориентации вероятно является действие приложенной разности потенциалов на полярные мицеллы и на те центры, на которых произошла фиксация металлических катионов. [c.48]

Следует, однако, отметить, что процесс оводнения является сложным процессом, при котором взаимодействие паров растворителя со студнем может быть двух типов 1) капиллярное поглощение, очевидно не сопровождающееся тепловым эффектом , п 2) гидратационное поглощение, связанное с фиксацией молекул растворителя на активных точках молекул коллоида и сопровождающееся значительным тепловым эффектом. Такой процесс взаимодействия геля и студня с растворителем происходит значительно более энергично, если растворитель соприкасается с коллоидом не в виде пара, а в виде жидкости. В этом случае уже наблюдаются некоторые особенности, отличающие оба типа взаимодействия, хотя, казалось бы с первого взгляда, резких различий между ними нельзя было ожидать. Второй тип взаимодействия носит название набухания. [c.279]

Концентрация раствора полимера так мала, что при добавлении сшивателя происходит только внутримолекулярное сшивание образования геля при этом не наблюдается. Если к раствору полимера добавлено такое количество сшивателя, что в среднем в одной цепной молекуле образуется одна точка сшивания, то в этом случае можно представить, что в какой-либо рассматриваемой цепной молекуле один мономерный остаток статистического нитевидного элемента реагирует с реакционноспособной группой сшивателя таким путем прочно удерживается молекула реагента, несущая вторую реакционноспособную группу. Положение, в котором прикрепляется первая реакционноспособная группа сшивателя, с равной вероятностью может находиться на любом участке макромолекулы. Однако, когда вследствие теплового движения вторая часть макромолекулы приближается ко второй реакционноспособной группе реагента, происходит фиксация и замыкание кольца. При таком замыкании вторая часть молекулы закрепляется, вследствие чего она не может переместиться под влиянием теплового движения. Итак, уже [c.11]

К физической модификации структуры первичного геля прибегают для уменьшения или увеличения пористости (степени набухания, объема пустот, содержания воды и т. д.), размера пор, проницаемости и селективности. Для увеличения пористости может быть использована методика получения пористых мембран из плотных пленок. В этом случае методика Брауна 18] (см. гл. 8) состоит в том, что уже пористый первичный гель помещают в среду, вызывающую набухание. Для фиксации вторичного геля в набухшем состоянии среду, вызвавшую набухание, либо заменяют нерастворителем (существенна смешиваемость нерастворителя с агентом, вызывающим набухание), либо подвергают испарению. [c.260]

Более поздние исследования показали, что легко можно осуществить физическую фиксацию ДНК в гелях ацетата целлюлозы или агар-агара (в отсутствие какого-либо химического агента) закрепленная таким образом ДНК образует водородные связи с комплементарными молекулами и, следовательно, может быть использована для очистки и выделения специфической РНК [570]. [c.371]

Таким образом, небольшое увеличение содержания электролита в системе будет способствовать фиксации частиц во вторичном минимуме и возникновению ПКС. Фиксация может быть локализована в какой-нибудь части системы, что характерно для тактоидов, гелеобразных осадков, частиц монтмориллонита, набухающих в растворах электролитов, а также для многих гелей и паст, получение которых сопровождается отделением ( отсеканием ) небольшого количества жидкости и сжатием (контракцией дисперсии). Прибавление к таким локальным ПКС Аи <0) небольших количеств электролита увеличивает глубину вторичного минимума и, соответственно, прочность системы. Однако последующее увеличение концентрации электролита приводит к исчезновению барьера отталкивания и непосредственному слипанию частиц. [c.52]

После фиксации гель помещают на 5 мин в раствор, содержащий 50% метанола, 12% трихлороуксусной кислоты, 2% СиСЬ и 1% Zn b и высушивают. [c.308]

Все смеси могут быть приготовлены из концентрированных исходных растворов. Необходимо учитывать, что растворы НАД, НАДФ, субстратов (лактата, малата, глюкозо-6-фосфата и т. д.), НБТ могут храниться не более недели при 4 °С раствор ФМС должен храниться в темноте и использоваться в течение 12 ч. Ферментативную реакцию, развивающуюся в геле, останавливают промывкой последнего в воде. Фиксация геля чаще всего проводится в 50 %-ном глицерине. [c.102]

Как уже упоминалось, ковалентная посадка НК на матрицу может оказаться непригодной для создания аффинного сорбента с индивидуальной специфичностью, поскольку многие основания полинуклеотидной цепи будут заблокированы химической связью с носителем. По этой причине широкой популярностью пользуются различные методы нековалентной фиксации НК на матрицах. Исторически они были разработаны значительно раньше, но до сих пор не утратили своего значения. Простейший из этих методов использовал протяженность и гибкость нитей высокомолекулярных денатурированных ДНК, которые просто заплавляли в 4%-ный агар при температуре выше 90° [Bendi h, Bolton, 1968]. Около половины внесенных в расплавленный агар молекул ДНК после его затвердевания оказываются столь надежно запутанными в сеть геля, что не выходят цз него да ке после длительной промывки. Агар затем нарезали ку- [c.391]

Так как образец в конечном итоге исследуется в микроскопе в вакууме, вода либо должна быть удалена, либо давление ее паров должно быть уменьшено понижением температуры образца. Нет сомнения в том, что химическое обезвоживание приводит к потере легко диффундирующих веществ из клеток и тканей, вызванной химической фиксацией. Хотя критические сравнительные исследования не производились, оказалось, что не существует большой разницы в воздействии этанола, метанола или ацетона в качестве обезвоживающих реактивов. Однако в работе [421] было установлено, что в растительном материале, обезвоженном диметоксипропаном, обнаружена существенно лучшая сохранность ионов (Ыа+, К+, С1 ) по сравнению с обезвоживанием в ацетоне. Можно обойтись без классических процедур обезвоживания, используя инертные процедуры обезвоживания, предложенные в [422], водно-растворимые смолы, метод заливки в глутаральдегиде-мочевине [423] или пропускание материала, прошедшего фиксацию в глутаральдегиде, через глутаральдегид с возрастающимп концентрациями вплоть до 50%, после чего ткань переносится прямо в эпон-812 [404]. Другая процедура [424] заключается в инфильтрации фиксированных образцов раствором поливинилового спирта (МШ 14 000) с возрастающими концентрациями вплоть до конечной 20%-ной концентрации. Вода затем удаляется путем диализа, а образовавшийся твердый гель связан поперечными связями с глутаральдегидом. Однако оказывается, что эти процедуры незначительно снижают потерю растворимых материалов из исследуемых образцов. Простая сушка образца на воздухе также вызывает перераспределение элементов. Таким же образом процедура сушки в критической точке, которая обычно проводится в конце фиксации и обезвоживания, по всей видимости, приведет к слабому различию в концентрации растворимых веществ, которые давно уже были удалены в процессе [c.283]

Особенностью наполненных трафаретных паст, представляющих собой ненабухающие гели с наполнителем, является псевдопластичность. Она проявляется в значительном снижении вязкости при приложении механического усилия. Под механическим воздействием контакты между частицами наполнителя коллоидной дисперсности и макромолекулами органического связующего разрушаются. При снятии механического усилия паста вновь обретает высокую вязкость, что обеспечивает четкую фиксацию профиля оттиска на подложке без растекания за пределы контура (рис. 60), Во время печати паста подвергается значительному и меняющемуся по величине механическому воздействию. При движении по трафарету ракель гонит перед собой волну пасты. Давление в пасте резко меняется в течение 1—2 с в зависимости от встречаемого пастой сопротивления ее движению по мере прохода к подложке сквозь различные участки трафарета, имеющие неодинаковую гидравлическую проницаемость (рис. 61). [c.180]

После плюсования краситель фиксируют обработкой паром в запарной камере в течение 1—10 мин при 100 °С или в течение 0,5—5 мин горячим воздухом при 140— 150 °С (методом термозоль при 190—215 °С). В других случаях фиксируют краситель пропусканием через проявительный раствор или посредством длительного (2—20 ч) хранения влажного материала. После фиксации окрашенный материал почти всегда необходимо тщательно промыть от остатков незафиксированного красителя. Весьма эф-, фективным является крашение крупных партий химических волокон при их изготовлении (крашение в массе, крашение нитрона в геле). При этом отпадает необходимость больших трудовых и других затрат на текстильных фабриках, резко сокращается количество сточных вод, достигается большая общая экономия. Крашение в массе проводится внесением красителя или пигмента при получении полимера или окрашиванием гранул полимера, а лучше всего — непрерывным внесением красителя в раствор или расплав полимера перед прядением волокна. [c.242]

Коагуляционные структуры. Как следует из названия, фиксация взаимного положения частиц в этих системах наступает в результате коагуляции (слипания частиц). При достаточной концентрации дисперсной фазы коагуляция ведет к образованию сплошной рыхлой сетки из взаимосвязанных частиц. Наличие определенной прочности такой сетки ведет к превращению жидкой текучей взвеси в желеобразное или пластичное состояние. Отсюда и название структурированного коллоида — гель (gel) — структурированный коллоидный раствор. Коагуляция — наиболее распространенная причина структурирования. Важным частным случаем коагуляционного структурирования является образование параллельных линейных цепочек из связан-HbD между собой частиц при действии на дисперсную систему магнитного или электрического поля. С их изучения и началось становление современной теоретической реологии дисперсных систем. [c.677]

Во многих упомянутых исследованиях с достаточной определенностью установлены условия, при которых происходит фиксация частиц на ближних или дальних расстояниях, хотя величина последних определялась расчетным путем с некоторым приближением. Вместе с тем известен обширный класс периодических коллоидных структур (ПКС), в которых дисперсные частицы фиксированы относительно друг друга на дальнем расстоянии. К таким ПКС относятся слои Шиллера, тактоиды, некоторые гели и гелеобразные осадки, тиксотропные пасты, колонии вирусов и бактерий [62—65]. Из монодисперсных сферических частиц, обладающих изотропным силовым полем, при наличии достаточно высокого энергетического барьера возникает правильная квазикристалли-ческая решетка [7, 12, 66]. При осаждении частиц из таких объемных ПКС в осадке образуются при подходящих условиях двумерные ПКС [67], которые нередко наблюдаются при микроскопических и электронно-микроскопических исследованиях (рис. 1). Такие коллоидные структуры с помощью электронной микроскопии обстоятельно изучаются в последнее время Дист-лером [68]. На поверхности жидкости модельные двумерные структуры исследовал Шуллер [69]. [c.132]

Еще 10 лет тому назад Н. Д. Иерусалимский — крупный советский микробиолог— писал Некоторые этапы химических синтезов трудны и сопровождаются образованием большого числа изомеров и побочных продуктов. В таких случаях полезную услугу могут оказать ферментные препараты или живые носители ферментов — микроорганизмы. От небиологических катализаторов они выгодно отличаются специфической направленностью своего действия. К тому же вызываемые ими биохимические процессы протекают при обычных температурах и давлении. Их осуществление не требует ни антикоррозийной аппаратуры, ни крупных энергетических затрат . В значительной мере благодаря его инициативе в СССР были начаты интенсивные исследования в области инженерной микробиологии. Однако, как уже говорилось выше, применение микроорганизмов в целях направленной трансформации органических веществ существенно ограничивалось спецификой работы с микроорганизмами или выделенными ферментами, которые требовали специальных условий для получения, сохранения и воспроизводства. В настоящее время известны пути стабилизации (иммобилизации) ферментов путем либо химической фиксации активной конформации с помощью дифункциональных (сшивающих) реагентов, либо химической прививки к полимерным носителям и даже к стеклу, либо включения в гель инертного полимера. Это позволило превратить ферменты из крайне нестойких веществ в довольно стабильные, препараты, которые могут неоднократно вводиться в реакционную массу в качестве катализатора. Более того, стало возможным, не выделяя фермент, проводить такую иммобилизацию прямо на клеточном уровне, используя выращенную культуру соответствующего микроорганизма. Все это позволяет рас-сч1итывать в ближайшие годы на широкое и эффективное В1недрение методов ферментативного превращения не только в лабораторную, но и в промышленную практику. Именно поэтому мы надеемся, что появление даже неполной сводки, составленной американскими специалистами, вызовет интерес у советского читателя. [c.6]

Несмотря на расхождение в количественной оценке удельной поверхности, можно сделать вывод о высокой пористости свеже-сформированных аморфных гелей и сохранении ими развитой внутренней поверхности по крайней мере в течение первых часов. Это позволяет предположить, что фиксация йервичных частиц в гелях происходит на сравнительно больших расстояниях за счет дальнодействующих сил притяжения. [c.91]

После фиксации в ТХУ гели фотографируют на черно м фоне с боковым освещением. Окрашенные гели необходимо снимать в проходящем свете. Предложенный недавно метод [104] съемку в УФ-свете может найти применение для регистрации электра-фореграмм в присутствии амфолитов. Если гели сканируют на денситометре при 280 нм [105], необходимо предварительно провести контрольное измерение. При денситометрии окрашенных гелей в видимой области контрольное сканирование можно не делать. [c.327]

Количество вносимого образца определяется числом компонентов и чувствительностью методов обнаружения. Для образца, состоящего из 10 компонентов, в случае фиксации с помощью ТХУ или окрашивания достаточной нагрузкой является 100 200 мкг. В отличие от растворов сахарозы гелевая среда допускает любые нагрузки. При рфрте с плохо растворимыми образцами в гель можно добавить мочевину (см. рис. 10 и 14). [c.327]

Важно, чтобы элактрофокусирование было доведено до конца. Так, в примере, приведенном на рис. 11, если бы гель, как обычно, фиксировали примерно через 30 мин, то были бы сделаны ошибочные выводы о гетерогенности образца. К тому же в этом случае было бы трудно получить воспроизводимые спектры. Ана-л хгичное положение можно наблюдать в случае сывороточного альбумина [91]. Мономер фокусируется при pH 3—10 за 15— 20 мин, полимеры достигают (в 7,5%-ном геле) того же положения, что и мономер примерно за 40 мин. При фиксации такого геля через короткое время (менее 40 мин) обнаруживается явная гетерогенность (в смысле р1) смеси, обусловленная раз- [c.330]

Обладает способностью желатииизировать жидкие вещества цитоплазмы стабилизовать гели. Это свойство формалина, используемое в микроскопии для фиксации исследуемого материала, основано на способности карбонильной группы формальдегида вступать во взаимодействие с белковыми функциональными группами, содержащими реакционноспособный водород аминными, имин-ньши, гидроксильными, карбоксильными, сульфгидрильными, дисульфидными, гуанидиновыми и др. По Френчу и Эдсону [1] эта реакция проходит в две стадии 1) присоединение формальдегида к соединению, содержащему реакци-онноспособный водород, с образованием гидроксиметильного производного и 2) конденсация этого производного с другой молекулой КН с образованием метиленового мостика (—СНг—) [c.421]

Для радикальной полимеризации, инициируемой с поверхности твердой фазы, характерно также возрастание роли диффузионного контроля реакции обрыва цепи. Ограничение подвижности макрорадикалов при их фиксации на поверхности приводит к резкому снижению ко [35]. При полимеризации винилацетата, адсорбированного на 7-облученном аэросиле константы скорости роста цепи и бимолекулярного обрыва уменьшаются по сравнению с жидкофазной полимеризацией соответственно на 1—1,5 и на 5 порядков [389]. В связи с этим интересно провести аналогию с результатами исследования гель-эффекта при полимеризации ряда мономеров [425]. Начало автоускорения полимеризации авторы работы [425] связывают со структурообразованием реакционных систем, Рассматриваемые нами полимеризационные сиЬтемы, изначально содержащие твердую фазу, представляют собой уже на первых стадиях процесса некоторую структурированную систему, где затруднение обрыва цепи обусловлено эффектом зацепления. [c.237]

Тиксотропия исследуется двумя методами измерением времени тиксотропного застудневания и определением механических свойств коллоидных растворов под нагрузкой и после снятия нагрузки. Первый метод, в простейшем виде, сводится к разжижению геля в пробирках путем встряхивания их и фиксации времени тиксотропного застудневания. В таком виде метод является качественным и для получения сравнимых данных требует соблюдения постоянных условий опыта. К тому, что отмечалось по этому поводу выше, следует добавить, что все пробирки необходи.мо встряхивать тщательно и по возможности одинаковым образом для полного или, по крайней мерс, одинакового разрушения структуры. Этот метод позволяет различать тиксотропию от тиксолабильности, так как в последнем случае не наблюдается вторичного застывания разжиженного геля. [c.218]

В разд. 6.3.4 указывалось, что при неполном разделении двух соединений посредством гель-хроматографии можно улучшить степень разделения, увеличив длину колонки. Однако работа с длинными колонками связана с рядом неудобств их сложно заполнять и элюирование приходится вести с очень малыми скоростями, особенно если колонка заполнена мягкими гелями. Однако последовательно соединяя две и большее число колонок, можно добиться увеличения эффективной длины колонки и тем самым лучшего разрешения. С этой целью выбирают несколько одинаковых плунжерных колонок, каждую из которых заполняют гелем независимо от других. После заполнения колонок гелем и фиксации заполняющих слоев плунжерами вывод из одной колонки соединяют с вводом в другук возможно более короткой и тонкой трубкой. Хроматографирование на такой составной колонке ведут восходящим методом (разд. 6.3.6). В такой составной колонке допустимы большие скорости потока, чем в одной колонке, высота которой равна сумме высот соединенных колонок. [c.377]

А — 15 сек. темповой фиксации С Ог клетками hlorella при предварительном освещении 15 мин. в атмосфере гелия Б — 5 сек. фотосинтеза клетками hlorella-, [c.167]

Успешность применения энзимного электрода зависит от иммобилизации энзима в слое геля. Эта проблема очень важна при использовании энзимов в химическом анализе. В обычном анализе требуются большие количества дорогостоящих энзимов, и много усилий было приложено для разработки методов анализа с минимальным пoтpeблeниe i чистых энзимов. Внимание исследователей привлекают методы с применением энзимных электродов, в которых малые количества энзилюв сохраняют активность в течение длительного времени. В последние годы появился ряд обзоров, посвященных различным вопросам конструкции, функционирования и применения энзимных электродов [4—8]. В книге [9] описаны используемые в настоящее время методы фиксации энзимов в различных матрицах. В качестве примеров можно привести несколько способов иммобилизации энзимов [c.325]

С целью изучения влияния концентрационного фактора на удерживание примесей в работе [3] на основе вакантохроматогра-фического эксперимента [52] определялась зависимость мольного удерживания бензола от мольной доли в растворе динонилфталата при 80° С. Аналогичные измерения проводились для толуола. Далее определялось удерживание малых проб толуола при использовании в качестве элюентов смесей гелия с парами бензола и соответственно удерживание бензола в потоке смесей гелия и толуола (рис. 6). Влияние концентрации бензола, растворенного в динонил-фталате, па удерживание примеси толуола и соответственно влияние толуола на удерживание примеси бензола (см. рис. 6) подтверждается приведенными па рис. 7 хроматограммами, которые получены при вводе в колонку различных количеств бензола, содержащего примесь толуола. Здесь толуол элюируется из колонки с бинарной жидкой фазой, концентрация бензола в которой уменьшается от начальной, соответствующей константе распределения введенной пробы, до конечной, отвечающей константе распределения в момент фиксации пика толуола. [c.196]

Многие экспериментальные данные по оптическим, тиксотропным и реологическим свойствам, а также по пептизации, синерезису и кинетике процессов образования гелей и паст указывают на то, что большинство этих систем следует отнести к ПКС [16]. Периодическая тактоидная структура у гелей Уг05 обнаружена Думанским [37]. Еще ранее было указано на ориентированное расположение коллоидных частиц в этих гелях, возникающих при самых малых концентрациях дисперсной фазы, что подтверждает непрерывность перехода от тактоидного состояния к гелеобразному [38—40]. Установлено, что анизотропность коллоидной системы сохраняется при обратимых переходах золя в гель [41]. В гелях Ее(ОН)з и У(ОН)з обнаружена периодичность в расположении плоскостей фиксации дисперсных частиц расстояние между плоскостями, равное нескольким тысячам ангстрем, уменьшается с увеличением концентрации электролита [19, 21]. Недавно при изучении гелей гидроокиси железа с помощью эффекта Мессбауэра было показано, что в этих гелях (как при обычных условиях, так и в замороженном состоянии) коллоидные частицы отделены друг от друга слоями воды [42]. [c.14]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология