Микроскоп методы приготовления образцов

КОГО подхода зависит от успешного разрешения двух проблем. С одной стороны, существенное значение имеет усовершенствование техники электронной микроскопии и методики приготовления образцов. С другой стороны, необходима разработка методов химической модификации ДНК, позволяющих избирательно пометить различные виды оснований. Важно, чтобы вводимая метка была достаточно хорошо видна при электронной микроскопии, т. е. модифицирующий агент должен содержать атомы тяжелых металлов (например, свинца, ртути, меди, урана). или функциональные группы, способные образовывать устойчивые комплексы с катионами этих металлов. Некоторые реагенты, по крайней мере частично удовлетворяющие поставленным требованиям, уже созданы они будут упомянуты ниже. Практическая проверка этого интересного подхода к установлению последовательности нуклеотидов в полинуклеотидных цепях, однако, пока еще не осуществлена. [c.83]

Применять электронную микроскопию для оценки степени диспергирования наполнителя не следует до тех пор, пока методы, обеспечивающие более низкое разрешение, не покажут, что такое исследование действительно необходимо. Объясняется это тем, что приготовление образцов для электронномикроскопического исследования и само исследование являются более сложными и трудоемкими, чем подготовка и исследование методами световой микроскопии или микрорадиографии. [c.177]

В петрологии применяют два метода петрографического исследования — макроскопическое описание его по наружному виду и микроскопическое изучение под микроскопом специально приготовленных образцов (шлифов) углей в проходящем, отраженном и поляризованном свете. [c.14]

Оценка качества смешения эластомерных композиций имеет свои особенности. Неотъемлемой частью контроля является оценка степени диспергирования технического углерода как основного усиливающего наполнителя. Простейшие оценки проводятся визуально по блеску среза смеси и степени неровности его поверхности. Более точные методы оценки степени диспергирования заключаются в том, что из отобранных по закону случайных чисел образцов изготавливаются тонкие пленки или микротомные срезы, которые затем просматриваются в световом либо электронном микроскопе. При выборе метода приготовления образцов следует предпочесть метод микротомных срезов, поскольку в этом случае исключается возможность дополнительной деформации и искажения формы частиц диспергируемой фазы, неизбежно сопровождающих операцию расплющивания образца между предметными стеклами микроскопа [59]. При просмотре образцов фиксируют следующие данные число клеток окулярной сетки в площади отдельного агрегата, площадь отдельного агрегата, количество агрегатов данного размера /п,- условный диаметр агрегата, определенный как корень квадратный из площади агрегата площадь просматриваемого среза 5о. [c.22]

НЫЙ микроскоп дает изображение на фотопластинку или на флюоресцирующий экран с помощью электронного пучка. Так как образцы просматриваются проходящим пучком, их следует помещать на поверхность или внутрь пленки, которая должна быть прозрачна для луча, проходящего сквозь отверстие. Методы приготовления образцов описаны Валтоном Чтобы определить характеристики поверхности и толщину частиц, пользуются методом реплик напыляют пленку тяжелого металла под углом на образец в высоком вакууме. Часто реплики используются в том случае, когда разница в поглощении электронного луча частицами и подложкой мала. [c.97]

В этой главе описывается небольшое число методов, которые мы в соответствии с собственным опытом считаем полезными для исследователя, изучающего анатомию бактерий. Мы делаем акцент на применении негативно контрастированных препаратов и тонких срезов образцов для анализа в просвечивающем электронном микроскопе. Здесь нет описания операций по управлению и эксплуатации электронного микроскопа [15—19], но есть краткая информация о необходимых для работы материалах и их поставщиках (разд. 4.6 и 4.7). Предполагается, что доступны вспомогательные приборы и что помощь в работе могут оказать опытные операторы. Мы поставили своей целью снабдить обучающегося сведениями о методах приготовления образцов и способах интерпретации результатов. Хотя помимо методов и оборудования, на которых делается акцент, будут упоминаться и другие, детальную информацию о них можно найти, лишь обратившись к специальной литературе, другим руководствам и журнальным статьям. В конце главы мы приводим литературу по общим вопросам [1 —14] и перечень источников специальной информации. [c.95]

В настоящей главе не представляется возможным подробно описать методы приготовления образцов для электронной микроскопии и работу с электронным микроскопом. Но, поскольку электронная микроскопия является одним из самых важных и полезных методов исследования формы и структуры вирусных частиц, я все же привожу здесь некоторые соображения. [c.28]

Важный подход к изучению репликации ДНК-это применение электронной микроскопии, благодаря которой можно непосредственно наблюдать репликативную вилку, а на мелких молекулах ДНК можно видеть всю реплицирующуюся структуру. Кроме того, при использовании специальных методов приготовления образцов можно отличать двухцепочечную ДНК от одноцепочечной. [c.24]

Для приготовления образца каучука, нерастворимого, но хорошо набухающего в том или ином растворителе, можно применить метод расплющивания набухшего образца между пластинками, прозрачными в ИК области. Растворитель, в котором производится набухание, либо полностью испаряется, либо его поглощение компенсируется поглощением растворителя в кювете сравнения. Набуханию подвергают либо мелкую крошку каучука, либо тонкий срез, полученный на микротоме. В последнем случае кусочек каучука замораживают, поливая его жидким азотом. Размер полученного среза должен быть не меньше размера изображения источника света на образце в спектрометре. Если не удается получить срез достаточно большой площади, удобно применить микроскоп-приставку - совокупность двух оптических систем, смонтированных в одном корпусе. Каждая система (одна - для образца, другая - для сравнения) состоит из двух объективов, расположенных один под другим и способных к независимому перемещению для фокусировки. Один из объективов дает уменьшенное изображение источника света, одновременно фокусируя его на образец. После прохождения образца изображение увеличивается до первоначальной величины и направляется на входную щель. [c.218]

За последние 15 лет были разработаны эффективные способы применения критических явлений во многих прикладных областях. В электронной микроскопии стандартным методом подготовки образца стало его высушивание при критической температуре. Растворяющая способность жидкостей вблизи критической точки меняется коренным образом. Это свойство используется, например, при извлечении кофеина из кофе при приготовлении растворимого кофе, свободного от кофеина, а также при экстракции душистых масел. Кроме того, критические явления получили важное для науки применение в жидкостной хроматографии. [c.191]

Важным ограничением метода электронной микроскопии, является его статический характер, обусловленный трудностями приготовления образцов, и возможность существенных ошибок (артефактов) в определении структуры. [c.77]

Алюминий широко используют в качестве покрытия как в декоративных целях, так и для защиты от коррозии. Кадмий [25], цинк и титан [26] наносят на черные металлы главным образом с целью защиты. Метод напыления в вакууме очень широко применяется для покрытия высокопрочных сталей, используемых в авиации и ракетной технике, автомобильной фурнитуры, ламповых рефлекторов, матриц для изготовления грампластинок, а также для приготовления образцов для электронной микроскопии и для превращения непроводящих электричество поверхностей в проводники электрического тока, например при металлизации конденсаторов и резисторов. [c.390]

Если двум частично комплементарным цепям плазмидной ДНК дать возможность ренатурировать, то образуются гетеродуплексные молекулы, которые можно исследовать с помощью электронного микроскопа. Поскольку при электронно-микроскопическом анализе в случае соответствующего приготовления образцов одно-и двухцепочечные участки нуклеиновых кислот различаются, существует возможность картирования гомологичных и негомологичных участков. С тех пор как в практику вошли способы проверки с применением рестриктаз и методы выявления гомологий ДНК в растворе по радиоактивности, методология гетеродуплексного анализа с помощью электронного микроскопа перестала широко применяться для анализа плазмидной ДНК- Хотя техника такого анализа требует большого экспериментального искусства и специального оборудования, она все же заслуживает рекомендации как способ точной локализации различий между плазмидами и наилучшей оценки организации плазмидной ДНК- [c.156]

Статический метод, или метод закалки, наиболее точный и надежный применительно к большинству силикатных систем. Заключается он в следующем. Смесь заданного состава предварительно многократно спекают или плавят и измельчают для обеспечения высокой степени гомогенности. Затем небольшую навеску приготовленной смеси (обычно 0,2—0,5 г) заворачивают в платиновую фольгу и помещают в печь, нагретую до заданной температуры. При длительной выдержке в печи в пробе устанавливается равновесное для данной температуры состояние, которое контролируется повторным нагревом пробы при больших длительностях выдержки и сохранением фазового состава образца. Потом пробу подвергают резкой закалке, сбрасывая ее в холодную инертную жидкость. При таком охлаждении жидкая фаза, содержавшаяся в образце при исследуемой температуре, застывает в виде стекла, а кристаллические фазы фиксируются в том же состоянии, в каком они были во время выдержки. Исследуя закаленную пробу с помощью поляризационного микроскопа и рентгенофазового анализа, определяют природу фаз, сосуществовавших при температуре опыта. [c.49]

Сильное влияние дисперсности палладия на носителях на активность катализаторов гидрирования установлено в работах [77, 79, 83]. Дисперсность палладия измерена несколькими независимыми методами рентгенографически (РФА), методом электронной микроскопии (ЭМ), по хемосорбции кислорода, оксида углерода и диоксида серы, а также методом отравления катализатора сернистым ядом в процессе гидрирования. Все эти методы дают близкие значения дисперсности палладия. Из полученных данных вытекает, что большая часть палладия находится в кристаллическом состоянии. Дисперсность палладия зависит от его содержания в катализаторе, природы носителя, его удельной поверхности, от способа приготовления образца и наличия некоторых добавок. [c.253]

При изучении разнообразных коллоидно-химических объектов широко используют методы сканирующей и просвечивающей электронной микроскопии. Отметим перспективную методику приготовления реплик быстро замороженных образцов золей, позволяющую фиксировать во вра ени изучаемую картину. В исследованиях строения поверхности эффективно применяют такие современные физические методы, как Оже-спектроскопию, дифракцию медленных электронов, масс-спектрометрию вторичных ионов и др. [c.208]

В заключение отметим, что сканирующая электронная микроскопия является простым и информативным методом определения характеристик микрофильтрационных мембран. Можно разрешить структуру мембраны верхней и нижней поверхностей и поперечного сечения, а также оценить пористость и распределение пор по размерам. Необходимо соблюдать предосторожность, чтобы техника приготовления образца не искажала реальной пористой структуры. [c.173]

Немного найдется устройств, которые были бы снабжены таким количеством кнопок и измерительных приборов, как электронный микроскоп. Кроме того, некоторые методики требуют от исследователя настоящего искусства и огромного внимания к мельчайшим деталям. Тем не менее в большинстве случаев использование прибора не связано с серьезными затруднениями, а приготовление образцов довольно простое. Не может быть сомнений в том, что каждая лаборатория должна иметь доступ к электронному микроскопу, а каждый биохимик должен быть достаточно осведомлен о возможностях его использования. В дайной главе мы не будем касаться специфических методик или технических подробностей, а покажем возможности метода и опишем его принцип действия. [c.61]

Сведения о текстурных и структурных характеристиках исследованных образцов получены из анализа изотерм адсорбции азота и диоксида углерода, а также методом сканирующей электронной микроскопии. Обнаружено, что при термическом расширении происходит расщепление графитовых пластин на более тонкие слои. Полученные образцы обладают развитой микропористой структурой, представленной в основном щелевидными микропорами с преобладающим размером щелей 0,71-0,92 нм. Суммарный объем микропор составляет 0,114-0,330 см /г и зависит от способа приготовления углеродного материала. [c.122]

Действительная структура алюмосиликатных катализаторов была вскрыта в работе Киселева, Леонтьева, Лукьяновича и Никитина [62], применивших, помимо адсорбционного, также электронно-микроскопический метод. Объектами исследования служили две серии катализаторов различной обработки исходные, прокаленные в воздухе при 900° и обработанные перегретым водяным паром при 750°. Исследование в электронном микроскопе приготовленных двухступенчатым методом кварцевых или бериллиевых реплик сразу позволило убедиться в глобулярном строении катализаторов. Исходный образец первой серии состоял из шаровидных частиц диаметром около 150 А и меньше. Прокаливание на воздухе не приводило к изменению размеров частиц, но после обработки в атмосфере перегретого водяного пара последние вырастали до средних размеров около 450 А (фото 31). Эти частицы в первом приближении можно считать непористыми ввиду близких величин удельных поверхностей катализаторов, определенных адсорбционным и электронно-микроскопическим путем (например 80 и 60 соответственно для образца, обработанного водяным паром). Следовательно, порами являются зазоры между час- [c.148]

Если неметаллические включения размером <5 мкм анализируются неп осредственно в матрице, в спектре рентгеновского излучения частицы будет содержаться ииформация от матрицы. Поэтому при исследовании неметаллических включений наиболее важным методом приготовления образца для анализа является метод снятия реплик. В случае металлических матриц металл полируют и травят так, чтобы неметаллическое включение выступало над поверхностью, но оставалось присоединенным к металлу. Затем на поверхность образца напыляют углерод. Металл снова стравливают, а неметаллические включения остаются в углеродной реплике в тех же положениях, которые они занимали в металле. На рис. 9.6 по Казан этот двухстадийный процесс [266]. Следующей стадией являются уста1новка углеродной пленки на сетке просвечивающего микроскопа и исследование частиц в РЭМ. [c.174]

Пальмы. Листья пальмирской пальмы, растущей в Индии использовались веками в качестве писчей бумаги. Они содержат прекрасные кремнистые конкреции. Эндокарний альбумина ореха содержит слой удлиненных клеток, собранных вместе в виде палисадника. Каждая клетка имеет трубообразный лю.мен, наполненный кремнеземом. Фризон [52] разработал метод приготовления образцов для оптического исследования таким образом, что прекрасной формы иглы кремнезема, каждая из которых была покрыта еще более тонкой иглой, могли хорошо наблюдаться под микроскопом. Кремнистые конкреции есть также в эндокарпии и волокне кокосового ореха, в волокнах американской липы и в манильской пеньке. [c.273]

Рис. 3.3. Схематическое изображение строения хлоропласта, наблюдаемого под электронным микроскопом. При приготовлении образца используется метод замораживания — скалыванид, благодаря которому удается увидеть внутреннее устройство хлоропласта. [По Стей-лину (Stahelin), J. ell Bio ., 71, 136 (1976).]

Листья пальмы барассус пальмира, растущей в Индии, иа протяжении веков использовались как писчая бумага. Эти листья содержат отчетливые кремнеземистые включения. Эндокарпий костяной пальмы содержит слой вытянутых клеток, объединенных вместе в столбчатое образование, причем каждая клетка имеет воронкообразную полость, заполненную кремнеземом. Фризон предложил способ приготовления образцов для их исследования оптическими методами и получил превосходно выраженные иглы кремнезема, причем каждая из них была покрыта еще более тонкими иглами, что хорошо просматривалось под микроскопом. Кремнеземистые включения имеются также в эндокарпии кокосового ореха и в волокнах кокосовой пальмы, липы, а также в манильской конопле. [c.1028]

А priori напрашивается допущение, что даже атактические полимеры способны к образованию каких-то упорядоченных форм — морфоз — и около 25 лет тому назад соответствующие— как правило, нарисованные на бумаге — модели были очень модными. Но а priori всегда опасно. В физике любые допущения, к счастью, могут быть проверены либо на опыте, либо посредством вероятностных расчетов. Правда, применительно к аморфным полимерам возможность реальных опытов появилась сравнительно недавно. Если полимер аморфен, то никакие дифракционные методы начего не увидят . Что же касается так называемого прямого наблюдения, например, электронной микроскопией, то слишком большую роль играет история (способ приготовления) образцов. [c.66]

Для осаждения очень мелких частиц даже в жидкостях с низкой 1Вязкостью, как, напри мэр, в воде или опирте, требуется длительное время, что следует из уравнения Стокса. Чтобы сократить время осаждения, ускорение силы тяжести может быть увеличено в несколько тысяч раз с помощью методов центрифугирования . Поэтому быстро вращающиеся центрифуги, например центрифуги с по(дввшенными гильзами (модель Э ко-(Сью(периор ), или ультрацентрифуга Шар-пла, дающая 35000—40000 оборотов в 1 мин., или ультрацентрнфуга Сведберга, способствовали проведению исследовательских работ в области силикатов, особенно с фракциями зерен размером меньше 0,5ц. Центрифуги необходимы для приготовления образцов, получаемых с помощью современных коллоидных мельниц, для исследования в электронном микроскопе и для других целей. Средний радиус частиц данной фракции вычисляется, согласно Сведбергу, по уравнению [c.241]

На основании данных исследования угловой дисимметрии рассеянного света и электронной микроскопии Хастингс с сотр. [17] пришел к выводу, что форма образующихся частиц изменяется в процессе титрования, когда было обнаружено увеличение количества ассоциатов типа ожерелья . Постоянное увеличение размера агрегатов наблюдал также Аллен с сотр. [18] и Рабель и Уберайтер [30а]. В отличие от указанных данных Рябова с сотр. [18а] не обнаружила подобных изменений методом электронной микроскопии в том случае, если растворитель из образца был удален путем возгонки при замораживании. Эти авторы наблюдали только сферические или овальные частицы размерами 0,08—0,4 жп. Образования агрегатов или коагулятов не наблюдали даже в конце титрования. Интенсивная коагуляция происходила лишь в том случае, если в процессе приготовления образцов для электронной микроскопии растворитель удаляли при температурах немного выше точки [c.201]

Метод замораживания образца для приготовления срезов вулканизатов на микротоме ротационного типа был описан Чепиусом и Робблсом в 1957 г. Они поддерживали образец в замороженном состоянии при микротомировании при помощи смеси сухого льда и спирта. Замораживание образца жидким азотом с использованием ротационного микротома типа Портера — Блюма, также позволяет изготовлять срезы высокого качества, достаточно тонкие для исследования в электронном микроскопе. Держатель образца в микротоме типа Портера — Блюма (рис. 6.9) такой же, как и в микротоме салазочного типа, по имеет более совершенную тефлоновую [c.178]

В библиографиях, посвященных электронной микроскопии [37, 1571, указаны работы по применению этого метода для анализа полимеров. Наилучшие результаты получены с материалами, из которых можно получить образцы толщиной в несколько сотен ангстрем. Почти все исследованные образцы можно отнести к группам срезов, дисперсий или отпечатков во многих случаях подготовка образцов является серьезной задачей. Далее, во время исследования в вакууме образцы подвергаются действию электронов с энергией 50 кв и более. Шерсть и другие кератиновые вещества исследовали в виде отпечатков или дисперсий химически модифицированных волокон. Целлюлозу, как нативную, так и регенерированную, изучали в виде дисперсий. С волокон хлопка, ацетилцеллюлозы и регенерированной целлюлозы снимали отпечатки, причем в некоторых случаях после химической обработки образцов. Интенсивно изучались дисперсии коллагеновых веществ. Имеются более или менее специфичные красители для электронной микроскопии использование ультрамикротома еще более расширит область применения электронного микроскопа. Чепмен иМентер [31] использовали отражательный электронный микроскоп для изучения формы волокна, структуры его поверхности и его износа. Быстрое разрушение образца, искажение пучка и относительно небольшое разрешение уменьшают преимущества непосредственного исследования образца. Однако вследствие ограниченных возможностей применения для аналитических целей методы электронной микроскопии в настоящем разделе детально не рассматриваются, а читатель отсылается к некоторым книгам [38, 84, 85, 272, 274], посвященным электронной оптике и методам на ее основе. Королевское общество микроскопии посвятило целый номер своего журнала 45] практическому использованию метода электронной микроскопии. Этот сборник может служить полезным руководством по приготовлению образцов. [c.248]

Из всех приборов, которыми располагает вирусолог, электронный микроскоп — один из самых мощных. Изображение объекта получается в результате рассеяния потока электронов исследуемым образцом. Присутствие в образце тяжелых атомов улучшает изображение, так как чем выше атомный номер, тем больше рассеяние. Приготовление образца — дело чрезвычайной важности. Ввиду необходимости высушивания водного раствора, содержащего вирусы, присутствие в нем нелетучих солей крайне нежелательно. Используя лиофильную сушку, можно в значительной степени избежать уплощения полых объектов, происходящего при обычном высушивании образца. Еще одним техническим усовершенствованием является метод оттенения, который состоит в том, что испаряющиеся атомы тяжелых металлов напыляют на объект с одной стороны, вследствие чего позади объекта образуются тени, по форме которых можно судить о многих деталях формы объекта [23, 556]. Одной из самых красивых иллюстраций этого метода является изображение крупного вируса насекомых — радужного вируса долгоножки, полученного с помощью метода двойного напыления, который нозволи.ч выявить присущую частицам этого вируса икосаэдрическую симметрию (см. гл. VIII) [5541. [c.38]

Размеры частиц определяли с помощью электронно-микроскопического метода. Образцы для анализа готовили путем концентрирования частиц методами фильтрации и дистилляции. Пробы частиц из хлоридов отбирали на фильтр Петрянова марки АФА-Д. Последний помещали на коллодиевую подложку и. выдерживали в парах ацетона до образования прозрачной пленки, фиксирующей частицы. Приготовленные образцы просматривали в электронном микроскопе УЭВМ-10. По электронно-микроскопическим снимкам определяли размеры частиц, присутствующих в хлоридах. [c.98]

Спектры КР регистрировали при помощи спектрометра ДФС-24. Источником возбуждения служила линия = 514,5 нм лазера 1ЬА-120 фирмы Карл-Цейсс Йена , ИК-спектры поглощения получены на спектрофотометре 8ресог(1-751Л с использованием методики приготовления образцов осаждением тонкоизмельченного исследуемого вещества на подложку из КВч. Электронно-микроскопические снимки получены на сканирующем электронном микроскопе УЭМБ, пробы подготавливали методом платино-угольных реплик. Рентгенофазовый анализ (РФА) [c.169]

Для исследования образцов, из которых растворитель полностью не удаляется, был разработан ряд оригинальных методов. Одним из них является метод замораживания—травления. Замороженный образец раскалывают ударом ножа и затем лиофилизу-ют. При этом растворитель сублимирует, нелетучие макромолекулы выступают из замороженного юдного слоя, и в результате на поверхности выявляется тонкая структура образца. Затем с помощью специального источника на исследуемую поверхность напыляют атомы углерода, благодаря чему создается тонкая углеродная пленка, являющаяся репликой поверхности. Углеродную реплику осторожно отделяют от поверхности и помещают на сетку электронного микроскопа. После оттенения тяжелыми атомами реплику исследуют обычным способом в микроскопе. Внешний вид образцов, приготовленных методом замораживания—травления или сходным методом, часто значительно отличается от вида образцов, приготовленных простым высушиванием на воздухе фиксированных образцов. Например, рибосомы 70S, приготовленные методом замораживания—травления, имеют размеры 170х 230 х 250 А и соответственно объем 5,1 10 A . Более распространенный метод простого высушивания обычно дает размеры 160х 180 х 200 A и соответственно меньший объем 3,0 10 A . Данная ситуация напоминает случай уменьшения объема при превращении сливы в чернослив, причем оценить такое уменьшение довольно трудно. [c.180]

Полиовирус относится к наиболее подробно охарактеризованным вирусам. В табл. 18.4 описаны некоторые его физические свойства. Вирион имеет примерно сферическую форму. Он лишен липидной оболочки, поэтому его инфекционность практически не меняется при обработке органическими растворителями, такими как эфир или хлороформ. Согласно электронно-микроскопическим данным, диаметр частиц варьирует от 24 до 30 нм. Столь широкий диапазон размеров обусловлен уплощением частиц или разной проницаемостью их для красителей (солей тяжелых металлов) в ходе высушивания и окрашивания, проводимых при приготовлении образцов для электронной микроскопии. Лиофилизованные препараты теряют 99,99% или более исходной инфекционности это означает, что вода играет важную роль в поддержании целостности нуклеокапсида. Недеструктивные методы, такие как седиментационное равновесие [32], малоугловое рентгеновское рассеяние, рентгеновская дифракция [93, 160], с помощью которых измеряют диаметр влажных частиц, показывают, что диаметр вириона находится в интервале 29,8—30,7 нм. [c.199]

Пример 6-Г. Наблюдение репликации молекулы ДНК Е. oli. Джон Кейрнс выращивал бактерии Е. oli в течение многих поколений в среде, содержащей H-dT затем он выделял нефрагментированную ДНК, растягивал ее путем адсорбции на фильтре из нитроцеллюлозы (гл. 7) и получал авторадиограммы методом покрывающей пленки. Примеры полученных им прекрасных картин приведены на рис. 6-10. Авторадиограммы показали, что молекула ДНК Е. соИ представляет собой кольцо, и дали длину молекулы. [Хотя молекулы ДНК довольно легко можно увидеть в электронном микроскопе (гл. 13), электронная микроскопия таких больших молекул (M = 2,6-10 ) в расправленном виде невозможна, поскольку приготовление образца для электронной микроскопии приводит к разрывам в ДНК. [c.148]

Для определения предела растворимости Ь1А8Рб в полимерных матрицах СКН-26, СКН-40 и СКН-50-5 использовали методы рентгенофазового анализа (81ое ЗТАВЬР, Си Г -излучение, 20 = = 5-90°), оптической микроскопии в поляризованном свете (МИК-8) и ИК-спектроскопии (ЦК-20, область частот 700-3600 см ) [7]. Приготовление образцов, оптическую микроскопию, съемку дифрактограмм и ИК-спектров проводили в условиях, исключающих попадание влаги в пленки. [c.10]

Исследование структуры полимеров с помощью злектронных микроскопов можно проводить непосредственно а образцах полимера, приготовленных в виде ультрато,нких срезов, или на специально изготовленных образцах для растровых микроскопов (прямые методы), либо на слепках-репликах с поверхности полимера (косвенные методы). Применение косвенных методов вызвано разрушением полимера в электронном луче, что искажает картину структурного рельефа, роме того, применение косвенного метода позволяет получить высокое разрешение (до 0,3 нм). В то же время косвенные методы трудоемки и требуют специальной подготовки поверхности полимера. [c.111]

Травление образцов увеличивает контраст между фазами, обнаруживает бловдость в структуре, позволяет охарактеризовать взаимное расположение отдельных зерен. Выбор травителя определяется обычно экспериментально на основе химической природы составляющих фаз. Существует несколько способов нанесения травителя на шлиф. При одном из них полированную поверхность погружают в сосуд с травите-лем. При этом необходимо перемешивание, чтобы травление происходило равномерно и продукты травления не оседали на шлифе. Этот метод требует большого расхода реактивов. При других способах травящие реагенты наносят из капельницы на полированную поверхность или втирают в нее ватой. Время действия травителя определ51Ют опытным путем, просматривая шлиф под микроскопом. Визуально это определить нельзя, так как некоторые сплавы сохраняют блестящую поверхность и в травленном виде. Недотравленные образцы снова полируют в течение 1—3 мин, а затем травят более продолжительное время. Если шлифы были приготовлены заранее, то перед травлением их поверхность активизируют кратковременной полировкой. Приготовление шлифов для изучения микротвердости производится таким же образом. Микротвердость измеряют на травленных образцах, причем выбирают такой травитель, который характеризуется меньшей скоростью взаимодействия с поверхностью образца. [c.51]

Отметим, что близкие результаты, указывающие на значительные упругие деформации в приграничных областях, были получены недавно в работе [119], где наблюдали и измеряли методом просвечивающей электронной микроскопии кривизну кристаллической рещетки вблизи границ зерен, а также переменную разори-ентацию вдоль индивидуальных границ в N1, подвергнутом ИПД. В этой работе, используя изгибные контуры экстинкции, исследовали структурную кривизну рещетки, которая является кривизной кристаллографических плоскостей, параллельных волновому вектору, в отличие от обычной изгибной кривизны, относящейся к плоскостям, перпендикулярным волновому вектору. Вследствие этого структурная кривизна отражает реальную структуру объемных образцов, поскольку плоскости, параллельные волновому вектору, практически не меняют свою кривизну при возможном изгибе фольги при ее приготовлении. [c.65]

Исследуемую частицу препарируют индивидуально под бинокулярным микроскопом, закрепляют электропроводным клеем на полированной медной подложке в середине предохраняющего металлического кольца. Затем препарат помещают в пресс-форму ручного винтового пресса и засыпают специально приготовленной электропроводной пластмассой. Брикетирование производят при нагреве до 120—140° С (температуру контролируют с помощью термопары). Таблетки диаметрод 10 мм и высотой 4 мм шлифуют и полируют вручную алмазными порошками на стеклянных притирках и сукне, контролируя качество полировки с помощью микроскопа. На полированную поверхность образца и эталонов одновременно напыляют слой углерода толщиной до 0,2 мкм при постоянном вращении держателя образца. Другие примеры использования этого метода для анализа лунного вещества см. в главе VI. [c.119]

Бактериологическое и биологическое исследование. После микроскопии материал засевают на специальные жидкие и плотные среды (анаэробный кровяной агар, среда Вильсона —Блера, среда Китта—Тароцци, желточная среда). Для приготовления неселективной среды для клостридий используют в качестве основы агар для бруцелл с 5 % бараньей крови, колумбийский или сердечно-мозговой агары, в которые добавляют дрожжевой экстракт, витамин К и гемин. В качестве селективных сред (для контаминированных образцов) можно использовать анаэробный кровяной агар с добавлением неомицина или фенилэтилового спирта. Перед посевом плотные материал гомогенизируют (растирают в стерильной ступке со средой накопления) и делят на две части, одну из которых прогревают в водяной бане при 80 °С в течение 10 мин (для уничтожения вегетативных клеток сопутствующих микроорганизмов). Обе части материала исследуют одновременно. В качестве альтернативного метода (особенно при подозрении на присутствие термочувствительных штаммов С. perfringens) используют обработку материала этиловым спиртом, к 1,0 мл исследуемого гомогената или экссудата добавляют такое же количество 95%-го этанола и перемешивают их при комнатной температуре в течение 1 ч, после чего этим материалом засевают указанные выше питательные среды. [c.191]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология