Сахароза, определение воды

Рефрактометрия — это ускоренный метод (экспресс-метод) определения содержания сахаров в плодах и овощах, поступающих для переработки на фабрики и консервные заводы в винограде, яблоках и грушах, в свекле, арбузах, дынях, томатах, моркови. При определении качества плодов и овощей предварительно находят коэффициенты пересчета количества растворимых в воде сухих веществ на содержание сахарозы. [c.385]

Опыты 1, 2, 4. Цилиндр на 250 мл. Набор ареометров. Мерная колба на 1000 мл. Мерный цилиндр на 50—100 мл. Бюретки. Конические колбы на 100— 150 мл. Пипетки на 10 мл. Термометр до 250 С. Тигель. Ступка. Песочная баня. Эксикатор. Технохимические весы. Прибор для определения растворимости воздуха в воде (см. рис. 66). Прибор для криоскопического определения молекулярного веса (см. стр. 67). рН-метр ЛПУ-01. Хлорид натрия, растворы различной концентрации. Соляная кислота, концентрированная. Едкий натр, 0,1 н. титрованный раствор. Фенолфталеин. Сульфат меди. Нитрат аммония. Едкий натр, мелкие кусочки. Иод. Бензол. Этиловый спирт. Сульфат калия обезвоженный. Ацетат кальция, насыщенный раствор. Глюкоза (или сахароза). Растворы для определения pH. [c.172]

Рефрактометр прецизионный лабораторный РПЛ (рис. 61) служит для определения содержания сахарозы в растворах и поэтому также называется рефрактометром-сахариметром (кроме того, его используют для определения содержания растворимых сухих веществ или воды в плодах и овощах). [c.388]

Известны разнообразные другие цветные реакции с пирогалловой кислотой, трихлоруксусной кислотой, сахарозой, дихлоргидрином глицерина (зеленая окраска с Хмакс 625 нм), ароматическими альдегидами и др. они предложены для качественного и количественного определения витамина В в витаминных концентратах и пищевых продуктах [68]. Описан метод количественного определения витаминов Ог н Од хроматографией на бумаге с применением в качестве подвижной фазы петролейного эфира, насыщенного водой [69]. [c.104]

Рефрактометрический метод определения связанной воды оказался наиболее простым, точным и практически применимым методом контроля различных производственных процессов. Этот метод теперь называется индикаторным. Индикатором для многих коллоидов служит сахароза, концентрацию которой удобно определять рефрактометром или интерферометром. [c.6]

Характеристика продукции, сырья и полуфабрикатов. Помадные конфеты — сахарные кондитерские изделия, которые состоят из мелких (10... 20 мкм) кристаллов сахарозы, распределенных в насыщенном водном растворе различных сахаров сахарозы, глюкозы, мальтозы и декстринов. Такую структуру изделий получают из помадной массы — полуфабриката, образованного в результате определенной технологической обработки сахара, при которой сахар из крупнокристаллического состояния переходит в мелкокристаллическое, отчего помадная масса легко растворяется и тает . В отличие от сахара в помадной массе содержится от 9 до 12 % воды. Кроме того, в ней находятся мельчайшие пузырьки воздуха, придающие ей некоторую пышность и белую окраску. [c.131]

Пример 6. Рассчитать осмотическое давление одномолярного раствора сахарозы в воде, зная что при 30° давление пара раствора равно 31,207 мм рт. ст. Давление пара воды при 30° равно 31,824 мм рт. ст. Плотность чистой в ды при этой температуре (0,99564 г-слГ ) можно использовать для определения 1 разбавленного раствора. [c.204]

Молекулы сахарозы можно подвергнуть и другий изменениям. Любую молекулу сложного сахара, образованную путем конденсации двух или большего числа простых сахаров, можно без особого труда разложить на составные части. Для этого нужно только при определенных условиях присоединить к ним молекулы воды, тогда пойдет процесс, обратный процессу конденсации. На- [c.142]

Особые свойства граничных слоев воды проявляются также и в том, что вследствие отличия структуры воды изменяется ее растворяющая способность. Пониженная растворяющая способность широко использовалась ранее для определения количества связанной воды в дисперсных системах [68]. При этом в качестве индикаторов, не проникающих в связанную воду, широко использовались сахароза, глюкоза, некоторые спирты. Одним из нас [69] была развита теория нерастворяющего объема, основанная на рассмотрении поля поверхностных сил, выталкивающих молекулы растворенного вещества из граничного слоя. Современная форма этой теории обсуждается в главах X (см. 1) и V. [c.205]

Для определения принадлежности дрожжей к тому или иному Р.ИДУ используют методы, изложенные на стр. 499. Основным методом является выращивание их на разных специальных средах. Например, чистые культуры дрожжей выращивают 1) на дрожжевой воде с двухпроцентными растворами различных сахаров — глюкозой, галактозой, сахарозой, лактозой и др. 2) на синтетических средах с различными источниками азотистого питания — пептоном, сернокислым аммонием, нитратами 3) на других твердых средах. [c.538]

Это предположение можно лучше и подробнее пояснить, если рассмотреть определенный тип реакции, например гидролиз сложного эфира или сахарозы, для которого возможны два механизма катализа именно в кислом растворе. В каждом из этих случаев промежуточное вещество образуется в первой стадии быстро устанавливающегося равновесия в механизме А1 за этим равновесием следует медленное мономолекулярное разложение промежуточного вещества, затем — быстрая реакция с водой в механизме А2 промежуточное вещество реагирует с водой в бимолекулярной реакции, являющейся скорость-определяющей стадией. [c.74]

Осмотическое давление также можно использовать для определения молекулярной массы. Согласно уравнению (361), осмотическое давление раствора сахарозы с концентрацией 1 моль/л при 25 С составляет —2,5 МПа. Это соответствует гидростатическому давлению столба воды высотой 240 м (для раствора поваренной соли такой же концентрации осмотическое давление равно 5,0 МПа). Таким образом, осмотические явления проявляются в количественном отношении в значительно большей степени, чем криоскопи-ческие и эбулиоскопические измерения. Поэтому измерения осмотического давления для определения молекулярной массы можно проводить со значительно меньшей концентрацией растворенного вещества. [c.283]

Практически все определения сахара проводят на сахариметрах. Вначале прибор устанавливают на нуль °5 измерением чистой воды, а затем в него вводят образец- Разбаланс прибора дает показания в °5 один градус соответствует содержанию сахарозы 0,26 г. в 100 мл. [c.234]

Растворимость твердых веществ всегда ограничена. Взятое количество жидкости способно растворить только определенное количество твердого вещества. По растворимости в воде твердые вещества делятся на растворимые (хлористый натрий, сахароза и т. д.), малорастворимые (хлористый свинец, гидроокись кальция и т. д.) и практически нерастворимые (сернокислый барий, углекислый кальций и т. д.). [c.64]

Один или два листка растирают в ступке, экстрагируют сначала метиловым спиртом, а затем—смесью петролейного эфира и бензола, взятых соответственно в отношении 9 1. Прибавлением воды пигменты полностью переводят в смесь петролейного эфира с бензолом. Полученный зеленого цвета раствор пропускают через адсорбционную колонку (рис, 332), которая в верхних двух третях содержит измельченный сахар, в следующей одной шестой части колонки—карбонат. кальция и в нижней одной шестой— окись алюминия. При таком расположении адсорбирующая способность увеличивается сверху вниз от одного адсорбента к другому, так что легко адсорбируемые компоненты задержатся сахарозой, более трудно адсорбируемые—карбонатом кальция или окисью алюминия. Хроматограмму проявляют смесью петролейного эфира с бензолом, взятых в отношении 9 1. Зеленый хлорофилл адсорбируется сахарозой, желтый ксантофилл —карбонатом кальция и оранжевый каротин —окисью алюминия. Растворитель удаляют из колонки отсасыванием досуха, отделяют каждый слой и экстрагируют пигменты эфиром. Эфирные растворы разбавляют до определенного объема и анализируют колориметрическим методом, сравнивая их со стандартными растворами тех же самых соединений. Большое число таких разделений детально описано Стрейном. [c.410]

Ход определения сахарозы. Сахарозу переведите в инвертный сахар, т. е. подвергните инверсии. Возьмите пипеткой 50 мл фильтрата А, перенесите в мерную колбу емкостью 100 мл и поставьте на водяную баню, нагретую до 80° С. Одновременно поместите на баню такую же контрольную колбу с 50 мл воды и опустите в нее термометр. При температуре 00° С обе колбы снимите с бани и к раствору сахара прибавьте 3 мл концентрированной или 5,5 мл 20%-ной H I. Снова погрузите обе колбы в водяную баню с температурой 70° С. Когда контрольная колба нагреется до 68—70° С, отсчитайте 8 минут, снимите колбу, охладите и нейтрализуйте раствор сахара насыщенным раствором соды до перехода розовой окраски метилового оранжевого в желтую. Доведите объем жидкости в колбе водой до метки и профильтруйте через складчатый фильтр. Полученный фильтрат Б служит для определения сахарозы. Анализируйте фильтрат Б так Нче, как и фильтрат А, и найдите таким образом общую сумму сахара. [c.495]

Колориметрический метод определения влаги основан на гидратации кобальтовых солей. Например, безводный бромид кобальта (И) имеет бледно-серую окраску, переходящую при образовании гексагидрата в темно-красную (см. гл. 6). Гардинер и Кейт [146] использовали дибромид кобальта (II) в новом гравиметрическом методе, позволяющем определять свободную и связанную воду в почти сухих кристаллах рафинированного сахара. В первом варианте анализа свободную, или поверхностную, воду экстрагируют безводным хлороформом и затем осаждают в форме СоВг2 6Н.,0. Во втором варианте безводный дибромид кобальта непосредственно смешивают с тонкоразмолотой пробой (удельная поверхность 3500 см /г) под слоем хлороформа или четыреххлористого углерода. При этих условиях дибромид реагирует со связанной водой in situ. Данный метод не является абсолютным и требует построения градуировочных графиков по известным количествам воды в присутствии сухой порошкообразной сахарозы. При этом градуировочные графики зависимости количества воды от количества гидратированного дибромида кобальта оказались линейными. Данные Гардинера и Кейта [146] показали, что высушивание в сушильном шкафу при 105 °С вызывает термическое разложение сахара. Считается, что более точно соответствуют количеству свободной влаги результаты, получаемые при высушивании в вакуумном сушильном шкафу при 70 С или методом экстракции и осаждения дибромидом кобальта. Испарение в вакууме и прямое определение воды с дибромидом кобальта позволяет до- [c.188]

Для определения воды было предложено несколько электрометрических методов. Кейд ель описал метод определения воды путем прямых амперометрических измерений, основанных на количественном электролизе воды в специально сконструированной электролитической ячейке. Коул с сотр. определяли воду в органических жидкостях с помощью системы для непрерывного кулонометрического титрования. Непрерывно движущийся поток образца, обдуваемый противотоком азота, пропускали через кулонометрическую ячейку, состоящую из безводной пятиокиси фосфора, запрессованной между платиновыми электродами. При этом из образца удалялась вода. Как утверждают авторы, точные результаты получаются при анализе образцов с содержанием воды вплоть до 1 ррт. Двумя группами исследователей 2, мз было рекомендовано определение воды в органических образцах путем измерения диэлектрической проницаемости. Для этого образец экстрагируют безводным диоксаном. Диэлектрическая проницаемость водных растворов диоксана находится в линейной зависимости от содержания воды. Этот метод применим для определения воды только в таких неполярных соединениях, как сахароза и т. п. [c.436]

Определение водиого потенциала ткани состоит в записи исходной величины электрического сигнала, поступающего от сухого терморезистора из термостатированной камеры, заполненной исследуемым образцом, и записи силы тока после смачивания терморезистора путем кратковременного погружения его в капсулу с водой. Калибровка установки проводится по регистрации измеиения силы тока при помещении в камеру фильтровальной бумаги, смоченной раствором сахарозы с известным осмотическим потенциалом. Некоторая погрешность определения возникает вследствие того, что ткань листа ведет себя не так, как влажная фильтровальная бумага, используемая для градуировки. Это частично объясняется тем,что при работе с листовой тканью в психрометре оказывается значительно меньше воды, чем при измерениях, проводимых с почвой или влажной фильтровальной бумагой за счет же воды, адсорбирующейся на стенках психрометра, могут существенно снижаться содержание воды и величина водного потенциала ткани во время определения. Значение этого обстоятельства можно уменьшить, если свести к минимуму объем свободного пространства в камере, увеличить массу растительного объекта, изготавливать камеру с минимальной адсорбцией пара. Внутри камеры должна быть полироваи-ная металлическая поверхность. Возможно также влияние иа [c.51]

При присоединении одного моносахарида к другому посредством гликозидной связи с формальным отщеплением 1 моль воды образуется соединение, называемое дисахаридом. Присоединение следующих молекул моносахарида дает три-, тетра-, пентасахариды и высшие сахариды вплоть до высокомолекулярных соединений— полисахаридов. Хотя не существует строгого определения олигосахаридов, обычно считают, что к ним относятся соединения, содержащие менее семи или восьми углеводных остатков. Наиболее известными и легкодоступными представителями олигосахаридов являются дисахариды. Среди них наибольшее распространение имеет сахароза (а-й-глюкопиранозил-р-й-фруктофуранозид) (1)—невосстанавливающий дисахарид, встречающийся во всех растениях [1]. Дисахарид лактоза (4-0-р-Д-галактопиранозил-й-глюкоза) (3) входит в состав молока млекопитающих 12]. Кроме них единственным природным олигосахаридом, доступным в больших количествах, является трегалоза (а-й-глюкопиранозил-а-/3-глюкопиранозид) (4) — невосстанавливающий дисахарид, содержащийся в значительном количестве в сухих дрожжах 3]. У насекомых трегалоза выполняет функцию резервного сахара, из которого при необходимости регенерируется глюкоза. Раффиноза (5), единственный легкодоступный природный трисахарид, содержится вместе с сахарозой в сахарной свекле. Некоторые олигосахариды довольно легко можно получать частичным гидролизом полисаха- [c.202]

Рис. 4.5. Определение Дгр с помощью центрифугирования митохондрий через силиконовое масло. Митохондрии инкубируют в среде, не содержащей К+, в присутствии валиномицина, Rb+, С-сахарозы и НгО. Аликвоту суспензии помещают в небольшую пробирку, содержащую силиконовое масло, и центрифугируют при 10 000 g в течение 1 мин. Митохондрии образуют под слоем масла осадок, который можно затем растворить для жидкостно-сцинтил-ляционного счета. Определяют также радиоактивность в надосадочной жидкости. Наличие в среде С-сахарозы позволяет определить доступный для сахарозы объем в осадке (Ксах). Он соответствует загрязнению осадка вне-митохондриальной средой инкубации. Разность между объемом, доступным для НгОС в), и V ax дает величину объема, недоступного для сахарозы, который соответствует объему матрикса (так как через внутреннюю мембрану проникает не сахароза, а вода). Если теперь определить в осадке кажущуюся величину объема, доступного для eRb (Vm), то по уравнению Нерн-

Рассчитать осмотическое давление 1 М водного раствора сахарозы, зная, что при 30°С давление пара раствора равно 31,207 ммрт.ст. Давление пара воды при 30°С составляет 31,824 мм рт. ст. Плотность чистой воды при этой температуре (0,99564 г/см ) можно использовать для определения Vi разбавленного раствора. Чтобы решить эту задачу, в уравнение (4.22) нужно ввести закон Рауля . [c.137]

Для наблюдения скорости диффузиофореза были поставлены опыты [4], схема которых показана на рис. Х.7. Втцубке С С высотой около 10 см создавался вертикальный градиент концентрации сахарозы (или глюкозы), для чего нижний конец трубки сообщался с большим резервуаром В, содержавшим высокую концентрацию сахарозы, а верхний конец — с чистым растворителем в резервуаре А. Растворителем служила смесь воды и метилового спирта такой концентрации, при которой ее плотность была равна 0,97 г/см . В среднюю часть трубки помещались шарики японского воска с плотностью <3,945 г/см и радиусами от 0,1 до 1,5 мм. Вначале, когда весь перепад концентрации сахара был сосредоточен в узкой средней зоне трубки, все шарики независимо от радиуса были сосредоточены на почти одинаковой высоте в этой же зоне. По мере того как шла диффузия и зона переходных концентраций размывалась, устанавливалось определенное распределение шариков по высоте в зависимости ют их радиусов. [c.306]

Определение высоких концентраций (80—99%) серной кислоты возможно с помощью 1,1 -д иантримида [1038] и х и н а л и-зарина [1457]. Дегидратирующее действие серной кислоты на сахарозу [1164] позволяет определять 14—21 мкг SU /мл в природных водах. [c.133]

Определение окиси кальция. Аликвотную часть раствора 2 переносят в коническую колбу емкостью 250 мл, доводят объем водой до 100 мл и нейтрализуют по бумаге конго до слабосинего окрашивания. Добавляют 10 мл 10%-ного раствора едкого натра, 5 мл раствора сахарозы и индикатор мурексид. Окрашенный в малиновый цвет раствор титруют 0,05 н. раствором ЭДТА до -появления фиолетовой окраски V4). [c.103]

В процессе нагревания пробирки 2—3 раза встряхивают. Для предотвращения возможного выталкивания пробок пробирки рекоменду-. ют приоткрыть (спустя 1—2 мин после начала нагревания), выпустив-таким образом сжатый воздух, и снова плотно закрыть. Если же пробирки достаточно прочные, а пробки хорошо подогнаны, то такая предосторожность Излишняя. По окончании нагревания пробирки помещают в холодную воду на 10 мин. Смесь сильно встряхивают и центрифугируют 15 мин при 1500 об/мин. В центрифугате определяют показания рефрактометра. При повторном определении показание рефрактометра по сравнению с показанием, установленным до нагревания-смеси в кипящей водяной бане, значительно уменьшается. Наблюдается это не только в опыте, но и в контроле. Уменьшение показаний рефрактометра обусловлено образованием озазона и выпадением егсу в осадок. В контрольном опыте коэффициент преломления понижается вследствие расщепления сахарозы уксусной кислотой. Разность между уменьшением показаний рефрактометра в опыте и в контроле служит относительным показателем степени активности Р-фруктофу-ранозидазы (сахаразы). [c.83]

К аликвотной части раствора после отделения полуторных окислов прибавляют гидрокспламин и, если нужно, 2—3 капли 1%-ного раствора Na S. Прибавляют 10 Mj 20%-ного раствора NaOH, разбавляют водой до 200 мл, прибавляют раствор индикатора кислотного хром темно-синего до яркорозовой окраски и титруют 0,01 — 0,05 М раствором комплексона III до устойчивой синевато-сиреневой окраски. Если магний в щелочной среде осаждается, повторяют определение в новой аликвотной части, предварительно, внеся в раствор 0,1—0,2 г сахарозы. [c.204]

В производстве лизина используется меласса, содержащая термолабильный компонент-сахарозу. Поэтому ее стерилизуют отдельно. В реактор, снабженный мешалкой, подают мелассу и нагревают ее при постоянном размедшвании до температуры 80 °С, смешивая ее с водой согласно имеющейся рецептуре, затем ее быстро разогревают глухим паром до температуры 120-122°С в специальном аппарате и выдерживают при этой температуре определенное время, необходимое для полной гибели всей микрофлоры. Остальные компоненты среды также в реакторе с перемешиванием смешивают и растворяют в воде с подогревом, нагревают [c.35]

Ход определения. Вариант А. (Определение сахарозы после гидролиза.) Отбирают 100 мл пробы или меньший ее объем, разбавленный до 100 мл дистиллированной водой, а иногда и больший объем пробы и подш,елачивают раствором карбоната натрия до слабой щелочной реакции, которую проверяют лакмусовой бумажкой. Смесь выпаривают на водяной бане приблизительно до 50 мл и фильтруют. Фильтр с осадком промывают дистиллированной водой. Фильтрат разбавляют дистиллированной водой до 100 мл, подкисляют 5 мл разбавленной соляной кислоты, подогревают на водяной бане до 60—70° С, дают постоять при этой температуре 2 мин, после чего быстро охлаждают. Затем нейтрализуют разбавленным раствором едкого натра. Отдельно приготовляют раствор Фелинга, сливая растворы I и II в соотношений 1 1. К пробе прибавляют 20,0 мл этой смеси и нагревают приблизительно 10 мин на кипящей водяной бане. После быстрого охлаждения до комнатной температуры последовательно прибавляют 0,2 г иодида калия, 10 жл соляной кислоты и 20 мл раствора роданида калия. Смесь титруют 0,1 н. раствором тиосульфата до обесцвечивания крахмала. Раствор должен оставаться бесцветным не менее 3 мин. Таким же образом проводят холостое определение с дистиллированной, водой. [c.376]

Концентрация водородных ионов определяется измерением скоростей иодид-иодатной [54] и бромид-броматной [8] реакций, которые являются реакциями второго порядка относительно водородных ионов. Инверсия сахарозы [41, 55, 63] и гидролиз эфиров [15, 17, 31, 38, 65] являются реакциями, которые наиболее часто используются в каталитическом определении Л другими примерами являются реакции ацетона с иодом [16, 18, 32], присоединение воды к изобутилену [14] и к эпихлоргид-рину [37] и разложение диазоуксусного эфира [14, 16, 28, 56] и нитрита аммония [7]. Константы диссоциации кислот в спиртовых растворах вычислены из скоростей этерификации [22—25, 31, 51] и образования ацеталей [19]. [c.360]

Косвенный атомно-абсорбционный метод определения миллиграммовых количеств иода в органических соединениях основан на его осаждении в виде иодида серебра и определении количества осажденного серебра. В микростакан помещают навеску пробы, содержащей около 50 мг иода, 3 г пероксида натрия, 250 мг нитрата калия и 100 мг сахарозы, переносят в микробомбу и нагревают на микрогрелке. Полученную массу растворяют в 50—60 мл воды, кипятят до разложения образованного пероксида водорода, раствор переводят в мерную колбу вместимостью 100 мл и доливают воду до метки. К 10 мл раствора добавляют серную и азотную кислоты до окрашивания метилового оранжевого в розовый цвет, для восстановления Юз до 1 добавляют 10 мг сульфата гидразина и выдерживают 15 мин на кипящей водяной бане. Иод осаждают избытком 0,005 Л1 раствора нитрата серебра, осадок отфильтровывают на фильтре синяя лента, промывают водой, сразу растворяют в 10%-ном растворе иодида калия, доводят объем раствора водой до 100 мл, разбавляют еще в 10 раз 10%-ным раствором иодида калия и измеряют абсорбционный сигнал серебра по линии [c.261]

В реакции диазоуксусного эфира с водой выделяется азот, поэтому скорость реакции КаСНСООСаНв -Н HjO->HO H2 OO 2H5-(--l- N2 удобно контролировать манометрическим методом. Реакция специфически ускоряется ионами водорода. При 25 °С каталитический коэффициент в 827 раз больше, чем для гидролиза сахарозы. С момента открытия прямой пропорциональности между скоростью реакции и концентрацией ионов водорода [30] этот процесс часто использовали для определения pH кинетическим методом. [c.323]

Сахарозу перед определением инвертируют. С этой целью 5 г сахара растворяют в 50 мл 0,02 н. НС1 и нагревают в течение 30 мин па кигиацей водя юй баие. После охлаждения раствор нейтрализуют 1 Мм 1 и. МаОИ, разбавляют до объема 500 мл и, отобрав ал и квотную часть, определяют содержание сахара по описанной выше методике, [c.110]

Если рассчитать ХПКтеор соответственно определению этого понятия, данному в разд. 5.6.1, и разделить на содержание углерода (в мг/л), то для всех углеводов (например, глюкозы, сахарозы, полисахаридов) мы получим одно и то же значение этого показателя, равное 2,67. То же значение получится для уксусной и молочной кислот. Для белков, приняв их средний состав С —53%, И — 7 %, О — 23 7о, N — 17 %, 5 — 0,25 %, получим величину 2,8. Если принять для гуминовых веществ среднее соотнощение в них С И О N == 16 17 8 1, то для них указанный показатель будет равен 2,6. Таким образом, для основных органических веществ природного происхождения значения этого показателя равны 2,6—2,8. То же можно сказать и об органических веществах в стоках пищевой промышленности и в бытовых сточных водах, не загрязненных промышленными стоками. [c.79]

Так как озотриазольные производные обладают четкими температурами плавления, имеют высокое удельное вращение и мало растворимы в воде, они могут быть применены для идентификации сахаров. Для иллюстрации удобства определения сахароз в виде N-фенилозотриазольных производных приводится табл. 4 констант некоторых из этих соединений. [c.184]

Углеводы — обширная группа органических веществ, широко распространенных в живой природе. Представителями углеводов являются виноградный сахар (глюкоза), свекловичный, или тростниковый, сахар (сахароза), крахмал, целлюлоза. В результате процесса фотосинтеза (см. стр. 214) растениями на нашей планете ежегодно создается огромное количество углеводов, которое оценивается содержанием углерода 4-10 т. Поэтому можно считать, что углеводы являются наиболее распространенными органичес кимй соединениями. Около 80% сухого вещества растений прихо дится на углеводы, из которых состоят опорные ткани растений в зерне, картофеле, овощах, плодах углеводы служат резервными питательными веществами. Невозможно переоценить значение угле водов как одного из основных средств питания человека и сель скохозяйственных животных. Переработкой углеводов заняты круп ные отрасли промышленности химическая (производство искус ственных волокон, пластмасс), целлюлозно-бумажная, текстиль ная, пищевая и др. Углеводы (хотя и в небольших количествах являются обязательной составной частью животных организмов в крови, поддерживается строго определенная концентрация глю козы (у человека 0,08—0,11%). Вещества, регулирующие важней шие процессы жизнедеятельности, — протеиды, нуклеиновые кис лоты (см. стр. 612) и другие содержат в своем составе остатки молекул углэводов. [c.204]

Было установлено, что биологическое самоочищение продуцирует биомассу, количество которой достигает 30% и более загрязнения, удаленного из воды. Эксперимент позволил также оценить ограничение скоростей удаления, обусловленное абсолютной концентрацией загрязняющих соединений. Рис. 36 в обобщенном виде представляет специфические скорости самоочищения различных концентраций сахарозы эпибентической биомассой в воде при различных соотношениях гетеро- и фототрофных микрофитов. На основании этих данных становится очевидным, что фототрофные микрофиты малоактивны в отношении изученных органических соединений. С этим связано снижение скорости самоочищения в реке при увеличении численности фототрофов. Независимо от этого фактора проявляется воздействие абсолютной концентрации отдельных загрязняющих соединений. При концентрациях ниже определенного уровня наступает замедление самоочищения в соответствии с известной зависимостью между скоростью роста и концентрацией лимитирующих веществ, поскольку в реках обычно присутствуют довольно низкие абсолютные концентрации отдельных соединений (даже при условии массивного загрязнения) максимальная скорость роста организмов, ответственных за самоочищение, возможно, никогда не наблюдается в природе. [c.128]

В большинстве случаев в качестве тяжелого раствора использовался 30%-й раствор сахарозы, но если для определения радиоактивности требовалось высушивать фракции, применялась дей-териевая вода. Последняя метилась добавлением малого количества фенола, и концентрация смеси легкой и тяжелой воды в дальнейшем определялась по поглощению в ультрафиолете. [c.75]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология