Дрожжи, определение воды

НАД встречается во многих органах и тканях человека и животных, много его и в дрожжах. Этот кофермент легко извлекается из дрожжей горячей водой (он термостабилен) и может быть обнаружен по образованию флюоресцирующего комплекса с ацетоном. Эта реакция, как мы уже знаем, характерна для Ы-производных амида никотиновой кислоты, она применяется для определения метилникотинамида в моче (см. работу 69). [c.117]

С момента внесения дрожжей в сусло начинается его брожение, целью которого является максимально полное и быстрое превращение сахаров в спирт. Спиртовое брожение сложный биохимический процесс, в результате которого сахара бражки под действием ферментов дрожжей превращаются в спирт и углекислый газ. Превращение сахаров в спирт и углекислый газ происходит внутри дрожжевых клеток. При этом сахара сначала адсорбируются на поверхности клетки, а потом диффундируют внутрь нее. При прочих равных условиях адсорбционная способность дрожжевых клеток определяется суммарной площадью их поверхности, которая, несмотря на относительно малые размеры одной клетки, довольно значительна при среднем диаметре дрожжевой клетки 8 мкм и с учетом того, что в 1 л нормально заправленной дрожжами бражки находится около 100 миллионов дрожжевых клеток, общая площадь поверхности их в 1 л составляет несколько десятков квадратных метров. С поверхности дрожжевой клетки адсорбированные молекулы сахаров диффундируют внутрь клетки, где под действием находящихся в ней ферментов расщепляются на этиловый спирт и углекислый газ. В свою очередь, молекулы этилового спирта и углекислого газа диффундируют из дрожжевой клетки в окружающую среду. В силу высокой растворимости в воде этиловый спирт равномерно распределяется в бродящей среде. При этом его концентрация (до определенных пределов) в клетке остается все время выше, чем в сусле, и молекулы спирта непрерывно уходят за пределы дрожжевой клетки. [c.120]

В микробиологической промышленности, так же как и в других производственных сферах, все технологические процессы связаны с большим расходом воды. Необходимо отметить, что главный процесс — культивирование микроорганизмов — идет в водной среде. Масса клеток в конце ферментации обычно не превышает 1—2%, а концентрация растворенных веществ — 5—10%. Независимо от того, где находится целевой продукт — в клеточной массе или в растворе, нерастворимую фракцию, включая и биомассу, перед спуском непригодного жидкого остатка в канализацию отделяют центрифугированием, фильтрацией или осаждением. Если в жидкости после выделения нужных продуктов остается много редуцирующих веществ в виде ассимилируемых микроорганизмами источников углерода, то такую жидкость культивации можно использовать в качестве среды для получения кормовых дрожжей или кормового витамина В и, а также других полезных веществ и продуктов. Однако даже после повторного использования жидкие отходы еще содержат определенное количество веществ, дальнейшее использование которых невыгодно. Эти отходы вместе с питьевой, бытовой и другими видами воды попадают в канализацию. Объем сточных вод можно уменьшить, применяя, где возможно, рециркуляцию. Это в первую очередь относится к охлаждающей воде. В ряде случаев остаток культуральной жидкости или часть ее можно использовать для приготовления питательных сред. [c.215]

Для определения принадлежности дрожжей к тому или иному Р.ИДУ используют методы, изложенные на стр. 499. Основным методом является выращивание их на разных специальных средах. Например, чистые культуры дрожжей выращивают 1) на дрожжевой воде с двухпроцентными растворами различных сахаров — глюкозой, галактозой, сахарозой, лактозой и др. 2) на синтетических средах с различными источниками азотистого питания — пептоном, сернокислым аммонием, нитратами 3) на других твердых средах. [c.538]

Определение общего количества бактерий в молоке. Вначале готовят разведения (10 — Ю ), для чего из отобранной пробы стерильной пинеткой берут 1 мл молока и переносят в пробирку, содержащую 9 мл стерильной водопроводной воды пипетку неоднократно споласкивают водой, находящейся в пробирке, и больше не используют. Пробирку взбалтывают 1 мин и таким образом получают разведение 10 Ч Затем готовят последующие разведения. При обесцвечивании молока до 20 мин делают глубинный посев из разведений 10 , 10 и 10 . Для этого берут отдельной стерильной пипеткой по 1 мл суспензии и вносят в стерильные чашки Петри (в двух- или трехкратной повторности). При обесцвечивании молока после 20 минут посев делают из разведений 10 , 10 , 10 . В чашки с суспензией вносят расплавленный и охлажденный до 45—50°С мясо-пептонный агар. После перемешивания суспензии с агаром чашки Петри с посевом помещают в термостат при 28—30°С. После трехдневной инкубации проводят подсчет колоний бактерий в чашках. Количество дрожжей и плесеней подсчитывают на 4-й день. Число колоний умножают на степень разведения и выводят среднее арифметическое из трех чашек. Таким образом определяют численность бактерий в 1 мл молока. [c.206]

Для осуществления спиртового брожения прежде всего необходимо, чтобы в пивоваренном сырье образовался сахар. Традиционным источником нужных для этого полисахаридов всегда был ячмень, но в качестве дополнительных используются и другие виды углеводсодержащего сырья. И сегодня ячменный солод составляет основу пива. Ячменный солод и другие компоненты измельчают и смешивают с водой при температуре до 67 °С. В ходе перемешивания природные ферменты ячменного солода разрушают углеводы зерна. На заключительной стадии раствор, называемый суслом, отделяют от нерастворимых остатков. Добавив хмель, его кипятят в медных котлах. Дтя производства пива с определенным содержанием алкоголя сусло после кипячения доводят до нужной плотности. Удельная плотность сусла определяется содержанием экстрагированных сахаров, подлежащих сбраживанию. По истечении определенного времени брожение заканчивается, дрожжи отделяют от пива и выдерживают его некоторое время для созревания. После фильтрации и других необходимых процедур пиво готово. Схема производства процесса дана на рис. 9. [c.83]

Пантотеновая кислота. Пантетеин. Еще в 1933 г. наблюдали (Р. Дж. Уильямс), что многие дрожжи и бактерии не развиваются в отсутствие определенного ростового фактора , растворимого в воде. Вскоре было установлено тождество этого вещества с витамином, необходимым для роста птиц и млекопитающих. Поскольку этот витамин широко распространен и имеет универсальное значение, ему было присвоено название пантотеновая кислота. [c.395]

В простейшем случае готовят тесто, смешивая при комнатной температуре муку, воду дрожжи и соль. При замесе слои теста перемещаются, создаются условия для образования пузырьков газа и подъема теста. Замешанному тесту дают возможность подойти , а затем режут на куски нужного веса, формуют (при этом тесто раскатывают и складывают, чтобы получить нужную текстуру) и выдерживают во влажной атмосфере. При выдержке и на первой, следующей за ней стадии выпечки образовавшиеся при замесе и формовке зародыши газовых пузырьков наполняются углекислым газом. Он выделяется в ходе анаэробного сбраживания глюкозы и мальтозы муки. Поднявшееся тесто выпекают. В ходе этого термического процесса крахмал желатинизируется, дрожжи погибают и тесто частично обезвоживается. В результате мы получаем имеющий определенную форму, плотный по консистенции продукт с легкой ячеистой структурой и очень вкусной корочкой. . [c.102]

Концентрация растворенных веществ. В процессе эволюции микроорганизмы приспособились к различным концентрациям растворенных веществ в окружающей среде. Одно и то же вещество может по-разному влиять на жизнедеятельность микроорганизмов. В малых концентрациях оно может быть стимулятором развития микроорганизмов, а при повышении концентрации задерживать их рост и даже вызывать отмирание. Так, 2%-ный раствор хлорида натрия активизирует жизнедеятельность микроорганизмов, а при повышении концентрации до 5—10% вызывает их отмирание. В то же время существует ряд бактерий, которые приспособились к жизни в водах с концентрацией хлорида натрия до 25%. Такие микроорганизмы называются галофильными. Осмофильные дрожжи могут жить в насыщенном растворе сахара. Устойчивы к высокой концентрации солей и некоторые виды плесневых грибов. Постоянство определенного химического состава клеток микроорганизмов при изменении химического состава окружающей среды, например йри спуске сточных вод, обусловлено наличием в клетках механизмов регуляции солевого состава. Наличие таких саморегулирующихся систем обеспечивает сохранение жизнедеятельности микроорганизмов в водах с различным химическим составом. [c.222]

Нельзя больше сомневаться в том, что процессы образования эфирных масел миндаля и горчицы принадлежат к одному роду явлений, совершаются по одним законам почти равная степень подобия замечается между этими двумя процессами и процессом брожения Азотистое вещество, легко изменяющееся при посредстве воды и атмосферного воздуха, разлагает другое, постоянное в подобных случаях, тело, которое находится с ним в прикосновении. В процессе спиртового брожения сахаристых веществ, который более прочих исследован, разлагающим телом может быть растительный белок и всякое азотсодержащее органическое тело, в котором от действия особенных причин начался уже процесс разложения — гниение. В смеси растворов сахара с растительным белком или вообще в растительных соках, содержащих сахар, брожение начинается только при содействии воздуха потом может продолжаться уже без посредства его, причем образуется, кроме продуктов разложения сахара, еще особенное вещество, называемое дрожжами, которое содержит весь азот растительного белка и растворимой части, которого способность производить брожение и в растворе чистого сахара. Образование дрожжей из белка прекращается, коль скоро весь сахар уже разрушен брожением в растворе чистого белка, не содержащем сахара, дрожжей вовсе не образуется. При разложении чистого белка, без содействия воздуха, отделяется углеродная кислота и водород.— Это явление объясняет некоторым образом, откуда происходят вещества, содержащие много водорода, во время брожения различных тел. Способность дрожжей приводить в брожение сахаристые растворы сохраняется только до тех пор, пока не прекратился в них самих процесс разложения, который, если не устранена вода, совершается медленно, но беспрерывно. При этом разложении кислород прикосновенного воздуха превращается в углеродную кислоту и, сверх того, отделяется еще определенное количество углеродной кислоты из самого тела, образуясь на счет его углерода и кислорода или кислорода находящейся в прикосновении с ним воды. По окончании этого процесса дрожжи уже совершенно нерастворимы и не действуют на сахаристые растворы. Настой дрожжей, сделанный с горячею водою, не действует при устранении атмосферного воздуха на сахар, по если остудить его в воздухе, причем часть его углерода соединится с кислородом и образуется углеродная кислота,— следовательно, на- [c.18]

Для определения ионов хлора в водопроводной воде и в воде водоемов, которую используют для гидролиза и для разбавления субстрата перед выращиванием дрожжей, при содержании хлора не более 0,1 мг-экв/л предназначен метод, основанный на реакции ионов хлора с азотнокислой ртутью [31]. [c.101]

Содержание сырого протеина (общего белка) в дрожжах во всех странах определяют по методу Кьельдаля или по одной из многих его модификаций. Наиболее распространенная пропись метода Кьельдаля приводится ниже. Метод основан на определении количества азота, содержащегося в белке дрожжей. Дрожжи обрабатывают серной кислотой при нагревании в присутствии сернокислой меди в качестве катализатора и сернокислого натрия как водоотнимающего вещества. Органические вещества окисляются до углекислого газа и воды. Азот, освобождающийся при разрушении органических веществ, восстанавливается до аммиака, который связывается серной кислотой в сернокислый аммоний. Реакции продолжаются более 16 ч. Образовавшийся сернокислый аммоний разлагают щелочью, выделяется аммиак, который отгоняют в титрованный раствор серной кислоты (или в раствор борной кислоты), и ее избыток оттитровывают раствором щелочи. Содержание сырого протеина в дрожжах находят как произведение количества азота, найденного в аммиаке, умноженное на эмпирический коэффициент 6,25. [c.227]

Ход анализа. В стакан или в колбу вместимостью 750 мл помещают 2 г исследуемых дрожжей, прибавляют 480 мл воды, 1 г пепсина и 10 г 25%-ной соляной кислоты, хорошо перемешивают и ставят в термостат на 24 ч. Затем смесь фильтруют через складчатый фильтр (фильтрат должен быть прозрачным) и осадок на фильтре промывают дистиллированной водой. Фильтр с осадком переносят в колбу Кьельдаля, прибавляют 20 мл серной кислоты плотностью 1,84 г/см проводят минерализацию и определение аммиака, как описано на с. 229. Параллельно в пробе дрожжей определяют содержание сырого протеина. [c.230]

Оптимальным значением pH для биологической очистки считается 6,5—7,5, однако в ряде случаев процесс протекает довольно интенсивно и при значительных отклонениях от этого интервала. В кислой среде (pH 4—6) хорошо размножаются грибы и дрожжи, обладающие высокой ферментативной активностью. В определенных пределах микроорганизмы сами способны регулировать pH среды. Так, при очистке сточных вод производства поливинилового спирта, имеющих pH 9—11, в аэротенках газлифтного типа pH очищенных сточных вод снижается до 6,5—8. [c.25]

Упрощенные биохимические методы определения. Определение сбраживаемых сахаров в древесном нейтрализате. Свежую дрожжевую суспензию, взятую после сепараторов, отфильтровывают на воронке с отсасыванием до получения достаточного количества дрожжей (12—15 г) и дважды промывают холодной водопроводной водой. Одновременно отмеривают 200 мл нейтрализата, в котором было определено содержание РВ. Затем 8 г промытых дрожжей растирают стеклянной палочкой с небольшим количеством исследуемого нейтрализата в конической колбочке емкостью 300—350 мл. После получения однородной дрожжевой кашицы в колбочку вносят остальное количество нейтрализата, слегка взбалтывают и помещают в термостат. Брожение ведут в течение 8 часов при 30°, после чего получившуюся бражку отфильтровывают через бумажный фильтр и в фильтрате определяют содержание РВ. Содержание сбраживаемого сахара получают, вычитая содержание РВ в бражке (остаточные РВ) из содержания РВ в нейтрализате. Чистоту дрожжей, употребляемых для определения сбраживаемого сахара, рекомендуется проверять при помощи микроскопа и, в случае обнаружения инфекции, производить особую отмывку. Для этого 40—50 г дрожжей заливают 500 мл прокипяченной и охлажденной воды, взбалтывают и дают отстояться. Воду сливают с осадка и снова заливают 500 мл воды с 5 каплями серной кислоты уд. веса 1,84, дают дрожжам отстояться, подкисленную воду сливают и дрожжи промывают, при отсасывании, свежепрокипяченной охлажденной водой. После этого дрожжи можно применять для определения содержания сбраживаемого сахара. [c.112]

Особенное внимание должно быть уделено определению выхода дрожжей из 1 м барды и в процентах от РВ, переработанных и введенных с бардой. Для выявления потерь составляют баланс РВ и дрожжей. Объяснения о потерях должны быть конкретизированы по их источникам для возможности принятия эффективных мер к их устранению. В отчете также приводятся данные о расходе вспомогательных материалов, пара, воды и электроэнергии, о затрате рабочей силы, распределении рабочего времени и о продолжительности простоев, с объяснением их причин. В заключение приводят анализ работы завода за отчетный период времени. [c.311]

В процессе выращивания дрожжей из бутыли ежечасно отбирают пробу для определения pH среды и температуры, а также микроскопирования pH среды в пределах 5,2—5,4 поддерживают путем добавления раствора аммиачной воды (1 1) или 10%-ного раствора едкого кали. Температура среды в бутыли поддерживается в пределах 33—35° С. [c.163]

Кроме сельского хозяйства отдельные виды удобрений применяются в промышленности, а также экспортируются. Например, карбамид применяется в производстве пластмасс некоторые фосфорные удобрения (суперфосфат, а иногда и аммофос) используют для получения кормовых дрожжей, для биохимической очистки промышленных стоков и других целей. При определении объема промышленного потребления минеральных удобрений на перспективу надо сочетать несколько методов расчета. Так, количество, необходимое крупным потребителям (например, производству пластмасс), можно определить прямым счетом, умножая объем производства, планируемый на перспективу по заводам, на расходные коэффициенты. Если потребление рассредоточено по отраслям промышленности (например, для очистки сточных вод), выполнить прямой расчет потребности не представляется возможным, и приходится пользоваться методом экстраполяции. [c.249]

Нужный штамм дрожжей обычно выращивают в лаборатории на скошенных питательных средах, из лиофилизованных культур или специальных активных сухих дрожжей. Через несколько последовательных циклов размножения через 3-4 дня полз ают конечную закваску, готовую к внесению в ферментер. Разведение дрожжей начинается в лаборатории с сухих дрожжей штамма Sa h. erevisiae. Сухие дрожжи определенной массы разводят в колбе со смесью теплой воды и тростникового сахара, оставляют на 15 мин, а затем вносят в дрожжанки. [c.341]

При присоединении одного моносахарида к другому посредством гликозидной связи с формальным отщеплением 1 моль воды образуется соединение, называемое дисахаридом. Присоединение следующих молекул моносахарида дает три-, тетра-, пентасахариды и высшие сахариды вплоть до высокомолекулярных соединений— полисахаридов. Хотя не существует строгого определения олигосахаридов, обычно считают, что к ним относятся соединения, содержащие менее семи или восьми углеводных остатков. Наиболее известными и легкодоступными представителями олигосахаридов являются дисахариды. Среди них наибольшее распространение имеет сахароза (а-й-глюкопиранозил-р-й-фруктофуранозид) (1)—невосстанавливающий дисахарид, встречающийся во всех растениях [1]. Дисахарид лактоза (4-0-р-Д-галактопиранозил-й-глюкоза) (3) входит в состав молока млекопитающих 12]. Кроме них единственным природным олигосахаридом, доступным в больших количествах, является трегалоза (а-й-глюкопиранозил-а-/3-глюкопиранозид) (4) — невосстанавливающий дисахарид, содержащийся в значительном количестве в сухих дрожжах 3]. У насекомых трегалоза выполняет функцию резервного сахара, из которого при необходимости регенерируется глюкоза. Раффиноза (5), единственный легкодоступный природный трисахарид, содержится вместе с сахарозой в сахарной свекле. Некоторые олигосахариды довольно легко можно получать частичным гидролизом полисаха- [c.202]

Продуцентами этих кислот могут быть бактерии, плесневые грибы или дрожжи. Микроорганизмы, продуцирующие молочную кислоту, а также вызывающие спиртовое брожение, в ходе эволюции приспособились к анаэробному образу жизни. Уксусная и лимонная кислоты в свою очередь образуются в аэробных условиях. По-видимому, кислоты играют определенную роль в борьбе с конкурирующей микрофлорой, а также являются резервными источниками углерода. Так, Aspergillus niger после использования сахара могут использовать в качестве субстрата лимонную кислоту. В свою очередь уксуснокислые бактерии при отсутствии спирта в среде ассимилируют уксусную кислоту, окисляя ее до воды и СО2. [c.143]

В медицинской практике в качестве лекарств редко применяются чисто химические вещества. В него вводят различные ингредиенты, которые могут служить потенциальной питательной средой для размножения микроорганизмов. Это растворители, вспомогательные вещества, консерванты. При определенных условиях все они могут повреждаться бактериями, дрожжами и грибами. Микроорганизмы, находящиеся в сыром материале, воде, воздухе, проникнув в готовое лекарственное средство или его компонентьт, в различные стадии своей жизни погибают или остаются живыми и даже размножаются. В литературе имеются сведения о загрязненности готовых лекарственных средств и сырья различными видами бактерий и грибов, среди которьтх обнаруживаются виды, опасные в инфекционном отношении [I, 7, 9, 13, 27,30,33]. [c.520]

Получение -арабинозы и определение ее констант. Для препарирования L-арабинозы берут 100 г очищенного от загрязнений вишневого клея. Гидролиз ведут с 700 мл 4%-ного раствора H2SO4. Смесь нагревают при постоянном помешивании на сильно нагретой водяной бане до растворения клея, затем колбу соединяют с обратным холодильником н ведут гидролиз в кипящей водяной бане в течение 5—6 ч. Горячий гидролизат выливают в большую фарфоровую чашку, а избыток кислоты постепенно нейтрализуют 30—33 г чистого СаСОз. После нейтрализации массу фильтруют на воронке Бюхнера с отсасыванием. Осадок промывают теплой водой. Гидролизат, кроме L-арабинозы, содержит галактозу и глюкозу, от которых его очищают путем их сбраживания, для чего к фильтрату добавляют 5—10 г прессованных дрожжей. Колбу закрывают каучуковой пробкой с гидравлическим затвором и ставят в термостат при 30° С на 3—4 дня до окончания брожения. Затем жидкость отфильтровывают, а фильтрат упаривают до сиропа и охлаждают. При слабом подогревании к сиропу приливают небольшими порциями 96%-ный этиловый спирт, примерно в двухкратном количестве. Жидкости дают отстояться до полного осветления, а затем декантируют. Декантат сгущают в вакууме до сиропа, прибавляют снова спирт, декантируют, упаривают и так до полного прекращения выпадения осадка при прибавлении спирта к сиропу. Из очищенного сиропа после прибавления затравки (несколько кристалликов арабинозы) начинает выкристаллизовываться арабиноза. Кристаллы отсасывают на воронке Бюхнера, промывают спиртом и перекристал- [c.170]

Интересен опубликованный в 1951 г. доклад подкомитета [40], спв циально выделенного в США для проведения работы по уточнению тио-хромного метода в применении к определению витамина в злаках и хлебных продуктах, р солоде, дрожжах, мясе и продуктах из них. В докладе сопоставляются результаты анализов одиннадцати различных лаборато рий. Установлено, что очистка адсорбцией на обменном силикате дает лучшие результаты, чем отмывание изобутиловым спиртом, что окисленНе следует проводить заранее приготовленной смесью щелочи и красной кровяной соли, а не добавлять их раздельно, что для отделения тиохрома лучше применять изобутанол, насыщенный водой, а не сухой, что получаемые результаты целесообразно проверять методом добавления навески аневрина к исходному экстракту для проверки потерь в процессе анализа и что для конечного определения содержания аневрина иредиочтительно пользоваться непосредственным пересчетом на иитепсивность флуоресценции тиохрома, а не калибровочной кривой. Отмечается, что степень точности метода неодинакова в ирименении к различным продуктам. Предложен новый количественный метод определения витамина В , основанный на измерении интенсивности флуоресценции соединения, образующегося при взаимодействии витамина с бромистым цианом [41]. [c.205]

Большое значение для количественного учета витаминов имеют биологические методы. Принцип этих методов сводится к следующему. Животных (крыс, морских свинок, голубей и др.) переводят на искусственную безвитаминную диету и затем наблюдают, какое количество исследуемой пищи может предохранить животное от развития заболевания или вылечить животное от уже наступившего авитаминоза. Очевидно, при определении содержания в пиш,е того или иного витамина приходится составлять для каждого случая особые диеты. В состав любой диеты должны входить белки, углеводы, жиры, минеральные соли, вода и все витамины, за исключением того витамина, содержание которого в исследуемом пищевом продукте должно быть определено. Диета для получения авитаминоза А у крыс имеет, например, такой состав казеина 18%, крахмала 48%, свиного жира 38%, солей 4% и в качестве источника витаминов 0,4 г дрожжей в день. Животные, находящиеся на этой диете, получают все необходимые пищевые вещества и витамины, за исключением витамина А. Вследствие этого через несколько педель у животного обычно развивается авитаминоз А. При прибавлении исследуемого пищевого продукта к вышеуказанной диете крыса остается здоровой только в том случае, если прибавленный продукт содержит витамин А. [c.136]

Транспортные РНК. Большое внимание, которое привлекают к себе в последние годы транспортные РНК, обусловлено тем, что они представляют собой, по существу, отдельные элементы, составляющие генетический словарь. Интерес к ним особенно усилился после выдающейся работы Холли, которому в 1965 г. удалось полностью расшифровать первичную структуру (т. е. нуклеотидную последовательность) одной из аланиновых s-PHK дрожжей Суммируя вкратце некоторые наиболее важные структурные характеристики молекул s-PHK (см. гл. V), можно сказать, что эти сравнительно небольшие и поэтому легко растворимые в воде полирибонуклеотиды весьма однородны по своим размерам (приблизительно 70—80 нуклеотидных остатков). Помимо четырех обычных оснований они содержат такн е в относительно большом количестве редкие, или минорные, основания, в частности различные метилированные основания и псевдоуридии. Модификация обычных оснований происходит, по-видимому, уже после их включения в полимерную структуру. Несмотря на присутствие редких оснований, для молекул S-PHK характерны высокая степень комплементарности и выраженная вторичная структура, особенно в присутствии ионов Mg +. Возможно, что число различных видов s-PHK совпадает с числом смысловых кодонов. В некоторых случаях (нанример, в случае лейцина) оказалось возможным приписать те или иные фракции s-PHK к отдельным кодонам выяснилось, что данная фракция s-PHK поставляет активированную аминокислоту только в ответ на совершенно определенный кодон и ни на какой другой. [c.522]

Понятие антибиотиков требует предварительного краткого об- ческое Суждения еще некоторых общих положений. Это вещество прежде всего касается вопроса о том, что охватывает собой понятие антибиотическое вещество , ил антибиотик . Хотя в настоящее время этот термин стал общеупотребительным, его содержание еще нельзя считать окончательно-установленным, а точно очертить границы его применения пока в достаточной мере трудно. Наиболее четко это было сделанО в 1945 г. Оксфордом . Его определение сводится в основном к следующему антибиотик — растворимое в воде органическое вещество, образуемое микроорганизмом из безвредных составных частей среды. Это вещество должно обладать способностью подавлять или задерживать развитие другого микроорганизма, будучи растворено в среде, пригодной для нормального развития этого второго микроорганизма. При этом Оксфорд относит к антибиотикам только те вещества, которые образуются дрожжами, плесенями, актиномицетами или бактериями. Однако многие исследователи справедливо не ограничивают понятие антибиотик обязательным признаком образования его микроорганизмом, а причисляют к антибиотикам и те вещества, обладающие антибактериальным действием, которые образуются растениями и животными. К этой группе соединений могут быть отнесены, например, такие вещества, как протоанемонин, аллицин, эритрин. [c.14]

Получают 3. обработкой дрожжей протеолитич. ферментом трипсином (по Пиллемеру) с последующей очисткой нерастворимого остатка 3. извлечением его водой и спиртом или фенол-водной экстракцией дрожжей. 3. используют для выделения пропердина из сыворотки или плазмы по методу Пиллемера и его модификациям, в основе к-рых лежит реакция образования пропердин-зимозанового комплекса и для определения титра пропердина в крови. [c.55]

Некоторые культуры дрожжей (Кр-9, Л-2, СД-5) рода andida размножаются в виде сильно разросшихся пучков или веточек, состоящих из большого числа клеток. При разбавлении пробы водой они не распадаются на отдельные клетки, поэтому колонии таких дрожжей вырастают на агаре не из одной клетки, как другие, а из нескольких клеток. При определении степени зараженности по относительному количеству колоний в этом случае можно сделать ошибку. Если высев на сусло-агар показал наличие в дрожжерастильных чанах посторонних дрожжей или грибов, то их выделяют из колоний высевая на солодовое сусло или повторяя высев на сусло-агар, и проводят с ними специальные исследования. [c.195]

Для быстрого определения наличия сахаров (гексоз и пентоз) в бражке после выращивания дрожжей, в сточной воде и других жидкостях, где их концентрация менее 0,2%, предназначен метод, основанный на выделении сахаров из смеси с редуцирующими несахарами с помощью хроматографии на бумаге. Одновременно можно анализировать 5—10 проб. Наличие сахаров (гексоз и пентоз), выделенных на хроматограмме, устанавливают по их реакции с анилинфталатом, в результате которой они образуют окрашенные соединения. По интенсивности окраски и величине пятен, полученных после проявления хроматограмм, путем сравнения их со свидетелями (эталонами) находят концентрации отдельно гексоз и пентоз. [c.199]

Определение фосфора, связанного в органических соединениях. Пробы дрожжей, активного ила и осадков, отобранных на различных стадиях очистки сточных вод, анализируют после их минерализации. Если результат анализа хотят знать в пересчете на сухое вещество, то определяют влажность пробы. Для минерализации берут 0,5 г сухих дрожжей (или активного ила и т. д.), на лодочке помещают в колбу Кьельдаля вместимостью 250 мл, вливают 20 мл серной кислоты плотностью 1,84 г/см , добавляют 0,5 г сернокислой меди и 1 г сернокислого натрия. Укрепив колбу в штативе над электроплиткой наклонно (под тягой), включают слабый нагрев колбы (рис. 65). В начале минерализации идет бурное выделение газов, что сопровождается сильным вспениванием реакционной смеси. Когда прекратится иенение, нагрев реакционной смеси усиливают, опуская колбу на электроплитку. Нагревание продолжают до полного обесцвечивания реагирующей смеси. При сжигании обращают внимание, чтобы на стенках колбы не оставались обугленные частицы реакционной смеси. Если они есть, то, осторожно вращая колбу, смывают их в реагирующую жидкость. Для гарантии полноты минерализации пробы реагирующую жидкость после обесцвечивания нагревают еще 30 мин. Затем нагрев выключают, колбу охлаждают, ее содержимое количественно переносят в мерную колбу вместимостью 10 мл, объем раствора доводят до метки и перемешивают. В колбу вместимостью 50 мл помещают 25 мл полученного раствора, нейтрализуют 30%-ным раствором едкого натра в присутствии индикатора метилового красного до слабо-желтого цвета. Раствор охлаждают, его объем доводят дистиллированной водой до метки и перемешивают. Если раствор мутный, то его надо отфильтровать перед анализом. [c.206]

Для определения качественного и количественного состава аминокислот белка дрожжей, активного ила и других биомасс предназначен метод, основанный на колориметрическом определении количества каждой аминокислоты, выделенной хромато-графией на бумаге. Мономерные аминокислоты определяют после их экстракции из пробы горячей водой. Полимерные аминокислоты, составляющие макромолекулы белка, предварительно гидролизуют [75]. Для выделения аминокислот проводят нисходящее, многократное хроматографирование двумя растворителями. Проявителем служит слабокислый раствор нингид-рина, который с аминокислотами дает сине-фиолетовое соединение (ДИДА) по уравнению [c.217]

Определение сбраживаемых сахаров в сульфитном щелоке. Для определения содержания сбражива-е.мых сахаров в нейтрализованном сульфитном щелоке берут 5 г целлюлозно-дрожжевой массы на каждые 100 мл щелока и брожение ведут в термостате при 30 в течение 12—14 часов. Целлюлозно-дрожжевую массу получают путе.м отфильтровывания сульфитной бражки (с дрожжами), взятой из бродильных чанов, на воронке с отсасыванием и путем промывки холодной водой полученных дрожжей. При сбраживании щелока в бродильных чанах с насадкой бражку для фильтрования, с целью получения целлюлозно-дрожжевой массы, берут в местах наибольшего скопления дрожжей. [c.112]

Определение центрифугированием. Для определения в бродящем сусле концентрации дрожжей центрифугированием применяют лабораторную центрифугу с ручным или электрическим приводом, делающую 2,5—3,0 тыс. оборотов в минуту. Два стаканчика центрифуги смачивают с внутренней поверхности водой, взвещивают и.наливают в каждый стаканчик по 50 мл исследуемой жидкости, содержащей дрожжи. Затем стаканчики вставляют в гнезда центрифуги и центрифугируют в течение 5 минут при 2,5—3,0 тыс. оборотов. Совершенно необходимо, чтобы оба стаканчика с содержимыхм были однакового веса и чтобы они были помещены в центрифуге взаимно противоположно. В противном случае возможна поломка центрифуги. После первого центрифугирования жидкость из стаканчиков осторожно сливают, стараясь не взмутить осадка, вторично добавляют в каждый стаканчик по 50 мл исследуемой жидкости и снова центрифугируют в течение 5 минут. Приливание в стаканчик исследуемой жидкости повторяют четыре раза, чтобы в каждом стаканчике было отцентрифу-гировано по 200 мл жидкости. После четвертого раза в каждый стаканчик добавляют по 50 мл воды, дрожжевой осадок хорошо перемешивают стеклянной палочкой и еще раз центрифугируют [c.138]

Производство дрожжей может быть периодическим или непрерывным. Поскольку в настоящее время применяется периодический процесс производства дрожжей из непищевого сырья, для него приводим схему контроля. В случае непрерывного процесса схема контроля несколько расширяется за счет соответствующих добавочных определений и отбора проб нейтрализата после аэрирования, отсепарированной бражки, дрожжевой суспензии, промывных вод, осветленного суапа после клерсепараторов, плазмо-пизата и пасты. [c.289]

МОЧИ. Если моча щелочная, подкисляют ее виннокаменной кислотой до кислой реакции. Моча, подвергшаяся аммиачному брожению или содержащая много микробов, не годится для пробы с брожением, так как в этих условиях может и без сахара выделиться газ. Поэто.му лучше до пробы кипятить всякую мочу. Смесью мочи с дрожжами наполняют аппарат Эйнхорна так, чтобы узкая запаянная сверху пробирка была заполнена мочой и не содержала воздуха, а в широкой части моча доходила до половины расширения. Прибор ставят на 24 часа в теплое место (при 25—30°), не дольше, так как иначе может иметь место и неспецифическое брожение. Если есть сахар, то в верхней части трубки собирается углекислота, объем которой указывает на количество разложенного сахара. Одновременно с анализом обязательно ставить контроль на сбраживающую силу дрожжей, так как могут попасться дрожжи, не дающие брожения, а также на содержание сахара в дрожжах для первого определения ставят пробу так же, как в опыте, но вместо мочи берут слегка подкисленную 0,5% глюкозу для второго — вместо мочи или рг.створа сахара берут воду. Первый контроль должен дать энергичное брожение, второй — никакого. Чтобы быть уверенным, что полученный в исследуемой моче газ действительно углекислота, нужно из изогнутой крючком пипетки впустить в узкую часть пробирки немного раствора NaOH. Углекислота должна поглотиться раствором щелочи, и жидкость поднимется до запаянного конца пробирки. [c.215]

Раздельное определение гидропероксидов алкилов и аралкилов и пероксида водорода в их смешанных водных растворах проводят иодометрически, анализируя две порции пробы в одной из них перед иодометри-ческим анализом добавляют каталазу - фермент, селективно разрушающий пероксид водорода. Использовалась каталаза из дрожжей (молекулярная масса 250 000, завод химреактивов г.Олайне Латвийской ССР, 10 моль в 100 мл дистиллированной воды [c.50]

Третья стадия культивирования посевного материала осуществляется в посевных аппаратах 16 объемом от 4 до 5 м . В них также первоначально вводится питательная среда (около 180—200л), она разбавляется в 6,0—6,5 раза стерильной водой, и задаются все дрожжи вместе с жидкой фазой, полученные на второй стадии в малом посевном аппарате (около 300 л). Вся эта масса активно аэрируется в течение 10—12 ч при одновременном доливе питательной среды из расчета 70—75 л/ч и добавлении аммиачной воды для поддержания определенного значения pH. [c.97]

Нечто подобное происходит и при изготовлении пенопластов, разумеется, вместо муки химики используют различные полимеры, например поливинилхлорид (белый порошок), внешне весьма похожий на муку самого высшего сорта, а вместо дрожжей — порофор, вещество, выделяющее при напревании большое количество газообразных продуктов. Здесь, как и при выпечке куличей, необходимы формы, но они больших размеров и иначе устроены. Перемешанный поливинилхлорид с порофо-ром укладывают в форму. После этого постепенно нагревают до температуры 140—150°С. Выделяющиеся при этом газы раздувают массу верхнюю часть формы постепенно поднимают и после охлаждения получают поропласты определенного удельного веса. Такой поропласт не впитывает в себя воду, как обычная. резиновая губка, обладает повышенными теплоизолирующими свойствами по сравнению с другими пористыми материалами, но несколько уступает им по звукопоглощению. А почему — вам станет понятно после знакомства с другими пористыми пластиками, получаемыми несколько иначе. [c.55]

Для полного сбраживания всего сахара, содержащегося в мелассе, необходимо создание определенных наиболее -Злагоприятных условий для развития дрожжей — достаточное количество тательных веществ, опре Делен-ная онцентрация сахара, кислотность среды и температура. Для размножения дрожжей (дрожжегенерирования) и сбраживания из мелассы готовят сусло, которое представляет собой разбавленную водой мелассу с питательными веществами, кислотой- и антисептиками. [c.107]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология